Análisis de Integridad Biológica para el Parque Natural Regional Páramo del Duende. Convenio CVC- Univalle 108 de 2017

Última versión Publicado por Universidad del Valle en Feb 8, 2019 Universidad del Valle

Los Índices de Integridad Biológica (IIB) tienen en cuenta grupos naturales con alta capacidad de uso como indicadores de calidad ambiental, los cuales permiten descifrar factores ambientales tensionantes y ayudan a entender realidades complejas, a fin de mitigar los efectos de las intervenciones humanas sobre los ecosistemas naturales. En este sentido, el objetivo principal de esta investigación fue llevar a cabo el Análisis de Integridad Biológica para conocer el estado de conservación de la Reserva Forestal Protectora Regional Bitaco, teniendo en cuenta a los anfibios, reptiles, aves, mamíferos y plantas como bioindicadores.

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Corporación Autónoma Regional del Valle del Cauca - CVC y Universidad del Valle (2018): Análisis de Integridad Biológica en el Parque Natural Regional Páramo del Duende. Convenio 108 de 2017. Universidad del Valle. Disponible en: https://doi.org/10.15472/jeh0ic

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Palabras Clave

Occurrence; Observation; integridad; ecología; bioindicador; integridadbiológica

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Wilmar Bolívar- García
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Cobertura Geográfica

Colombia, Valle del Cauca, Municipio Río Frío, Corregimiento Fenicia, Parque Natural Regional Páramo del Duende

Coordenadas límite Latitud Mínima Longitud Mínima [4.034, -76.466], Latitud Máxima Longitud Máxima [4.587, -76.118]

Cobertura Taxonómica

En el grupo de las plantas se censaron 391 individuos de plantas superiores (Magnoliopsida) pertenecientes a 44 especies distribuidas en 28 familias botánicas; las familias con mayor riqueza para toda la comunidad de plantas fueron en orden de importancia: Rubiaceae, Cyatheaceae, Melastomataceae y Lecythidaceae. El muestreo de aves permitió registrar en los bosques naturales 90 especies, 25 familias y 10 órdenes, de los cuales, cuatro fueron especies migratorias, una endémica y siete con algún grado de amenaza; el gremio alimenticio en el que se clasificó elmayor número de especies fue frugívoro - insectívoro (FI) con el 35,89 %. En el grupo de los mamíferos se registraron un total de 200 individuos pertenecientes a 34 especies, diez familias y seis órdenes. La familia mayor representada fue Phyllostomidae seguida de Cricetidae. La cobertura más diversa fue el bosque con 114 individuos de 22 especies, siete familias y cuatro órdenes. En anfibios se registraron 349 individuos pertenecientes a 4 familias, 4 géneros y 12 especies; en general la familia Craugastoridae representó la mayor cantidad de especies (6 especies), las demás familias tuvieron la misma representatividad (1 especie). Finalmente, para los reptiles se encontraron 61 individuos pertenecientes a tres familias, 7 géneros y7 especies

Familia  Annonaceae,  Asteraceae,  Cricetidae,  Gesneriaceae,  Lauraceae,  Leguminosae,  Moraceae,  Myrtaceae,  Orchidaceae,  Rubiaceae
Género  Aniba,  Annona,  Anoura,  Anthurium,  Bactris,  Besleria,  Blakea,  Cecropia,  Centropogon,  Cinchona,  Clusia,  Dermanura,  Drymonia,  Elleanthus,  Epidendrum,  Equisetopsida,  Eschweilera,  Eucalyptus,  Euphorbia,  Faramea,  Ficus,  Gasteranthus,  Guarea,  Guzmania,  Handleyomys,  Hedyosmum,  Heliconia,  Inga,  Lepanthes,  Ligeophila,  Magnolia,  Maxillaria,  Miconia,  Microrizomys,  Myotis,  Myrcianthes,  Ocotea,  Ornithocephalus,  Palicourea,  Peperomia,  Pilea,  Platyrrhinus,  Platystele,  Pleurothallis,  Psychotria,  Rhipidomys,  Sapium stylare Müll. Arg.,  Scaphyglottis,  Spirotheca,  Stelis,  Telipogon,  Thomasomys,  Thyroptera,  Wettinia
Subgénero  Piper
Infragenericname  Scytalopus vicinior Zimmer, 1939
Especie  Adelomyia melanogenys (Fraser, 1840),  Aglaiocercus kingii (Hartert, 1898),  Aiphanes simplex Burret,  Amazilia franciae (Bourcier & Mulsant, 1846),  Amazilia saucerottei (DeLattre & Bourcier, 1846),  Amazilia tzacatl (de la Llave, 1833),  Anabacerthia striaticollis Lafresnaye, 1840,  Anisognathus somptuosus (Lesson, 1831),  Arremon brunneinucha (Lafresnaye, 1839),  Artibeus lituratus (Olfers, 1818),  Atlapetes albinucha (Lafresnaye & d'Orbigny, 1838),  Aulacorhynchus albivitta (Boissonneau, 1840),  Aulacorhynchus haematopygus (Gould, 1835),  Basileuterus culicivorus (Deppe, 1830),  Basileuterus tristriatus (von Tschudi, 1844),  Bassaricyon neblina Helgen, Pinto, Kays, Helgen, Tsuchiya, Quinn, Wilson & Maldonado, 2013,  Begonia libera (L.B. Sm. & B.G. Schub.) L.B. Sm. & B.G. Schub.,  Besleria comosa C.V. Morton,  Besleria decipiens C.V. Morton,  Besleria formosa C.V. Morton,  Besleria ventricosa C.V. Morton,  Billia columbiana Planch. & Linden,  Boissoneaua flavescens (Loddiges, 1832),  Bolitoglossa walkeri Brame & Wake, 1972,  Cacicus chrysonotus Lafresnaye & d'Orbigny, 1838,  Campylorhamphus pusillus (Sclater, 1860),  Cardellina canadensis (Linnaeus, 1766),  Carollia brevicauda (Schinz, 1821),  Carollia castanea H. Allen, 1890,  Carollia perspicillata (Linnaeus, 1758),  Catharus ustulatus (Nuttall, 1840),  Cercosaura argulus Peters, 1862,  Cerdocyon thous (Linnaeus, 1766),  Chamaeza mollissima Sclater, 1855,  Chlorochrysa nitidissima Sclater, 1873,  Chlorornis riefferii (Boissonneau, 1840),  Chlorospingus semifuscus Sclater & Salvin, 1873,  Choloepus hoffmanni Petters, 1858,  Clelia clelia (Daudin, 1803),  Clusia ellipticifolia Cuatrec.,  Clusia laurifolia Planch. & Triana,  Coeligena coeligena (Lesson, 1833),  Coeligena torquata (Boissonneau, 1840),  Colaptes rubiginosus (Swainson, 1820),  Colibri coruscans (Gould, 1846),  Colibri delphinae (Lesson, 1839),  Columnea dimidiata (Benth.) Kuntze,  Columnea filipes Oliv.,  Columnea fuscihirta L.P. Kvist & L.E. Skog,  Conirostrum albifrons Lafresnaye, 1842,  Creurgops verticalis Sclater, 1858,  Cyanocorax yncas (Boddaert, 1783),  Cyathea caracasana (Klotzsch) Domin,  Cyclarhis nigrirostris Lafresnaye, 1842,  Cyrtochilum flexuosum Kunth,  Dasypus novemcinctus Linnaeus, 1758,  Dendrocolaptes picumnus Lichtenstein, 1820,  Dendropsophus colombianus (Boettger, 1892),  Desmodus rotundus (É. Geoffroy, 1810),  Dichaea morrisii Fawc. & Rendle,  Dictyostega orobanchoides (Hook.) Miers,  Diglossa albilatera Lafresnaye, 1843,  Diglossa caerulescens Sclater, 1856,  Diglossa cyanea (Lafresnaye, 1840),  Dryocopus lineatus (Linnaeus, 1766),  Elaenia frantzii Lawrence, 1865,  Elleanthus aurantiacus (Lindl.) Rchb. f.,  Epidendrum cf. Tropinectarium Hágsater & E. Santiago,  Eptesicus brasiliensis (Demarest, 1819),  Eriocnemis mosquera (DeLattre & Bourcier, 1846),  Eschweilera sessilis A.C. Sm.,  Euphorbia cestrifolia Kunth,  Geissanthus bogotensis Mez,  Glossophaga soricina (Pallas, 1766),  Grallaria flavotincta Sclater, 1877,  Guarea kunthiana A. Juss.,  Guzmania coriostachya (Griseb.) Mez,  Haplophaedia aureliae (Bourcier & Mulsant, 1846),  Hedyosmum bonplandianum Kunth,  Hedyosmum goudotianum Solms,  Hemitriccus granadensis (Hartlaub, 1843),  Henicorhina leucophrys (von Tschudi, 1844),  Henicorhina leucosticta (Cabanis, 1847),  Heteromys australis Thomas, 1901,  Icterus chrysater (Lesson, 1844),  Iridosornis porphyrocephalus (Sclater, 1856),  Kohleria affinis (Fritsch) Roalson & Boggan,  Lepanthes foreroi P. Ortiz, O. Pérez & E. Parra,  Lepidoblepharis duolepis Ayala & Castro, 1983,  Lepidocolaptes lacrymiger (Des Murs, 1849),  Leptopogon rufipectus (Lafresnaye, 1846),  Leptotila verreauxi Bonaparte, 1861,  Lophotriccus pileatus (Tschudi, 1844),  Magnolia hernandezii (Lozano) Govaerts,  Malacoptila mystacalis (Lafresnaye, 1850),  Masdevallia caesia Roezl,  Maxillaria notylioglossa Rchb. f.,  Maxillaria sect. arachnites Christenson,  Melanerpes formicivorus (Swainson, 1827),  Miconia benthamiana Triana,  Miconia cf. ferruginea (Desr.) DC.,  Miconia psychrophila Naudin,  Microcerculus marginatus (Sclater, 1855),  Milvago chimachima (Vieillot, 1816),  Mionectes oleagineus (Lichtenstein, 1823),  Mionectes striaticollis (D'Orbigny & Lafresnaye, 1837),  Momotus aequatorialis Gould, 1858,  Morphnarchus princeps (Sclater, 1865),  Myadestes ralloides (D'Orbigny, 1840),  Myioborus miniatus (Swainson, 1827),  Myiothlypis coronata (von Tschudi, 1844),  Nectandra lineata (Kunth) Rohwer,  Nephelomys pectoralis (J.A. Allen, 1912),  Nothocercus julius (Bonaparte, 1854),  Nyctidromus albicollis (Gmelin, 1789),  Ocreatus underwoodii (Lesson, 1832),  Odontoglossum luteopurpureum Lindl.,  Odontophorus hyperythrus Gould, 1858,  Otoba lehmannii (AC Sm.) AH Gentry,  Palicourea angustifolia Kunth,  Palicourea calophlebia Standl.,  Palicourea cogolloi C.M. Taylor,  Palicourea pyramidalis Standl.,  Patagioenas cayennensis (Bonnaterre, 1792),  Phaethornis guy (Lesson, 1833),  Phaetornis syrmatophorus (Gould, 1851),  Pharomachrus auriceps (Gould, 1842),  Phyllanthus niruri L.,  Phyllostomus discolor Wagner, 1843,  Piaya cayana (Linnaeus, 1766),  Pionus menstruus (Linnaeus, 1766),  Pipreola lubomirskii Taczanowski, 1879,  Pipreola riefferii (Boissonneau, 1840),  Piranga rubra (Linnaeus, 1758),  Piranga rubriceps Gray, 1844,  Pitangus sulphuratus (Linnaeus, 1766),  Platyrrhinus vittatus (Peters, 1860),  Pleurothallis chloroleuca Lindl.,  Pleurothallis hartwegii Lindl.,  Pleurothallis lindenii Lindl.,  Pleurothallis sect. Macrophyllae-fasciculatae Lindl.,  Pogonotriccus ophthalmicus (Taczanowski, 1874),  Pogonotriccus poecilotis (Sclater, 1862),  Pristimantis achatinus (Boulenger, 1898),  Pristimantis brevifrons (Lynch, 1981),  Pristimantis calcaratus (Boulenger, 1908),  Pristimantis cf. brevifrons (Lynch, 1981),  Pristimantis cf. calcaratus (Boulenfer, 1908),  Pristimantis cf. ptochus (Lynch, 1998),  Pristimantis erythropleura (Boulenger, 1896),  Pristimantis orpacobates (Lynch, Ruíz-Carranza and Ardila-Robayo, 1994),  Pristimantis palmeri (Boulenger, 1912),  Pristimantis ptochus (Lynch, 1998),  Psittacara wagleri (Gray, GR, 1845),  Ptychoglossus stenolepis (Boulenger, 1908),  Pygochelidon cyanoleuca (Vieillot, 1817),  Pyrocephalus rubinus (Boddaert, 1783),  Pyrrhomyias cinnamomeus (D´Orbigny & Lafresnaye, 1837),  Racinaea subalata (André) M.A. Spencer & L.B. Sm.,  Ramphocelus flammigerus (Jardine & Selby, 1833),  Rhinella paraguas Grant & Bolívar-García, 2014,  Rupornis magnirostris (Gmelin, 1788),  Scaphosepalum swertiifolium (Rchb. f.) Rolfe,  Schefflera ferruginea (Willd. ex Schult.) Harms,  Scytalopus latrans Hellmayr, 1924,  Setophaga fusca (Statius Muller, 1776),  Solanum dolosum C.V. Morton ex S. Knapp,  Sphaeradenia asplundii (Harling) Harling,  Sphenopsis frontalis (Tschudi, 1844),  Sporathraupis cyanocephala (d'Orbigny & Lafresnaye, 1837),  Sporophila nigricollis (Vieillot, 1823),  Stelgidopteryx ruficollis (Vieillot, 1817),  Sturnira bidens (Tomas, 1915),  Sturnira erythromos (Tschudi, 1844),  Sylvilagus brasiliensis (Linnaeus, 1758),  Synallaxis unirufa Lafresnaye, 1843,  Syndactyla subalaris (Sclater, 1859),  Tangara arthus Lesson, 1832,  Tangara episcopus (Linnaeus, 1766),  Tangara labradorides (Boissonneau, 1840),  Tangara nigroviridis (Lafresnaye, 1843),  Tangara ruficervix (Prévost & des Murs, 1846),  Tangara vassorii (Boissonneau, 1840),  Tangara vitriolina (Cabanis, 1850),  Tangara xanthocephala (Tschudi, 1844),  Tetrorchidium rubrivenium Poepp.,  Thamnophilus atrinucha Salvin & Godman, 1892,  Thamnophilus unicolor (Sclater, 1859),  Thraupis palmarum (Wied, 1821),  Todirostrum cinereum (Linnaeus, 1766),  Troglodytes aedon Vieillot, 1809,  Trogon collaris Vieillot, 1817,  Trogon personatus Gould, 1842,  Turdus fuscater d'Orbigny & Lafresnaye, 1837,  Turdus ignobilis Sclater, PL, 1858,  Turdus serranus Tschudi, 1844,  Tyrannus melancholicus Vieillot, 1819,  Veniliornis dignus (Sclater & Salvin, 1877),  Vismia ferruginea Kunth,  Xiphorhynchus triangularis (Lafresnaye, 1842),  Zenaida auriculata (Des Murs, 1847),  Zentrygon frenata (Tschudi, 1843),  Zimmerius chrysops (Sclater, 1859),  Zonotrichia capensis (Müller, 1776)

Cobertura Temporal

Fecha Inicial / Fecha Final 2018-02-07 / 2019-06-12

Datos del Proyecto

Los Índices de Integridad Biológica (IIB) tienen en cuenta grupos naturales con alta capacidad de uso como indicadores de calidad ambiental, los cuales permiten descifrar factores ambientales tensionantes y ayudan a entender realidades complejas, a fin de mitigar los efectos de las intervenciones humanas sobre los ecosistemas naturales. En este sentido, el objetivo principal de esta investigación fue llevar a cabo el Análisis de Integridad Biológica para conocer el estado de conservación del Parque Natural Regional Páramo del Duende, teniendo en cuenta a los anfibios, reptiles, aves, mamíferos y plantas como bioindicadores.

Título Análisis de Integridad Biológica para el Parque Natural Regional Páramo del Duende_Convenio CVC- Univalle 108 de 2017
Fuentes de Financiación Corporación Autónoma Regional del Valle del Cauca- Universidad del Valle
Descripción del Área de Estudio El Parque Natural Regional Páramo del Duende (PNR Páramo del Duende), y su zona amortiguadora hace parte de la subcuenca del río Riofrío y la subcuenca del río Calima. Los límites del municipio de Calima-Darien están dentro de la subcuenca del río Calima, mientras que los municipios de Riofrío y Trujillo dentro de la subcuenca del río Riofrío. En términos generales, el complejo se caracteriza por un paisaje muy montañoso, de laderas disectadas y pendientes muy pronunciadas donde a medida que se aumenta la altitud se presentan áreas de intensa neblina y una superficie con un relieve ondulado de pendientes suaves y pequeños valles (CVC & Fedena 2004)
Descripción del Diseño Se realizaron cuatro jornadas de campo entre febrero y junio de 2018, en las cuales se identificaron dos tipos de hábitat contrastantes: los Bosques Naturales dentro del PNR Páramo del Duende (BN) y las Plantaciones forestles (pino y eucalipto) (PF) ubicadas en la zona con función amortiguadora. Se llevaron a cabo metodologías específicas por cada grupo biológico evaluado (anfibios, reptiles, aves, mamíferos y plantas). La representatividad del muestreo se estableció utilizando los estimadores no paramétricos de riqueza Jack-knife 1 y 2, los cuales calculan el posible número de especies encontradas, si el esfuerzo de muestreo fuese más largo, además de singletones y doubletones los cuales representan las especies únicas para una y dos coberturas respectivamente. Se representó gráficamente la riqueza de especies por cobertura y los gremios tróficos (para aves y mamíferos) presentes en la zona de estudio. Con los datos obtenidos en campo se procedió a la evaluación de cada nivel del índice, con lo cual se obtiene el ponderado de Integridad Biológica para cada cobertura estudiada

Personas asociadas al proyecto:

Investigador Principal
Wilmar Bolívar- García
Investigador Principal
Alan Giraldo
Publicador
Eliana Barona Cortés

Métodos de Muestreo

ANFIBIOS Y REPTILES Fase de campo: para la colecta de la herpetofauna en cada uno de los sitios de muestreo, se utilizó el método de transectas de banda estrecha, través de trayectos previamente establecidos de 80 m de longitud por 4 m de ancho. Los muestreos se llevaron a cabo en la mañana entre las 09:00-13:00 y en las horas de la noche entre las 19:00-23:00 horas. Para cada uno de los individuos colectados se llenó una ficha de campo en el que se registró información concerniente a la hora de captura así como datos ecológicos del sitio de encuentro para cada individuo AVES La técnica de muestreo empleada para este grupo biológico fue la observación directa o captura visual y la captura pasiva. • Captura visual u observación directa: se recorrieron senderos, bosques naturales y plantaciones. Se siguió la metodología de conteo por puntos de amplitud variable, la cual consiste en caminar lentamente y detenerse registrando los individuos visuales o auditivamente en cada punto esperando 10 minutos. Se seleccionaron 5 puntos en total, cada punto se ubicó cada 200 m para cubrir una longitud de 1 km para cada hábitat. Las actividades comportamentales como alimentación, percha, uso del hábitat (arborícola, arbustivo, terrestre, etc.) y tipo de alimento que consumen (insectos, vertebrados, frutos entre otros), fueron registradas. Los censos visuales se ejecutaron en las horas de la mañana entre las 06:00 y las 10:00 horas, y en la tarde entre las 16:00 y las 18:00 horas. • Captura pasiva: Se utilizaron en total seis redes de niebla con extensión de 12 x 2.5 m, con un ojo de malla de 16 mm y se ubicaron durante cuatro días en cada hábitat, sin embargo fueron reubicadas una vez dentro del mismo hábitat después de dos días con el fin de abarcar más área de estudio. Se realizaron revisiones cada hora con algunas excepciones media hora por la brizna, brisa de la niebla y el frío. Las redes operaron entre 6- 10 h y 14- 18h MAMÍFEROS VOLADORES Se utilizaron diez redes de niebla de 12 m de longitud, las cuales operaron entre las 18:00 y 22:00 horas abarcando el primer pico de actividad de los quirópteros. Las redes eran revisadas casa hora y se ubicaron en posibles sitios de paso para los murciélagos, como en senderos, bordes y claros de bosque. De cada individuo capturado se registró especie, sexo y edad, y posteriormente los individuos fueron liberados. El listado taxonómico de especies se realizó siguiendo la propuesta de Gardner 2007, con los ajustes realizados por Ramírez-Chaves et al. 2016 para los mamíferos de Colombia MAMÍFEROS TERRESTRES En cada cobertura fueron empleadas un total de 70 trampas (60 Sherman y 10 National) ubicadas a lo largo de transectos y espaciadas aproximadamente cada 10 metros (Figura 8A y B). La cantidad de transectos por zonas fue diferente ajustándose al relieve del sitio de trabajado, y la accesibilidad del mismo. Se utilizaron dos tipos de cebo: 1) maíz trillado con sardina en salsa de tomate y 2) avena con esencia de vainilla, maduro y papaya Adicionalmente, se instaló de manera simultánea una cámara trampa en cada zona de muestreo, la cual operó durante 7 días efectivos (Figura 8.D). Cada uno de los individuos capturados fue identificado a la menor categoría posible, fotografiado y se registraron datos de: sexo, peso y medidas morfológicas (longitud total, longitud pata, longitud oreja, longitud cola, etc.); posteriormente los individuos fueron liberados. PLANTAS Se caracterizó la flora vascular de cada cobertura vegetal o ecosistema escogido en el área protegida, en términos de la composición y estructura de la vegetación de cada sitio muestreado y el potencial de regeneración. Para la medición de la estructura de la flora leñosa de cada cobertura vegetal o ecosistema de la reserva, se siguió la metodología de cinturón de Gentry (1982). En cada cobertura se realizaron transectos lineales de 50 m de largo por 2 m de ancho para un área total muestreada por transecto de 100 m2. Para ello se usó una cuerda de 50 m seccionada cada 10 m, y se proyectó 1 m a cada lado de ésta con una vara. Se registró el CAP (circunferencia a la altura del pecho) y la altura total de los rametos de los individuos leñosos (i.e. árbol, arbusto y liana) que presentaron un DAP (diámetro a la altura del pecho) ≥ 2,5 m medido a 1,3 m de altura desde el suelo, y el hábito de crecimiento. El CAP se tomó con una cinta métrica y la altura se estimó a ojo. Para la medición del potencial de regeneración de la flora leñosa de cada cobertura vegetal o ecosistema, se realizaron cuatro (4) parcelas de 1 m2 en el área adyacente a cada transecto trazado en la medición de la estructura vegetal. Cada parcela se ubicó con una distancia entre ellas de 10 m, con lo cual la primera parcela estuvo en los primeros 10 m del transecto, la segunda a los 20 m, la tercera a los 30 m y la última a los 40 m. Se registraron las plántulas y juveniles

Área de Estudio El Parque Natural Regional Páramo del Duende (PNR Páramo del Duende), y su zona amortiguadora hace parte de la subcuenca del río Riofrío y la subcuenca del río Calima. Los límites del municipio de Calima-Darien están dentro de la subcuenca del río Calima, mientras que los municipios de Riofrío y Trujillo dentro de la subcuenca del río Riofrío. En términos generales, el complejo se caracteriza por un paisaje muy montañoso, de laderas disectadas y pendientes muy pronunciadas donde a medida que se aumenta la altitud se presentan áreas de intensa neblina y una superficie con un relieve ondulado de pendientes suaves y pequeños valles (CVC & Fedena 2004). En esta zona se identificaron dos tipos de hábitat contrastantes: los Bosques Naturales dentro del PNR Páramo del Duende (BN) y las Plantaciones forestles (pino y eucalipto) (PF) ubicadas en la zona con función amortiguadora A. Bosques Naturales del PNR Páramo del Duende (BN) Dentro del parque se trabajó la unidad de paisaje correspondiente a bosque, el cual presenta una densa cobertura de dosel lo que permite poca incidencia de luz al interior, además de presentarse una sensación térmica más fría, si se compara con el exterior del bosque B. Plantaciones forestales (Pino y eucalipto) en la zona con función amortiguadora (PF) Fueron estudiadas también las plantaciones forestales de la zona con función amortiguadora, las cuales son propiedad de la empresa Smurfit Kappa- Cartón de Colombia, ubicadas en el corregimiento La Gaviota, en el municipio de Calima- El Darien y corregimiento Fenicia, en el municipio de Río Frío. Estas plantaciones forestales comprenden cultivos de pino y eucalipto, los cuales se encuentran rodeados de cultivos de lulo, plátano y otros fragmentos de bosque

Descripción de la metodología paso a paso:

  1. La matriz de priorización y evaluación de la integridad biológica de los hábitats evaluados en la Reserva Forestal Protectora de Bitaco, ubicada en la cuenca del río Bitaco, estima y discrimina las diferentes variables de estado identificadas como indicadoras “biológicas” en los usos de tierra que conforman la línea de base. Está conformada por una matriz de análisis multinivel, en la que se registra a través de una jerarquía secuencial de mayor a menor, las variables de estado más significativas “niveles”; y que además condicionan el tipo, la riqueza, la distribución, la vulnerabilidad, las exigencias ecológicas y la abundancia de los indicadores determinados en los sistemas de estudio Esta matriz posee una sección de “entrada” que está constituida por los datos obtenidos en campo y analizados de cada uno de los grupos seleccionados como indicadores biológicos, según el protocolo de monitoreo propuesto. De igual forma posee una sección de salida, conformada por la valoración numérica de los indicadores evaluados para cada uno de los hábitats o sistemas analizados. Los niveles de análisis y valoración de los indicadores biológicos evaluados en las diferentes unidades de paisaje, han sido escogidos y jerarquizados en una matriz de importancia teniendo en cuenta información primaria y secundaria. Los datos ingresados en la matriz son producto de analizar la información generada en campo por cada grupo bioindicador evaluado y sobre cada una de las variables de estado que contempla. Desde el inicio y a medida que se avanza sobre esta, cada uno de los niveles o variables de estado confronta la información obtenida con las distintas categorías que para cada grupo bioindicador se ha asumido como discriminantes y puntúa un valor de referencia para dicho carácter sobre el nivel especifico.

Datos de la Colección

Nombre de la Colección Colección de Prácticas Zoológicas Universidad del Valle
Métodos de preservación de los ejemplares Alcohol,  Montado con alfileres,  Secado y prensado

Metadatos Adicionales

Identificadores Alternativos 10.15472/jeh0ic
https://ipt.biodiversidad.co/sib/resource?r=cvc108_duende