Producción en cautiverio del capitán de la sabana, Eremophilus mutisii, con fines de conservación

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El capitán de la sabana (Eremophilus mutisii) es una especie endémica de Colombia, ubicada en la región del altiplano cundiboyacese; esta especie se encuentra en estado vulnerable según la lista roja de peces dulce acuícolas de Colombia que otorga esta clasificación según las categorías establecidas por la UICN (Unión Internacional para Conservación de la Naturaleza) (MOJICA, 2012). E. mutisii ha sido considerado como un silurido con potencial acuícola de aguas frías; esta especie se caracteriza por ser solitaria y tolerar bajos niveles de oxígeno disuelto (CALA & RODRÍGUEZ, 1996) , razón por la cual esta se ha contemplado como una opción nutricional y económica para las comunidades campesinas de la región. Para desarrollar un sistema de producción de E. mutisii, es necesario desarrollar técnicas de reproducción y crianza consolidadas y estandarizadas. Para esto se han realizado estudios de reproducción inducida, los cuales han logrado de manera exitosa reproducir la especie en cautiverio a través de protocolos de manejo hormonal (GONZÁLEZ & ROSADO, 2005); sin embargo en la fase larvaria no existen estudios reportados. Los trabajos sobre las larvicultura de peces son necesarios para la comprensión del papel biológico, la sobrevivencia y los mecanismos funcionales como la movilidad, la alimentación y la respiración (OSSE, 1990) (PAES, 2008). Dada la diversidad de especies de peces, estos presentan variaciones en su sistema digestivo las cuales están relacionadas con el hábito alimenticio, tipo de alimento ingerido, edad, talla, peso corporal y ambiente, lo que puede influir en la presencia, posición, forma y tamaño de un órgano particular. (MURRAY, 1994) (BALDISSEROTTO, 2009) (MORAES G. A., 2014). Las descripciones anatomícas e histologicas del tracto digestivo son fundamentales, debido a que estas proporcionan información sobre la características morfológicas, posición y tamaño de boca, tubo digestivo, tamaño de órganos, fisiología de la digestión, hábito alimenticio, salud de las especies y calidad del ambiente, lo cual contribuye a establecer el desarrollo de un comportamiento alimentario a través de las preferencias alimenticias, lo cual es útil para estudios nutricionales, preparación de raciones y manejo en la alimentación (KUBITZA, 1999) (NORTON, 1991). Por tanto el objetivo de este trabajo fue realizar la descripción del sistema digestivo a nivel histológico en la fase de larva del pez capitán de la sabana, destacando los cambios más significativos. Los resultados obtenidos contribuirán al conocimiento de los requerimientos nutricionales en las primeras fases de desarrollo y consecuentemente en la conservación de la especie.

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UDCA D I (2019): Producción en cautiverio del capitán de la sabana, Eremophilus mutisii, con fines de conservación. v2.1. Universidad de Ciencias Aplicadas y Ambientales (U.D.C.A). Dataset/Occurrence. https://doi.org/10.15472/tlxiqi

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Keywords

Capitán de la Sabana Conservación Larvicultura Genética de poblaciones Reproducción en cautiverio; Occurrence; Observation

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Geographic Coverage

Represa del Sisga - Cundinamarca

Bounding Coordinates South West [5.04, -73.739], North East [5.099, -73.692]

Taxonomic Coverage

Eremophilus mutisii

Species  Eremophilus mutisii (Capitán de la Sabana)

Temporal Coverage

Start Date / End Date 2017-06-01 / 2017-12-31

Project Data

El capitán de la sabana (Eremophilus mutisii) es una especie endémica de Colombia, ubicada en la región del altiplano cundiboyacese; esta especie se encuentra en estado vulnerable según la lista roja de peces dulce acuícolas de Colombia que otorga esta clasificación según las categorías establecidas por la UICN (Unión Internacional para Conservación de la Naturaleza) (MOJICA, 2012). E. mutisii ha sido considerado como un silurido con potencial acuícola de aguas frías; esta especie se caracteriza por ser solitaria y tolerar bajos niveles de oxígeno disuelto (CALA & RODRÍGUEZ, 1996) , razón por la cual esta se ha contemplado como una opción nutricional y económica para las comunidades campesinas de la región. Para desarrollar un sistema de producción de E. mutisii, es necesario desarrollar técnicas de reproducción y crianza consolidadas y estandarizadas. Para esto se han realizado estudios de reproducción inducida, los cuales han logrado de manera exitosa reproducir la especie en cautiverio a través de protocolos de manejo hormonal (GONZÁLEZ & ROSADO, 2005); sin embargo en la fase larvaria no existen estudios reportados. Los trabajos sobre las larvicultura de peces son necesarios para la comprensión del papel biológico, la sobrevivencia y los mecanismos funcionales como la movilidad, la alimentación y la respiración (OSSE, 1990) (PAES, 2008). Dada la diversidad de especies de peces, estos presentan variaciones en su sistema digestivo las cuales están relacionadas con el hábito alimenticio, tipo de alimento ingerido, edad, talla, peso corporal y ambiente, lo que puede influir en la presencia, posición, forma y tamaño de un órgano particular. (MURRAY, 1994) (BALDISSEROTTO, 2009) (MORAES G. A., 2014). Las descripciones anatomícas e histologicas del tracto digestivo son fundamentales, debido a que estas proporcionan información sobre la características morfológicas, posición y tamaño de boca, tubo digestivo, tamaño de órganos, fisiología de la digestión, hábito alimenticio, salud de las especies y calidad del ambiente, lo cual contribuye a establecer el desarrollo de un comportamiento alimentario a través de las preferencias alimenticias, lo cual es útil para estudios nutricionales, preparación de raciones y manejo en la alimentación (KUBITZA, 1999) (NORTON, 1991). Por tanto el objetivo de este trabajo fue realizar la descripción del sistema digestivo a nivel histológico en la fase de larva del pez capitán de la sabana, destacando los cambios más significativos. Los resultados obtenidos contribuirán al conocimiento de los requerimientos nutricionales en las primeras fases de desarrollo y consecuentemente en la conservación de la especie.

Title Producción en cautiverio del capitán de la sabana, Eremophilus mutisii, con fines de conservación
Identifier 2015/00020/001
Funding Universidad de Ciencias Aplicadas y Ambientales U.D.C.A y Colciencias - Contrato 541 - 2014
Study Area Description Represa del Sisga en el Altiplano Cundiboyasence.
Design Description El objetivo de este trabajo fue realizar la descripción del sistema digestivo a nivel histológico en la fase de larva del pez capitán de la sabana, destacando los cambios más significativos. Los resultados obtenidos contribuirán al conocimiento de los requerimientos nutricionales en las primeras fases de desarrollo y consecuentemente en la conservación de la especie. Las larvas utilizadas en el presente estudio fueron obtenidas de reproductores maduros de capitán de la sabana capturados en la represa del Sisga, ubicada en el municipio de Choncontá, Cundinamarca (5°05’17 N 73°43’18W). Estos peces fueron transportados al laboratorio ubicado en las instalaciones de la Unidad Académica El Remanso de la Universidad de Ciencias Aplicadas y Ambientales de Colombia sede Bogotá, la cual se encuentra ubicada a 2600 m.s.n.m y temperatura media entre 9°C y 20 °C IDEAM, (2016). Para la recepción de los animales en el laboratorio, se contó con 4 tanques de 250 litros de agua, cada uno; provistos de aireación constante en un sistema cerrado de recirculación de agua. Una vez adaptados los animales al cautiverio, se procedió a realizar el protocolo de inducción hormonal con extracto de hipófisis de carpa (EPC). El protocolo utilizado fue el propuesto por (GONZÁLEZ & ROSADO, 2005), con modificaciones, así: primera dosis hembra: 0,25 mg/kg de peso de la hembra, segunda dosis hembra: 0,5 mg/Kg de peso de la hembra (28 horas después de la primera dosis), tercera dosis hembra: 5 mg/Kg de peso de la hembra (12 horas después de la segunda dosis). Dosis única machos: 4 mg/kg de peso de cada macho (A la misma hora de la tercera dosis de la hembra). El número de animales utilizados en el protocolo de reproducción fue de 3 machos x 2 hembras. Veinticuatro horas después de la última aplicación hormonal los ovocitos y el semen fueron obtenidos por presión abdominal, el proceso de fertilización se realizó mezclando el esperma y los ovocitos, luego se adicionó a la mezcla agua para activar los espermatozoides y permitir la hidratación de los óvulos. Una vez fecundados, se trasladaron a incubadoras tipo bandeja en tanques de plástico de 250 L con sistema de recirculación, filtro biológico y ambiente controlado con una temperatura promedio de 13°±1°C. Las larvas eclosionaron a las 72 horas post fertilización (HPF) y a partir de allí, se procedió a hacer la toma de muestras cada 6 horas desde la hora 6 post eclosión (PE) hasta la hora 78 (PE) y cada 12 horas desde la hora 96 (PE) hasta la hora 342 (PE). Para el estudio se tomaron en total 18 muestras de 10 larvas cada una, desde la hora 6 hasta la hora 342 que corresponde al día 15 post eclosión (PE). Fijación de Larvas Los individuos muestreados se sacrificaron en sobredosis de MS 222 (200 ppm) y se fijaron en formol bufferado al 4%, posteriormente se incluyeron en parafina y se realizaron cortes sagitales de 6-8 um, las láminas se colorearon con H-E, Ácido tricrómico y Alcian Blue, para demostrar la presencia de glicógeno y de mucopolisacáridos neutros (Culling, 1974). Esta rutina se realizó en el Laboratorio de Histopatología de la Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia de la Universidad Nacional de Colombia, sede Bogotá. Toma de imágenes digitales El registro fotográfico y análisis de las láminas histológicas fue realizado en un microscopio Nikon eclipse E-600 y cámara digital Nikon DXM 1200.

The personnel involved in the project:

Sampling Methods

Ejemplares adultos fueron transportados al laboratorio ubicado en las instalaciones de la Unidad Académica El Remanso de la Universidad de Ciencias Aplicadas y Ambientales de Colombia sede Bogotá, la cual se encuentra ubicada a 2600 m.s.n.m y temperatura media entre 9°C y 20 °C IDEAM, (2016). Para la recepción de los animales en el laboratorio, se contó con 4 tanques de 250 litros de agua, cada uno; provistos de aireación constante en un sistema cerrado de recirculación de agua. Una vez adaptados los animales al cautiverio, se procedió a realizar el protocolo de inducción hormonal con extracto de hipófisis de carpa (EPC).

Study Extent Represa del Sisga, ubicada en el municipio de Choncontá, Cundinamarca (5°05’17 N 73°43’18W).

Method step description:

  1. Las larvas utilizadas en el presente estudio fueron obtenidas de reproductores maduros de capitán de la sabana capturados en la represa del Sisga, ubicada en el municipio de Choncontá, Cundinamarca (5°05’17 N 73°43’18W). Estos peces fueron transportados al laboratorio ubicado en las instalaciones de la Unidad Académica El Remanso de la Universidad de Ciencias Aplicadas y Ambientales de Colombia sede Bogotá, la cual se encuentra ubicada a 2600 m.s.n.m y temperatura media entre 9°C y 20 °C IDEAM, (2016). Para la recepción de los animales en el laboratorio, se contó con 4 tanques de 250 litros de agua, cada uno; provistos de aireación constante en un sistema cerrado de recirculación de agua. Una vez adaptados los animales al cautiverio, se procedió a realizar el protocolo de inducción hormonal con extracto de hipófisis de carpa (EPC). El protocolo utilizado fue el propuesto por (GONZÁLEZ & ROSADO, 2005), con modificaciones, así: primera dosis hembra: 0,25 mg/kg de peso de la hembra, segunda dosis hembra: 0,5 mg/Kg de peso de la hembra (28 horas después de la primera dosis), tercera dosis hembra: 5 mg/Kg de peso de la hembra (12 horas después de la segunda dosis). Dosis única machos: 4 mg/kg de peso de cada macho (A la misma hora de la tercera dosis de la hembra). El número de animales utilizados en el protocolo de reproducción fue de 3 machos x 2 hembras. Veinticuatro horas después de la última aplicación hormonal los ovocitos y el semen fueron obtenidos por presión abdominal, el proceso de fertilización se realizó mezclando el esperma y los ovocitos, luego se adicionó a la mezcla agua para activar los espermatozoides y permitir la hidratación de los óvulos. Una vez fecundados, se trasladaron a incubadoras tipo bandeja en tanques de plástico de 250 L con sistema de recirculación, filtro biológico y ambiente controlado con una temperatura promedio de 13°±1°C. Las larvas eclosionaron a las 72 horas post fertilización (HPF) y a partir de allí, se procedió a hacer la toma de muestras cada 6 horas desde la hora 6 post eclosión (PE) hasta la hora 78 (PE) y cada 12 horas desde la hora 96 (PE) hasta la hora 342 (PE). Para el estudio se tomaron en total 18 muestras de 10 larvas cada una, desde la hora 6 hasta la hora 342 que corresponde al día 15 post eclosión (PE). Fijación de Larvas Los individuos muestreados se sacrificaron en sobredosis de MS 222 (200 ppm) y se fijaron en formol bufferado al 4%, posteriormente se incluyeron en parafina y se realizaron cortes sagitales de 6-8 um, las láminas se colorearon con H-E, Ácido tricrómico y Alcian Blue, para demostrar la presencia de glicógeno y de mucopolisacáridos neutros (Culling, 1974). Esta rutina se realizó en el Laboratorio de Histopatología de la Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia de la Universidad Nacional de Colombia, sede Bogotá. Toma de imágenes digitales El registro fotográfico y análisis de las láminas histológicas fue realizado en un microscopio Nikon eclipse E-600 y cámara digital Nikon DXM 1200

Collection Data

Collection Name Colección Biológica U.D.C.A
Collection Identifier Registro Nacional de Colecciones: 051
Parent Collection Identifier UDCA
Specimen preservation methods Formalin
Curatorial Units Count 20 +/- 5 Ejemplares

Bibliographic Citations

  1. Gómez, E. M., Sánchez, C., & Mojica, C. P. (2018). Estudio histológico y morfológico del desarrollo embrionario del pez capitán de la sabana (Eremophilus mutisii). Revista UDCA Actualidad & Divulgación Científica, 21(2), 479-489.

Additional Metadata

Alternative Identifiers 10.15472/tlxiqi
0f5e6928-1fd2-4856-9c40-e800fe93fb05
https://ipt.biodiversidad.co/sib/resource?r=udca_capitansabana_201901