Reptiles presentes en la colección herpetológica SINCHI de la expedición al Río Apaporis - Proyecto Colombia BIO

Description

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Caicedo Portilla J R (2023): Reptiles presentes en la colección herpetológica SINCHI de la expedición al Río Apaporis - Proyecto Colombia BIO. v2.4. Instituto Amazónico de Investigaciones Científicas - SINCHI. Dataset/Occurrence. https://doi.org/10.15472/azmm7s

Rights

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The publisher and rights holder of this work is Instituto Amazónico de Investigaciones Científicas - SINCHI. This work is licensed under a Creative Commons Attribution Non Commercial (CC-BY-NC) 4.0 License.

GBIF Registration

This resource has been registered with GBIF, and assigned the following GBIF UUID: 080685f0-0df9-43dd-8bd7-eb82ca54b654.  Instituto Amazónico de Investigaciones Científicas - SINCHI publishes this resource, and is itself registered in GBIF as a data publisher endorsed by Colombian Biodiversity Information System.

Keywords

Specimen; Reptiles; Colombia; Vaupés; Guaviare; Río Apaporis; Colombia Bio; Occurrence

Contacts

Geographic Coverage

Departamento de Vaupés, área no municipalizada de Pacoa, sobre el río Cananarí, en las comunidades de Buenos Aires y Morroco. En esta misma área no municipalizada (Pacoa) en el río Apaporis frente a la comunidad de Jirijirimo. Departamento de Guaviare, municipio de Miraflores, cerro Campana.

Taxonomic Coverage

Se registran 33 especies: 14 lagartos, 16 serpientes, dos cocodrílidos y dos trotugas. Seis familias de lagartos (Dactyloidae, Gymnophthalmidae, Hoplocercidae, Sphaerodactylidae, Teiidae y Tropiduridae), cuatro de serpientes (Boidae, Colubridae sensu lato, Elapidae y Viperidae), una de cocodrílidos (Alligatoridae) y una de tortugas (Chelidae). Las familias más diversas son Colubridae sensu lato con 10 especies y Gymnophthalmidae con cinco táxones. Los registros fueron almacenados teniendo como base la información sobre taxonomía (familia, género y especie), datos de recolecta (nombre y número de recolector), determinación (nombre científico), determinador (nombre de quien determina el ejemplar) y datos de referencia geográfica (coordenadas geográficas y departamento).

Temporal Coverage

Project Data

Unión de esfuerzos entre el Fondo Nacional de Financiamiento para la ciencia, la tecnología y la innovación, Fondo Francisco José de Caldas "Colciencias" y el Instituto Amazónico de Investigaciones Científicas - SINCHI para llevar a cabo una expedición científica que tuvo lugar en la cuenca media del río Apaporis. Los objetivos que se traza el proyecto son la caracterización de la diversidad biológica de la cuenca media del rio Apaporis en el departamento de Vaupés, mediante registros biológicos debidamente curados, preservados, catalogados. Los grupos contemplados son flora, fauna, particularmente anfibios, reptiles, aves, quirópteros, lepidópteros y peces, en el marco del programa Colombia BIO.

The personnel involved in the project:

Sampling Methods

Para efectuar la búsqueda, captura y/u observación de reptiles, se realizaron recorridos utilizando el método de búsqueda libre por encuentro visual azaroso (Crump & Scott 1994, Guyer & Donnelly 2012). Los recorridos fueron principalmente nocturnos, ya que durante el día se procesaba el material recolectado la noche anterior. Ocasionalmente se realizaron muestreos diurnos de reptiles. Se hicieron búsquedas en la hojarasca, en la vegetación de los estratos rasante y sotobosque, en la vegetación de borde de ríos y caños, en el suelo, en pozos y pastizales. El protocolo de muestreo incluyó perturbar el sustrato para detectar los individuos de hojarasca y la búsqueda desde el suelo hasta los 3 metros de altura aproximadamente, los individuos fueron capturados manualmente y depositados en bolsas de tela numeradas para su posterior identificación en el campamento. Se recolectaron ejemplares voucher a quienes se les registraron los datos habituales de hábitat, microhábitat y coordenadas. La mayor parte de los ejemplares fueron fotografiados y a algunos ejemplares se les tomó muestra de tejido. Los reptiles recolectados fueron sacrificados por medio de una sobredosis de Roxicaina al 1% o 2% de concentración, y posteriormente fueron fijados en formaldehído al 10% durante 15 días. En el laboratorio, todos los ejemplares fueron lavados con agua para ser preservados en alcohol al 70%. El material lavado fue identificado en su mayoría hasta especie con ayuda de literatura especializada y de taxónomos especialistas como John D. Lynch del Instituto de Ciencias Naturales de la UNAL.

Method step description:

1. Se busca en los mapas o imágenes satelitales de la zona de estudio los hábitats adecuados para la búsqueda de reptiles.
2. Cuando es posible, se realiza un recorrido de reconocimiento en la zona de estudio para poder evaluar en campo los sitios de muestreo de la salida. Se debe trabajar mínimo 4 horas por sesión de muestreo.
3. Una vez localizado el ejemplar, se debe proceder a capturarlo con las manos (anfibios y lagartos), con la pinza herpetológica (serpientes) o con la jama (larvas) y será depositado en una bolsa de tela o en una bolsa plástica. Cada bolsa debe estar numerada, facilitando así su identificación y evitando confusiones en el registro de los datos ecológicos de cada ejemplar.
4. Para realizar una búsqueda adecuada y cubrir la mayor cantidad de área posible, durante el tiempo de muestreo los recolectores deberán dispersarse, localizar los hábitats adecuados para los reptiles.
5. Al finalizar la jornada de muestreo todos los recolectores deben entregar las bolsas, con o sin ejemplares, a los líderes del grupo (investigadores Sinchi), quienes deberán revisar los contenidos de las bolsas y asegurarse de que se encuentren en buenas condiciones hasta el día siguiente.
6. A cada ejemplar capturado y que se vaya a procesar se le toman los datos de campo tales como: sustrato, posición horizontal y actividad; así mismo se le toman notas de coloración en vida y se les toman fotografías.
7. Cada ejemplar procesado lleva una etiqueta de campo que es la que permite saber que individuo es en las notas de campo del colector principal.
8. Luego se procede al sacrificio de los ejemplares, para los reptiles es por medio de una inyección pericardica de roxicaina al 1% o 2%.
9. Algunos ejemplares se les toma muestra de tejido, que puede ser musculo o hígado.
10. Se procede a inyectar los reptiles con formol al 10% y se fijan en una bandeja plástica que está saturada con formol al 10%.
11. Al siguiente día, se les amarra la etiqueta del recolector en una de las patas en el caso de lagartos, o, se amarra en el cuerpo en el caso de amfisbénidos y serpientes; luego se sumergen dentro de un recipiente que contenga formol al 10%, en dicho recipiente duran sumergidos los ejemplares durante quince días y son transportados al laboratorio dentro de este recipiente.
12. Transcurridos 15 días, se procede a eliminar el exceso de formol de los ejemplares. Los reptiles se deben dejar en agua durante 15 días, haciendo cambios del agua cada 4 o 5 días. Una vez eliminado el exceso de formol, los especímenes se mantendrán en alcohol de lavado (70%) en donde permanecerán hasta cuando se les asigne un número de colección y se almacenen definitivamente en alcohol al 70%.
13. Cuando los ejemplares están en alcohol se procede a determinar taxonómicamente los especímenes que no se pudieron identificar plenamente durante la salida de campo, esta actividad se realiza por medio de comparaciones con material de referencia dentro de la colección, por medio de literatura especializada en los grupos que se está tratando de identificar o por comunicaciones con los expertos de los diferentes grupos de estudio.
14. Posteriormente, se procede a catalogar los ejemplares, poniéndole a cada uno la etiqueta SINCHI-R correspondiente y de manera consecutiva con cada ejemplar que se está catalogando.
15. Se ingresa cada ejemplar a la base de datos electrónica, donde se anotan todos los datos de cada ejemplar que se documentaron en la libreta de campo, menos la descripción de coloración de cada uno de ellos.

Collection Data

Bibliographic Citations

1. CRUMP, M. L. & N. J. SCOTT. 1994. Visual encounter surveys. Pp. 84-92. En: HEYER, W. R., DONNELLY, M. A., MCDIARMID, R. W., HAYEK, L. C. & FOSTER, M. S. (eds.). Measuring and monitoring biological diversity, standard methods for amphibians. Smithsonian Institution Press, Washington, DC.
2. GUYER, C., & M. A. DONNELLY. 2012. Visual encounter surveys. En: R. W. McDiarmid, M. S. Foster, C. Guyer, J. W. Gibbons, & N. Chernoff (eds.). Reptile Biodiversity Standard Methods for Inventorying and Monitoring, pp. 218–220. University of California Press, USA.

Additional Metadata