Insectos asociados a tres ventanas de la Orinoquia Colombiana - SULU I

Registros de Dados

Os dados deste recurso de ocorrência foram publicados como um Darwin Core Archive (DwC-A), que é o formato padronizado para compartilhamento de dados de biodiversidade como um conjunto de uma ou mais tabelas de dados. A tabela de dados do núcleo contém 383 registros.

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Versões

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Como citar

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Yara Ortiz C, Ospina Lopez L, Herrera Collazos E (2019): Insectos asociados a tres ventanas de la Orinoquia Colombiana - SULU I. v2. Fundación Omacha & World Wildlife Fund Colombia (WWF). Disponible en: https://doi.org/10.15472/jdhwi5

Direitos

Pesquisadores devem respeitar a seguinte declaração de direitos:

O editor e o detentor dos direitos deste trabalho é Fundación Omacha. This work is licensed under a Creative Commons Attribution Non Commercial (CC-BY-NC) 4.0 License.

GBIF Registration

Este recurso foi registrado no GBIF e atribuído ao seguinte GBIF UUID: fd43e69f-857c-48ff-a488-30049c0ce46d.  Fundación Omacha publica este recurso, e está registrado no GBIF como um publicador de dados aprovado por Colombian Biodiversity Information System.

Palavras-chave

Occurrence; Specimen; SULU I; Insectos; Hormigas; Mariposas; Mariposas diurnas; Sabanas Inundables; Orinoquia

Contatos

Cobertura Geográfica

La cobertura geográfica del conjunto de datos abarca tres ventanas en los municipios de Puerto Carreño, Puerto Gaitán y Santa Rosalia; en los departamentos de Meta y Vichada.

Cobertura Taxonômica

El conjunto de datos cuenta con un total de 383 registros: 159 registros corresponden a Mariposas (Lepidoptera) y 224 corresponden a Hormigas (Hymenoptera: Formicidae). Para Mariposas existen 6 registros identificados a familia, 18 a género, 100 a especie y 35 a subespecie; para Hormigas hay 176 registros identificados a nivel de género y 48 a nivel de especie.

Cobertura Temporal

Dados Sobre o Projeto

El proyecto SuLu se viene implementando en Colombia en un área de estudio de aproximadamente 14.9 millones de hectáreas en la porción colombiana de la cuenca del Orinoco y en Indonesia; específicamente en Sumatra y Kalimantan. El objetivo fue adaptar y desarrollar métodos y herramientas para la identificación de áreas con alto, medio y bajo riesgo en zonas de sabanas (basados en la Directiva 2009/28/CE del Parlamento Europeo y del Consejo -EU RES-D), las cuales fueron definidas con base en la riqueza de especies, contribuyendo de esta manera a la implementación y puesta en marcha de la Directiva europea. Como parte integral de este proyecto, se idenrtificaron cuatro ventanas de análisis en la región para profundizar sobre su biodiversidad. Estas ventanas fueron identificadas por especialistas siguiendo la metodología de áreas de alto valor de conservación (AVC), y a través de una alianza con varias organizaciones (Fundación Omacha, Calidris, Universidad del Tolima) se implementó un esfuerzo de caracterización biológica.

O pessoal envolvido no projeto:

Métodos de Amostragem

Se realizó la evaluación biológica de los insectos (hormigas y mariposas diurnas), asociados principalmente a sabanas, ubicadas en tres ventanas de la Orinoquía colombiana, Ventana 1: límites entre departamentos Meta, Vichada y Casanare; Ventana 2: Meta-Bita, Reserva La Pedregosa. Ventana 3: Primavera-Santa Rosalía. En el área de estudio se seleccionaron hábitats con cobertura arbórea y áreas abiertas para la captura de los organismos, en el primer caso se evaluaron principalmente fragmentos de matas de monte altas e inundables y en el segundo caso se evaluaron diversos ecotonos de sabana que incluyen hábitats lineales, pastizales alrededor de cuerpos de agua y morichales y finalmente asociaciones de pastos con arbustos dispersos.

Descrição dos passos do método:

1. Hormigas: En cada hábitat seleccionado, se trazaron transectos lineales de 100 metros de longitud en los que se ubicaron estaciones cada diez metros. En cada estación, se capturaron las hormigas utilizando tres métodos: procesamiento de hojarasca, cebos y búsqueda manual. Para el procesamiento de la hojarasca con trampas mini-winkler se tamizó la hojarasca encontrada en 1 m2 y se depositó la muestra resultante de este proceso en bolsas de malla, las cuales se suspendieron al interior de un saco de color negro (mini-winkler).
2. Durante 48 horas, la muestra se va secando y los insectos van migrando hacia el frasco colector, que contiene etanol 70% (Villareal et al. 2004; Fernández y Palacio 2006). La captura con cebos se realizó sobre un cuadrado de papel absorbente de 10x10 cm cebado con atún en aceite. Luego de una hora se revisó cuidadosamente el cebo, recolectando con pinzas y pinceles las hormigas que se encontraron en él. Finalmente, la captura manual se realizó durante 10 minutos, usando pinzas y pinceles para explorar troncos y frutos caídos, corteza de árboles, rocas, hojarasca y la vegetación arbustiva.
3. Las muestras fueron almacenadas en bolsas de cierre hermético y tubos para centrífuga eppendorf (1.5 ml) con alcohol al 70%, con sus respectivas etiquetas que incluyen datos de localidad, fecha, estación y método de captura; posteriormente se llevaron al laboratorio de investigación en zoología de la Universidad del Tolima para su procesamiento.
4. Adicionalmente, y con el fin de complementar el muestreo, se realizaron capturas manuales esporádicas dentro de los hábitats seleccionados y durante los recorridos hacia cada uno de ellos.
5. Una vez las muestras son llevadas al laboratorio debe iniciarse el proceso de limpieza y separación de los organismos, para continuar con su montaje, determinación y catalogación. Los organismos se separaron teniendo en cuenta zona-tipo de hábitat, transecto, estación y método de captura respectivo.
6. Montaje de hormigas. La colección seca consta de ejemplares en doble montaje, cada uno con su respectiva etiqueta geográfica y taxonómica. El doble montaje consiste en adherir las hormigas secas y extendidas a un triángulo de papel libre de ácido, utilizando alcohol polivinílico como pegamento. El triángulo con la hormiga y las etiquetas son atravesados por un alfiler entomológico. La colección de hormigas montadas se almacenará en cajas de madera tipo gaveta con cierre hermético para evitar invasiones de plagas que puedan dañar el material biológico. La colección en líquido se organizará en tubos para centrifuga (ependorf) de 1.5 ml con etanol 70% en los que se almacenaran organismos equivalentes a los etiquetados en la colección seca.
7. Determinación taxonómica. La determinación de las subfamilias y géneros de hormigas se realizó con las claves de Fernández y Palacio (2006). La ubicación taxonómica de los ejemplares a nivel de especie se realizó utilizando las claves de Mackay (1993), Mackay y Mackay (1986), Palacio (1999), recopiladas en Jiménez et al. (eds) (2007), Ortiz y Fernández (2011). Los organismos que no han sido identificados hasta el nivel de especie, se agruparon en morfotipos, debido a que algunos géneros presentan una gran complejidad taxonómica y en su mayoría carecen de revisiones y descripciones recientes. El arreglo taxonómico de los ejemplares se realizó siguiendo la propuesta de Bolton (2003). Las hormigas colectadas se depositaran en la Colección Zoológica de la Universidad del Tolima (CZUT-Hm).
8. Mariposas: Recolección de mariposas. Se realizó mediante redes entomológicas (jamas), construidas de acuerdo con las especificaciones de De Vries (1987) y que consisten en conos de tela de un metro de profundidad sobre una base cilíndrica de metal de 0,4 m de diámetro con un fuste metálico de dos (2) metros de longitud. Durante cada muestreo se realizaron mínimo cuatro (4) transectos de longitud definida (250 m) por día de campo en cada localidad, tratando de realizar mínimo dos (2) transectos por tipo de hábitat encontrado. Esta actividad fue realizada desde las 07:00 hasta 16:00 horas.
9. Los ejemplares recolectados fueron sacrificados por presión digital al tórax y se almacenaron en sobres triangulares de papel milano blanco, donde se registraron datos de captura (fecha, hora, condición climática, número de colecta, número de transecto, tipo de hábitat). Para su transporte se utilizó un recipiente hermético el cual contenía silicagel con el fin de evitar la proliferación de hongos por exceso de humedad.
10. Montaje y determinación de mariposas. Los ejemplares fueron sometidos al procedimiento de cámara húmeda por un período mínimo de 24 horas para su ablandamiento corporal y posterior montaje en láminas de poliestireno para su extensión alar (De la Maza, 1987; DeVries et al., 1997). Para la determinación taxonómica se utilizaron claves, ilustraciones y descripciones de De Vries (1987), De Vries et al. (1997), D’Abrera (1981, 1984, 1987a, 1987b, 1989, 1994, 1995), Fox y Real (1971), Andrade - C (1990, 1995), De la Maza (1987), Álvarez (1993), Constantino (1995), García - Robledo et al. (2002), Tyler et al. (1994), Le Crom et al (2002, 2004) y Willmott (2003). Además fueron revisadas bases de datos -con galería fotográfica- nacionales y extranjeras y cuando no fue posible la determinación de un ejemplar (o fue dudosa), se recurrió a la comparación con especímenes de colecciones de referencia a nivel nacional, Colección de mariposas diurnas del Instituto de Ciencias Naturales de la Universidad Nacional de Colombia (ICN-MHN) (Bogotá) y la Colección Zoológica de la Universidad del Tolima, sección Lepidópteros diurnos (CZUT-Ld) (Ibagué-Tolima).
11. Algunos ejemplares les fue necesario practicar la extracción de sus órganos genitales con el fin tener una determinación confiable hasta especie; para ello se dispuso cortar los últimos tres (3) segmentos abdominales, los cuales fueron sometidos a la acción de Hidróxido de Potasio KOH al 10% en baño maría por 12 minutos, con el fin de obtener ablandamiento de estructuras. Posteriormente las partes esclerotizadas fueron extraídas, limpiadas y almacenadas en una solución de glicerina y alcohol en proporción 1:1. Los nombres científicos y el arreglo taxonómico siguen lo propuesto en el checklist de mariposas neotropicales (Lamas, 2004).

Dados de Coleção

Citações bibliográficas

1. Bolton, B. 2003. Synopsis and classification of Formicidae. Memoirs of the American entomological Institute. 71: 1-370
2. Fernández, F. & Palacio, E.E. 2006. Familia Formicidae. pp. 521-538. En: Fernández, F.; Sharkey, M.J. (eds). Introducción a los Hymenoptera de la Región Neotropical. Bogotá, Colombia Sociedad Colombiana de Entomología y Universidad Nacional de Colombia. 894p.
3. Jiménez, E.; Lozano- Zambrano, F. H.; Rodríguez, J.; Ramírez, D. P. 2007. Conservación de hormigas cazadoras: rareza y endemismo. pp. 407-421. En: Jiménez, E.; Fernández, F.; Arias, T.M.; Lozano- Zambrano, F. H. (eds). Sistemática, biogeografía y conservación de las hormigas cazadoras de Colombia. Bogotá, Colombia. Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt. 622 p.
4. Mackay, W.P. 1993. A review of the New World ants of the genus Dolichoderus (Hymenoptera: Formicidae). Sociobiology. 22(1): 1-148.
5. Mackay, W & Mackay, E. 1986. Las hormigas de Colombia: Arrieras del género Atta (Hymenoptera: Formicidae). Revista Colombiana de Entomología. 12(1): 23-29
6. Ortiz, C & Fernández, F. 2011. Hormigas del Género Dolichoderus Lund (Formicidae:Dolichoderinae) em Colombia. Monografías de fauna de Colombia, Universidad Nacional de Colombia-Facultad de Ciencias. Instituto de Ciencias Naturales. Bogotá. 118 p.
7. Palacio, E. 1999. Hormigas Legionarias (Hymenoptera: Formicidae: Ecitoninae) de Colombia. pp. 117-189. En: Amat, G.; Andrade, M.G & Fernández, F. (eds). Insectos de Colombia. Revista de la Academia Colombiana de Ciencias Exactas, Físicas y Naturales. Vol. 2, 433 p.
8. Villareal H.; Álvarez, M.; Cordoba, S.; Escobar, F.; Fagua, G.; Gast, F.; Mendoza, H.; Ospina, M.; Umaña, A.M. 2004. Manual de métodos para el desarrollo de inventarios de Biodiversidad. Bogotá, Colombia: Instituto de investigaciones de recursos biológicos Alexander von Humbolt. 236 p.

Metadados Adicionais