Registros de Erizo Blanco (Tripneustes ventricosus) en la había de Taganga Santamarta, Colombia

Dernière version Publié par Universidad del Magdalena le Jul 28, 2020 Universidad del Magdalena

El erizo blanco Tripneustes ventricosus (Lamarck, 1816), es la especie de erizo regular más grande del Caribe (diámetro de testa de hasta 130 mm). Se distribuye entre los trópicos en el Mar Atlántico a lo largo de la costa occidental de África y la oriental de América (Lewis 1958, McPherson 1965, Lovatelli y Sarkis, 2011). Habita en fondos con pastos marinos, macroalgas, arena con escombros, arrecifes de coral y rocas (McPherson 1965; Lawrence y Agatsuma, 2007; Alvarado y Solís-Marín, 2013) entre los 6 y 25 m de profundidad (Smith y Berkes, 1991). Se alimenta de algas y fanerógamas tanto de día como de noche, presentando mayor movilidad en horas de la noche, aparentemente como estrategia de evasión de depredadores nocturnos (Tertschnig, 1989). Por ser herbívora, se considera que mitiga la proliferación de algas epibiontes que se producen a medida que aumenta la carga de nutrientes originada por la contaminación antropogénica (Woodley et al., 1999; Creswell, 2011). Tripneustes ventricosus tiene características que la hacen tener potencial para ser producida por acuicultura en el Caribe entre las que es posible nombrar su gran tamaño (130 cm de diámetro), rápido crecimiento (80 a 90 mm de diámetro durante el primer año), madurez precoz (a los 40 mm de diámetro; McPherson, 1965; Lawrence y Balzhin, 1998), ciclo reproductivo continuo (Lewis, 1958) y fertilización externa (Pena et al., 2008). Aunque se ha logrado producir larvas y post-larvas de esta especie (Wolcott y Messing, 2005; Rosas et al., 2009), todavía no se logra controlar todo el proceso.

Este recurso contiene la información de 200 Erizos que fueron colectados en la bahía Taganga, en Santa Marta. Estos fueron llevados vivos al laboratorio de la Universidad del Magdalena para hacer un proyecto de cría.

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Comment citer

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Velasco L A, Barros J, Guette-Salazar C (2020): Registros de Erizo Blanco (Tripneustes ventricosus) en la había de Taganga Santamarta, Colombia. v1.1. Universidad del Magdalena. Dataset/Occurrence. https://doi.org/10.15472/qjb14z

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Mots-clé

Maricultura; reproducción; erizo; supervivencia; crecimiento; desove; larvas; post-larvas; Specimen; PERMISO_COLECTA; SIB_MARINO; Occurrence; Observation

Données externes

Les données de la ressource sont disponibles dans d'autres formats

1293_erizo_20190607https://ipt.biodiversidad.co/cr-sib/resource.do?r=1293_erizo_20190607 UTF-8 DWC-A 1
1293_erizo_20191108https://ipt.biodiversidad.co/cr-sib/resource.do?r=1293_erizo_20191108 UTF-8 DWC-A 1
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Contacts

Personne ayant créé cette ressource:

Luz Adriana Velasco
Docente de Planta-Investigador principal
Universidad del Magdalena Carrera 32 No 22 – 08 Santa Marta Magdalena CO 3157601774
Judith Barros
Docente de Planta-Co-Investigador
Universidad del Magdalena Carrera 32 No 22 – 08 Santa Marta Magdalena CO 3002049609
Cindi Guette-Salazar
Coinvestigador
Universidad Del Magdalena Carrera 32 No 22 – 08 SANTA MARTA MAGDALENA CO

Personne pouvant répondre aux questions sur la ressource:

Luz Adriana Velasco
Docente de Planta-Investigador principal
Universidad del Magdalena Carrera 32 No 22 – 08 Santa Marta Magdalena CO 3157601774

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Judith Barros Gómez
Docente de Planta-Co-Investigador
Universidad del Magdalena Carrera 32 No 22 – 08 Santa Marta Magdalena CO 3002049609

Autres personnes associées à la ressource:

Auteur
Manuel Taborda
Dir- Gestión de Conocimiento
Universidad del Magdalena Carrera 32 No 22 – 08 Santa Marta Magdalena CO

Couverture géographique

Las colectas se hicieron en la bahía de Taganga. El promedio de la temperatura del agua en la región varía entre 26 y 30 °C mientras que la salinidad fluctúa entre 32 y 36 ‰ (Velasco et al., 2009), el porcentaje de saturación del oxígeno oscila entre 22.2 y 88.8% y la concentración de amonio oscila entre 0.072 µm L-1 y 22.442 µm L-1 (Vivas-Aguas et al., 2012)

Enveloppe géographique Sud Ouest [11.261, -74.199], Nord Est [11.264, -74.196]

Couverture taxonomique

Los 200 registros pertenecen a ejemplares de Erizo blanco (Tripneustes ventricosus)

Species  Tripneustes ventricosus (erizo blanco)

Couverture temporelle

Date de début / Date de fin 2019-04-29 / 2019-07-29

Données sur le projet

El erizo blanco Tripneustes ventricosus (Lamarck, 1816), es la especie de erizo regular más grande del Caribe (diámetro de testa de hasta 130 mm). Se distribuye entre los trópicos en el Mar Atlántico a lo largo de la costa occidental de África y la oriental de América (Lewis 1958, McPherson 1965, Lovatelli y Sarkis, 2011). Habita en fondos con pastos marinos, macroalgas, arena con escombros, arrecifes de coral y rocas (McPherson 1965; Lawrence y Agatsuma, 2007; Alvarado y Solís-Marín, 2013) entre los 6 y 25 m de profundidad (Smith y Berkes, 1991). Se alimenta de algas y fanerógamas tanto de día como de noche, presentando mayor movilidad en horas de la noche, aparentemente como estrategia de evasión de depredadores nocturnos (Tertschnig, 1989). Por ser herbívora, se considera que mitiga la proliferación de algas epibiontes que se producen a medida que aumenta la carga de nutrientes originada por la contaminación antropogénica (Woodley et al., 1999; Creswell, 2011). Es una especie gonocórica con un par de gónadas naranja o amarillas dependiendo si es hembra o macho, respectivamente (Lewis, 1958). Estas son consideradas de gran sabor, razón por la cual son altamente valoradas, y tienen un considerable consumo y representación en las pesquerías artesanales del Caribe (Pena et al., 2010). Desde los años 70 y 80, las capturas de T. ventricosus han descendido, llegando casi al colapso en algunas de las poblaciones de Barbados y del Caribe oriental (Sheibling y Mladenov, 1987; Pena et al., 2010). Estos altos niveles de sobreexplotación, la considerable demanda internacional del Japón, Estados Unidos de América y de Europa (208 ton año-1 ; FAO, 2017), así como los altos precios de la gónada (entre 290 y 450 USD Kg-1; RDJ, 2017; Maruhide, 2017), han despertado un interés por desarrollar métodos de cultivo en condiciones controladas a fines de explorar la continuación de su aprovechamiento sostenible por acuicultura y/o garantizar su conservación mediante repoblación (Buitrago y Lodeiros-Seijo, 2005; Lovatelli y Sarkis, 2011). Adicionalmente, su alta capacidad para controlar el sobre-crecimiento algal en los arrecifes de coral, la hacen una especie con potencial para ser usada en biorremediación (Stimson, 2003) y para controlar el fouling en cultivos de bivalvos (Cortés-Useche et al., 2011). En Colombia, aunque no existe la cultura de consumo de erizo y por lo tanto este producto no se comercializa a nivel local ni nacional, existe un consumo local de subsistencia en las poblaciones costeras, especialmente en las islas de San Andrés y Providencia (Gaitán-Espitia, 2008). Luego su producción por acuicultura puede representar una oportunidad de diversificar e incrementar la producción marina en zonas donde tradicionalmente han usado este recurso, especialmente en las islas de San Andrés y Providencia, cuyas posibilidades de producción por pesca en sus aguas aledañas han sido limitadas a raíz del fallo limítrofe de la Haya del 2012 (Fallo de la Haya, 2012). T. ventricosus tiene características que la hacen tener potencial para ser producida por acuicultura en el Caribe entre las que es posible nombrar su gran tamaño (130 cm de diámetro), rápido crecimiento (80 a 90 mm de diámetro durante el primer año), madurez precoz (a los 40 mm de diámetro; McPherson, 1965; Lawrence y Balzhin, 1998), ciclo reproductivo continuo (Lewis, 1958) y fertilización externa (Pena et al., 2008). Aunque se ha logrado producir larvas y post-larvas de esta especie (Wolcott y Messing, 2005; Rosas et al., 2009), todavía no se logra controlar todo el proceso. La producción de juveniles de erizo en laboratorio involucra las fases de inducción al desove y fertilización, cultivo embrionario y larvario, asentamiento y cultivo post-larvario (Pereira, 2013). Los erizos maduros pueden ser inducidos al desove mediante el uso de estimulación química como como el suministro de inyecciones celómicas colocadas en la membrana peristomial de KCl (Zamora y Stozt, 1994; Salas-Garza et al., 2005; Garmendia et al., 2009), acetilcolina (Hinegardner, 1967) o mediante estimulación eléctrica (Subramonmm, 1982). Mayores porcentajes de organismos desovados han sido obtenidos con KCl, mientras que las más altas supervivencias de los animales desovados se han reportado con el uso de acetilcolina. El cultivo de embriones y larvas de T. ventricosus se ha desarrollado a escala experimental en pequeños volúmenes (3 - 16 L) con agua de mar microfiltrada a 0,5 µm y esterilizada con UV, usando dietas de las microalgas I. galbana, C. gracilis y/o Rhodomonas sp., a raciones diarias entre 7,5 y 50.000 células mL-1, salinidades entre 30 y 36 ppt (‰), densidades entre 0,6 y 2 larvas mL-1, recambios de agua cada 1 a 3 días, así como temperaturas entre 25 y 29°C (Wolcott y Messing, 2005; Rosas et al., 2009). Sin embargo, los valores de crecimiento y supervivencia han sido relativamente bajos (1100 ± 22,74 μm y 10%, respectivamente). En otras especies de erizos, mayores valores crecimiento y/o supervivencia de los embriones y larvas de erizos se han registrado con el uso de tanques de grandes volúmenes ( 500 Litros; Zamora y Stozt, 1994), dietas mixtas (Astudillo et al., 2005; Cárcamo et al., 2005), uso de concentraciones de alimento intermedias (2.500 - 60.000 cel ml d-1; Zamora y Stozt, 1994; Cárcamo et al., 2005; Salas-Garza et al., 2005), altas temperaturas (Sewell y Young, 1999; Buitrago et al., 2005; Gómez y Gómez, 2005) y baja densidad (0.25 – 3.2 larva/ml; Zamora y Stozt, 1994; Buitrago y Lodeiros-Seijo, 2005, Buitrago et al., 2005; Salas-Garza et al., 2005). El asentamiento de las larvas de erizo de mar es una etapa crítica en la cual ocurren altas mortalidades (Mos et al., 2011), dado que las larvas planctotróficas experimentan metamorfosis para convertirse en post-larvas bentónicas ramoneadoras y esto toma unos días en que las larvas deben encontrar un sustrato adecuado donde asentarse, no pueden alimentarse exógenamente mientras reabsorben las estructuras alimentarias larvarias e inician el desarrollo de aquellas propias de los juveniles, lo que requiere de suficientes reservas energéticas (Gómez y Gómez, 2005). Para superar esta etapa de forma exitosa en condiciones de laboratorio, es útil inducir el asentamiento de las larvas competentes mediante la aplicación de estímulos como la adición al agua de ácido α-aminobutírico (GABA) (Rodríguez et al ., 1992; Rahmani y Ueharai, 2001), L-glutamina (Yasaki y Harashima, 1994), cloruro de potasio (Cameron et al., 1989; Carpizo-Ituarte et al., 2002; Salas-Garza et al., 2005), bajas temperaturas (Díaz-Pérez y Carpizo-Ituarte, 2011) y fotoperiodo de 16 horas de luz y 8 horas de oscuridad (Dworjanyn y Pirozzi, 2008). Adicionalmente, el éxito del asentamiento, depende también de que los sustratos de asentamiento provean el alimento y condiciones ideales para su mantenimiento, observándose que tienen preferencia por macroalgas como Sargassum linearifolium, Corallina officinalis y Ulva lactuca, así como presencia de juveniles de la misma especie (Dworjanyn y Pirozzi, 2008, Mos et al., 2011), biofilms de diatomeas bentónicas (Zamora y Stozt, 1994). El cultivo de las post-larvas se lleva a cabo en tanques rectangulares tipo raceway (300-5000 L) provistos de contenedores con placas con microalgas bentónicas, a densidades iniciales de larvas competentes entre 0.5 y 1.26 mL-1 (Zamora y Stotz, 1994; Buitrago y Lodeiros Seijo, 2005). El crecimiento y supervivencia de las post-larvas y juveniles tempranos está afectado principalmente por el alimento. Los mayores valores se han registrado cuando son alimentados con Ulva lactuta (Cárcamo, 2004; Buitrago y Lodeiros-Seijo, 2005; Cárcamo, 2015) y dietas de microalgas bentónicas (Astudillo et al., 2005; Cárcamo et al., 2005).

Titre DESARROLLO DE LA TECNOLOGÍA PARA LA PRODUCCIÓN DE POST-LARVAS DEL ERIZO BLANCO, Tripneustes ventricosus (LAMARCK, 1816) BAJO CONDICIONES DE LABORATORIO
Financement Universidad del Magdalena Resolución 0025 del 4 de febrero de 2019
Description du domaine d'étude / de recherche Los organismos de T. ventricosus fueron extraídos manualmente de la Bahía de Taganga con la ayuda de equipo de buceo autónomo entre 0 y 5 m de profundidad. Los animales fueron transportados al laboratorio Moluscos y Microalgas de la Universidad del Magdalena (sede Taganga) empleando el sistema de transporte de Ocaño-Higuera et al. (2005), modificado por Velasco (2008). Este sistema consta de cajas plásticas isotermas provistas de cajas de gel congelado y varias esponjas humedecidas con agua del lugar. Los animales fueron empacados en forma de emparedado, protegidos por una esponja en la parte inferior y otra en la parte superior de tal forma que cada animal fuese separado uno del otro; cuidando de no entrar en contacto directo con las cajas de gel. Así mismo, se controló constantemente la temperatura, de tal forma que esta se mantuviera en 20°C. Una vez en el laboratorio, los organimos fueron limpiadas de epibiontes y algas. Allí se mantuvieron en tanques rectangulares de concreto (1000 L) surtidos de agua de mar microfiltrada (1 µm), tratada con UV, aireada y mantenida en las condiciones de temperatura y salinidad que se hayan encontrado al momento de su captura. Como alimento se suministró macroalgas Padina gynmospora y Sargasum sp, y biofilm artificial (calamar seco, agar, Spirulina sp, vitaminas, cáscara y yema de huevo, macroalgas). Los animales se mantuvieron en estos sistemas hasta su uso para los experimentos programados en el proyecto.
Description du design os organismos de T. ventricosus fueron extraídos manualmente de la Bahía de Taganga con la ayuda de equipo de buceo autónomo entre 0 y 5 m de profundidad. Los animales fueron transportados al laboratorio Moluscos y Microalgas de la Universidad del Magdalena (sede Taganga)

Les personnes impliquées dans le projet:

Chercheur Principal
Luz Adriana Velasco Cifuentes

Méthodes d'échantillonnage

Al menos 200 ejemplares (mayores a 6 cm de alto y a 11 cm de diámetro) serán obtenidos de la bahía Taganda, usando aareteo y colecta manual. Estos seran llevados vivos para mantenerlos en los laboratorios de Moluscos y Microalgas de la Universidad del Magdalena y hacre proceso de reproducción.

Etendue de l'étude los experimentos se realizarán en el laboratorio de Moluscos y Microalgas de la Universidad del Magdalena el cual se encuentra situado en Taganga (11° 16’ N, 74° 11’ W), Santa Marta, Magdalena. Al menos 200 ejemplares (mayores a 6 cm de alto y a 11 cm de diámetro) serán obtenidos de la bahía de Taganga. El promedio de la temperatura del agua en la región varía entre 26 y 30 °C mientras que la salinidad fluctúa entre 32 y 36 ‰ (Velasco et al., 2009), el porcentaje de saturación del oxígeno oscila entre 22.2 y 88.8% y la concentración de amonio oscila entre 0.072 µm L-1 y 22.442 µm L-1 (Vivas-Aguas et al., 2012).
Contrôle qualité Revisión períodica y correcciones respectivas

Description des étapes de la méthode:

  1. Los organismos de T. ventricosus fueron extraídos manualmente de la Bahía de Taganga con la ayuda de equipo de buceo autónomo entre 0 y 5 m de profundidad. Los animales fueron transportados al laboratorio Moluscos y Microalgas de la Universidad del Magdalena (sede Taganga) empleando el sistema de transporte de Ocaño-Higuera et al. (2005), modificado por Velasco (2008). Este sistema consta de cajas plásticas isotermas provistas de cajas de gel congelado y varias esponjas humedecidas con agua del lugar. Los animales fueron empacados en forma de emparedado, protegidos por una esponja en la parte inferior y otra en la parte superior de tal forma que cada animal fuese separado uno del otro; cuidando de no entrar en contacto directo con las cajas de gel. Así mismo, se controló constantemente la temperatura, de tal forma que esta se mantuviera en 20°C.
  2. Una vez en el laboratorio, los organimos fueron limpiadas de epibiontes y algas. Allí se mantuvieron en tanques rectangulares de concreto (1000 L) surtidos de agua de mar microfiltrada (1 µm), tratada con UV, aireada y mantenida en las condiciones de temperatura y salinidad que se hayan encontrado al momento de su captura. Como alimento se suministró macroalgas Padina gynmospora y Sargasum sp, y biofilm artificial (calamar seco, agar, Spirulina sp, vitaminas, cáscara y yema de huevo, macroalgas). Los animales se mantuvieron en estos sistemas hasta su uso para los experimentos programados en el proyecto.

Citations bibliographiques

  1. Ocaño-Higuera, V.M., A.N. Maeda-Martínez, M.E. Lugo-Sánchez & R. Pacheco-Aguilar. 2005. The effect of transportation on the physiological condition and free amino acids composition of Nodipecten subnodosus adductor muscle. 15th Intenational Pectinid Workshop, Mooloolaba, April 20-26: 120.
  2. Velasco LA. 2008. Acondicionamiento reproductivo de los pectínidos de interés comercial de Colombia. En: Velasco LA (Ed). Biología y cultivo de los pectínidos de interés comercial de Colombia. Fondo de Publicaciones de la Universidad del Magdalena, Santa Marta, pp: 65-86

Métadonnées additionnelles

[autoridad]ANLA[numero]1293[titular]Universidad del Magdalena[nit o cedula]891.780.111-8[fecha]2013-12-18

Identifiants alternatifs 10.15472/qjb14z
1ad7253a-4e19-42be-9386-1e6d1caca0f4
https://ipt.biodiversidad.co/sibm/resource?r=produccion_de_post-larvas_del_erizo_blanco