Inventario de Fauna Vertebrada de la Reserva Forestal Protectora Regional de los Cañones de los Ríos Melcocho y Santo Domingo

Description

Data Records

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García Morera Y, Salazar Giraldo E, Yépez Pérez E, Rivera Prieto D (2018): Inventario de Fauna Vertebrada de la Reserva Forestal Protectora Regional de los Cañones de los Ríos Melcocho y Santo Domingo. v1.0. Corporación Autónoma Regional de las cuencas de los ríos Negro y Nare - CORNARE. Dataset/Samplingevent. http://doi.org/10.15472/bstkpv

Rights

Researchers should respect the following rights statement:

The publisher and rights holder of this work is CORNARE - Corporación Autónoma Regional de las cuencas de los ríos Negro y Nare. This work is licensed under a Creative Commons Attribution (CC-BY) 4.0 License.

GBIF Registration

This resource has been registered with GBIF, and assigned the following GBIF UUID: d628bc9c-af63-49af-91b3-1a63c603feb2.  CORNARE - Corporación Autónoma Regional de las cuencas de los ríos Negro y Nare publishes this resource, and is itself registered in GBIF as a data publisher endorsed by Colombian Biodiversity Information System.

Keywords

Samplingevent

Contacts

Geographic Coverage

La cobertura geográfica de este conjunto de datos corresponde a las Veredas EL Porvenir, La Linda y El retiro del municipio de El Carmen de Viboral, departamento de Antioquia, jurisdicción de la Corporación Autónoma Regional de los Ríos Negro y Nare – CORNARE

Taxonomic Coverage

Este conjunto de datos corresponde a la información del inventario de Fauna realizado en el año 2015, en la Reserva Forestal Protectora Regional de los Cañones de los ríos Melcocho y Santo Domingo de la Jurisdicción de la Corporación Autónoma Regional de las cuencas de los Ríos Negro y Nare - CORNARE. Por lo que hay datos para el reino Animalia, y la clasificación taxonómica va hasta especie, género o en algunos casos hasta Familia.

Temporal Coverage

Project Data

El objetivo de este convenio fue realizar la caracterización biótica de la Reserva Forestal Protectora Regional de los: “Cañones de los ríos Melcocho y Santo Domingo” del municipio de El Carmen de Viboral, mediante inventarios de Fauna y Flora. Este trabajo brindó insumos para el proceso de descripción biofísica de la zona en la realización e implementación del Plan de Manejo Ambiental de la Reserva. Esta caracterización biótica permitió identificar la diversidad de especies de flora y fauna vertebrada en la zona y reconocer elementos objeto de conservación que puedan ayudar a la implementación de estrategias dentro del Plan de Manejo que permitan la conservación de la fauna y flora en la Reserva.

The personnel involved in the project:

Sampling Methods

Inventario de anfibios y reptiles (herpetofauna): Para el muestreo de anfibios y reptiles se empleó el Método de Encuentros Visuales (VES) (Crump & Scott, 1994), el cual consiste en la búsqueda y observación directa de las diferentes especies de herpetofauna en diversos microhábitat como hojas, troncos, árboles, arbustos, orillas de ríos y quebradas, charcas temporales, hojarasca, troncos caídos o bajo piedras. Además, mientras se llevó a cabo la búsqueda directa, se realizaron muestreos auditivos que consistieron en escuchar los cantos de anfibios para su posterior identificación. Este muestreo se realizó en diversas coberturas, las cuales hacen parte del área de influencia de la Reserva Forestal Protectora Regional de los Cañones de los ríos Melcocho y Santo Domingo, por dos observadores desde las 8:00 hasta las 12:00 horas y desde las 18:00 hasta las 22:00 horas, para un esfuerzo de muestreo estimado de ocho horas por persona por día, obteniendo un esfuerzo de muestro total de 120 horas por persona. La captura de anfibios y lagartijas se hizo de forma manual, y cuando fue necesario, los individuos fueron introducidos en bolsas plásticas de cierre hermético para su posterior identificación. Cada una ellas, contuvo en su interior material orgánico como hojas verdes y hojarasca húmeda con el fin de mantener un microclima adecuado para los individuos. La captura de serpientes se llevó a cabo con la ayuda de un gancho herpetológico para luego introducirlas en bolsas de tela para su identificación. En el momento de la observación o captura, se tomaron múltiples datos tales como determinación previa del individuo hasta el menor grado taxonómico, fecha, hora de observación, microhábitat, condiciones climáticas y actividad del animal. Así mismo, a los especímenes capturados se les tomaron diversas fotografías y luego fueron liberados en el mismo lugar donde fueron observados. Algunos animales se colectaron para efectos de precisión taxonómica o registro de la especie en la zona. Los individuos se sacrificaron con una solución de xilocaína al 2% que es inyectada al corazón de los animales (Simmons, 2002). Luego, se tomaron muestras de músculo, hígado o patas para posibles estudios filogenéticos, los cuales fueron depositados en viales de plásticos con una solución de alcohol al 98%. Posteriormente, con el fin de evitar descomposición y rigor mortis de los ejemplares, éstos fueron fijados rápidamente; para la fijación, se etiquetaron y sumergieron en formol al 10% entre 3 a 8 días (Mesa, 2006). Posteriormente, el individuo se colocó en un recipiente de plástico con tapa hermética ajustada, sobre el fondo del cual previamente se extendió papel embebido en formol al 10% (Angulo et al., 2006). Los individuos fueron depositados en recipientes de vidrio con alcohol al 70% libre de aditivos (Simmons 2002) e incluidos dentro de la colección herpetológica del Museo Herpetológico de Antioquia (MHUA) de la Universidad de Antioquia. Inventario de Mamíferos: Para lograr un inventario completo de la mastofauna del lugar, se emplearon diversos métodos a través de las diferentes coberturas vegetales (bosques, rastrojos y áreas intervenidas) y dentro de las mismas se abarcó el mayor número de microhábitat disponibles. Varias técnicas fueron empleadas, a fin de compensar las ventajas y desventajas de cada una de ellas (ver Voss y Emmons, 1996; Wilson et al., 1996, para una revisión). Se colectaron algunos especímenes de pequeños mamíferos terrestres y murciélagos para determinar con certeza su identificación taxonómica, debido a que las características que diferencian estas especies sólo pueden reconocerse al caracterizar su morfología interna (cráneo y dientes). Los animales colectados fueron sacrificados con una solución de xilocaína al 2% que es inyectada al corazón de los animales y fueron preparados en líquido (Alcohol al 96%) o en seco, procedimiento en el cual se le extraen los músculos internos y viseras y donde se le introduce algodón y alambre dulce para darle forma al espécimen, luego de esto los especímenes son puesto al sol para su secado y evitar la descomposición. De ese modo, los especímenes colectados fueron depositados en la Colección Teriológica de la Universidad de Antioquia (CTUA). Toda la información recogida en campo se consignó en formatos pre-diseñados, los cuales incluyeron fecha y hora de registro o captura, especie, tipo de trampa, medidas morfométricas, estado reproductivo, entre otros. Captura de pequeños mamíferos no voladores Una línea de trampas, consistente de 35 trampas Sherman® (3 x 3.5 x 9") y se colocaron a lo largo de un transecto de 400 m; las trampas fueron separadas entre sí por 10 m aproximadamente (Alternadas con las trampas Tomahawk). Estas trampas se ubicaron en el suelo (cerca de refugios, entre la hojarasca, matorrales, grietas, cerca de cursos de agua, etc.) y sotobosque (i.e. ramas y lianas por debajo de 3 m), tratando de aproximarlas a potenciales sitios de captura. Las trampas se revisaron y recebaron diariamente a las 08:00 horas. Como cebo se utilizó, una mezcla de mantequilla de maní, avena y esencia de vainilla o también con sardinas, para cubrir diferentes niveles tróficos, cebos dispuesto en pequeñas cantidades, los cuales fueron removidos y cambiados cada día. Los animales capturados se transportaron en bolsas de tela para su posterior identificación en campo mediante el uso de las claves pertinentes (Bonvicino et al. 2008; Gardner, 2008) hasta el nivel taxonómico que éstas lo permitieron (género, especie). Para cada individuo capturado se tomó la fecha de captura, tipo de trampa (Sherman o Tomahawk), altura de la misma (suelo, sotobosque), datos básicos del microhábitat, medidas morfométricas básicas (según Emmons y Feer, 1999), sexo, condición reproductiva, y edad. Luego de ser identificados, los animales se liberaron, y los que no pudieron ser identificados, se colectaron y prepararon según los procedimientos mencionados anteriormente. Captura de mamíferos voladores (Quirópteros) Las redes de niebla son una metodología empleada únicamente para vertebrados voladores y para los mamíferos es específica para el orden Chiroptera. Con el propósito de evaluar la composición del ensamblaje de los mamíferos voladores se emplearon 10 redes de niebla (mist-nets 38 mm) de 6 m de ancho (2,5 cm de ojo) y 3 m de altura. Estas redes se ubicaron a nivel del suelo entre los cero y 3 metros de altura, teniendo en cuenta áreas óptimas para el vuelo o forrajeo de los murciélagos: bordes y claros de bosque, corredores naturales, quebradas y cuerpos de agua, trochas, y plantas con frutos o flores usadas como alimento. Las redes estuvieron activas desde las 17:30 horas hasta las 22:00 horas, periodo que incluye la mayor actividad para este grupo de mamíferos; y fueron revisadas periódicamente (cada 30 minutos) o según actividad. Los murciélagos capturados se depositaron en bolsas de tela (algodón), para su determinación taxonómica en base a claves para especies (Linares, 1998; Muñoz, 2001; Simmons y Voss, 1998). Posteriormente se registraron en una libreta los datos de localidad, fecha, hora de captura, sexo, medidas morfométricas básicas (Emmons y Feer, 1999), sexo, condición reproductiva, y edad. Luego de ser identificados, los animales se liberaron y los que no pudieron ser identificados, se colectaron y prepararon según los procedimientos mencionados anteriormente. Muestreo de mamíferos medianos y grandes Para la capturas de mamíferos medianos se emplearon 5 trampas vivas tipo Tomahawk plegables de un tamaño de Ancho 0.3m x alto 0.2m x largo 0.5m, las cuales se ubicaron en estaciones sencillas a lo largo del mismo transecto de las trampas Sherman de forma equidistante cada 9 trampas Sherman, al igual que las trampas Sherman, las trampas Tomahawk fueron cebadas y revisadas a diario. Dado lo difícil en la captura de mamíferos medianos y grandes, se complementó esta metodología, realizando una búsqueda activa de rastros, huellas, excrementos, sitios de dormideros o comederos para verificar cada registro. Durante esta búsqueda también se registraron directamente (visualmente o por sonidos) la presencia de las especies. Estos recorridos se realizaron a la par de otras actividades (Aranda 2012) Para complementar esta información se usaron encuestas simples, donde se consignaron el tipo de fauna que está presente en la zona según la información proporcionada por los habitantes; además se instalaron cámaras trampa en algunos sitios de muestreo, estas cámaras trampa serán movidas a otros sitios para estimar la diversidad de fauna de la reserva, sobre todo de animales que no es posible captarlos por medio de los métodos mencionados anteriormente. Inventario de Aves La evaluación de la avifauna se realizó implementando varios métodos de muestreo, lo que permitió una mayor cantidad de registros e información en unidades de tiempo corto. Durante el primer día en cada uno de los sitios se realizó un reconocimiento del área de estudio y se designaron dos transectos de muestreo (6 transectos en total) sobre los cuales se llevó a cabo la ubicación de redes de niebla y los puntos de conteo. Redes de Niebla Para la metodología con redes de niebla se establecieron entre 10 y 16 redes de 6m de longitud, 2.6m de altura y 38 mm de ojo de malla para 10 redes y 22 mm para 6 redes en cada uno de los transectos (Ver esfuerzo de muestreo en Anexo 12) durante dos días, con un esfuerzo de muestreo de 4 días por sitio (12 días de redes en total). Las redes se ubicaron en puntos estratégicos para el paso de las aves, tales como filos de las montañas y transición entre hábitats como bosque-zonas abiertas y fueron abiertas por un tiempo mínimo de 6 horas al día entre las 06:00 y las 18:00 horas. Las aves capturadas fueron depositadas en bolsas de tela hasta su identificación taxonómica con la ayuda de la Guía de las Aves de Colombia (Hilty & Brown, 2001) y Birds of Northern South America an Identification Guide (Restall et al. 2007) y posteriormente se tomaron sus medidas morfológicas (Tabla 1). Después de medir los individuos se realizó un corte en la rectriz externa para evitar medir individuos recapturados, luego de esto las aves fueron liberadas. Los rasgos tomados en cada individuo fueron seleccionados por su fácil medición y fuerte poder explicativo frente a variaciones ambientales. Puntos de Conteo La metodología de puntos de conteo o censos se realizó en los dos transectos establecidos por cada sitio de muestreo, para un total de 6 transectos con una longitud de 1km cada uno. En cada transecto se fijaron 6 puntos de observación separados entre sí cada 200m, sumando un total de 36 puntos de observación en el área muestreada de la reserva. Los transectos fueron trazados a lo largo de caminos y senderos existentes en el área y abarcando diferentes coberturas del paisaje tales como coberturas boscosas, potreros, carreteras rurales, vegetación cercana a fuentes de agua (ríos y quebradas) y mosaicos de cultivos y espacios naturales. En cada punto de observación se registró el número de individuos observados en un radio de 50 m y escuchados en un radio de 100 m, anotando la distancia aproximada a la cual fue detectado cada individuo (Anexo 12). Cada transecto fue recorrido una vez entre las 6:00 y las 10:00 am realizando las observaciones en los puntos del transecto durante 15 minutos, para un total de 6 días efectivos en campo. Observación directa Durante los recorridos para la instalación y revisión de redes de niebla y durante el tiempo que no se evaluaba cuantitativamente en los puntos de conteo, se realizó el registro de aves mediante la observación directa con la ayuda de binoculares y se registraron todas las especies de aves observadas y escuchadas. Esta metodología se llevó a cabo durante las evaluaciones diurnas y nocturnas de trochas de ancho de banda fija y se complementó con evaluaciones al azar y registros casuales.

Method step description:

1. Inventario de anfibios y reptiles (herpetofauna): Para el muestreo de anfibios y reptiles se empleó el Método de Encuentros Visuales (VES) (Crump & Scott, 1994), el cual consiste en la búsqueda y observación directa de las diferentes especies de herpetofauna en diversos microhábitat como hojas, troncos, árboles, arbustos, orillas de ríos y quebradas, charcas temporales, hojarasca, troncos caídos o bajo piedras. Además, mientras se llevó a cabo la búsqueda directa, se realizaron muestreos auditivos que consistieron en escuchar los cantos de anfibios para su posterior identificación. Este muestreo se realizó en diversas coberturas, las cuales hacen parte del área de influencia de la Reserva Forestal Protectora Regional de los Cañones de los ríos Melcocho y Santo Domingo, por dos observadores desde las 8:00 hasta las 12:00 horas y desde las 18:00 hasta las 22:00 horas, para un esfuerzo de muestreo estimado de ocho horas por persona por día, obteniendo un esfuerzo de muestro total de 120 horas por persona. La captura de anfibios y lagartijas se hizo de forma manual, y cuando fue necesario, los individuos fueron introducidos en bolsas plásticas de cierre hermético para su posterior identificación. Cada una ellas, contuvo en su interior material orgánico como hojas verdes y hojarasca húmeda con el fin de mantener un microclima adecuado para los individuos. La captura de serpientes se llevó a cabo con la ayuda de un gancho herpetológico para luego introducirlas en bolsas de tela para su identificación. En el momento de la observación o captura, se tomaron múltiples datos tales como determinación previa del individuo hasta el menor grado taxonómico, fecha, hora de observación, microhábitat, condiciones climáticas y actividad del animal. Así mismo, a los especímenes capturados se les tomaron diversas fotografías y luego fueron liberados en el mismo lugar donde fueron observados. Algunos animales se colectaron para efectos de precisión taxonómica o registro de la especie en la zona. Los individuos se sacrificaron con una solución de xilocaína al 2% que es inyectada al corazón de los animales (Simmons, 2002). Luego, se tomaron muestras de músculo, hígado o patas para posibles estudios filogenéticos, los cuales fueron depositados en viales de plásticos con una solución de alcohol al 98%. Posteriormente, con el fin de evitar descomposición y rigor mortis de los ejemplares, éstos fueron fijados rápidamente; para la fijación, se etiquetaron y sumergieron en formol al 10% entre 3 a 8 días (Mesa, 2006). Posteriormente, el individuo se colocó en un recipiente de plástico con tapa hermética ajustada, sobre el fondo del cual previamente se extendió papel embebido en formol al 10% (Angulo et al., 2006). Los individuos fueron depositados en recipientes de vidrio con alcohol al 70% libre de aditivos (Simmons 2002) e incluidos dentro de la colección herpetológica del Museo Herpetológico de Antioquia (MHUA) de la Universidad de Antioquia. Inventario de Mamíferos: Para lograr un inventario completo de la mastofauna del lugar, se emplearon diversos métodos a través de las diferentes coberturas vegetales (bosques, rastrojos y áreas intervenidas) y dentro de las mismas se abarcó el mayor número de microhábitat disponibles. Varias técnicas fueron empleadas, a fin de compensar las ventajas y desventajas de cada una de ellas (ver Voss y Emmons, 1996; Wilson et al., 1996, para una revisión). Se colectaron algunos especímenes de pequeños mamíferos terrestres y murciélagos para determinar con certeza su identificación taxonómica, debido a que las características que diferencian estas especies sólo pueden reconocerse al caracterizar su morfología interna (cráneo y dientes). Los animales colectados fueron sacrificados con una solución de xilocaína al 2% que es inyectada al corazón de los animales y fueron preparados en líquido (Alcohol al 96%) o en seco, procedimiento en el cual se le extraen los músculos internos y viseras y donde se le introduce algodón y alambre dulce para darle forma al espécimen, luego de esto los especímenes son puesto al sol para su secado y evitar la descomposición. De ese modo, los especímenes colectados fueron depositados en la Colección Teriológica de la Universidad de Antioquia (CTUA). Toda la información recogida en campo se consignó en formatos pre-diseñados, los cuales incluyeron fecha y hora de registro o captura, especie, tipo de trampa, medidas morfométricas, estado reproductivo, entre otros. Captura de pequeños mamíferos no voladores Una línea de trampas, consistente de 35 trampas Sherman® (3 x 3.5 x 9") y se colocaron a lo largo de un transecto de 400 m; las trampas fueron separadas entre sí por 10 m aproximadamente (Alternadas con las trampas Tomahawk). Estas trampas se ubicaron en el suelo (cerca de refugios, entre la hojarasca, matorrales, grietas, cerca de cursos de agua, etc.) y sotobosque (i.e. ramas y lianas por debajo de 3 m), tratando de aproximarlas a potenciales sitios de captura. Las trampas se revisaron y recebaron diariamente a las 08:00 horas. Como cebo se utilizó, una mezcla de mantequilla de maní, avena y esencia de vainilla o también con sardinas, para cubrir diferentes niveles tróficos, cebos dispuesto en pequeñas cantidades, los cuales fueron removidos y cambiados cada día. Los animales capturados se transportaron en bolsas de tela para su posterior identificación en campo mediante el uso de las claves pertinentes (Bonvicino et al. 2008; Gardner, 2008) hasta el nivel taxonómico que éstas lo permitieron (género, especie). Para cada individuo capturado se tomó la fecha de captura, tipo de trampa (Sherman o Tomahawk), altura de la misma (suelo, sotobosque), datos básicos del microhábitat, medidas morfométricas básicas (según Emmons y Feer, 1999), sexo, condición reproductiva, y edad. Luego de ser identificados, los animales se liberaron, y los que no pudieron ser identificados, se colectaron y prepararon según los procedimientos mencionados anteriormente. Captura de mamíferos voladores (Quirópteros) Las redes de niebla son una metodología empleada únicamente para vertebrados voladores y para los mamíferos es específica para el orden Chiroptera. Con el propósito de evaluar la composición del ensamblaje de los mamíferos voladores se emplearon 10 redes de niebla (mist-nets 38 mm) de 6 m de ancho (2,5 cm de ojo) y 3 m de altura. Estas redes se ubicaron a nivel del suelo entre los cero y 3 metros de altura, teniendo en cuenta áreas óptimas para el vuelo o forrajeo de los murciélagos: bordes y claros de bosque, corredores naturales, quebradas y cuerpos de agua, trochas, y plantas con frutos o flores usadas como alimento. Las redes estuvieron activas desde las 17:30 horas hasta las 22:00 horas, periodo que incluye la mayor actividad para este grupo de mamíferos; y fueron revisadas periódicamente (cada 30 minutos) o según actividad. Los murciélagos capturados se depositaron en bolsas de tela (algodón), para su determinación taxonómica en base a claves para especies (Linares, 1998; Muñoz, 2001; Simmons y Voss, 1998). Posteriormente se registraron en una libreta los datos de localidad, fecha, hora de captura, sexo, medidas morfométricas básicas (Emmons y Feer, 1999), sexo, condición reproductiva, y edad. Luego de ser identificados, los animales se liberaron y los que no pudieron ser identificados, se colectaron y prepararon según los procedimientos mencionados anteriormente. Muestreo de mamíferos medianos y grandes Para la capturas de mamíferos medianos se emplearon 5 trampas vivas tipo Tomahawk plegables de un tamaño de Ancho 0.3m x alto 0.2m x largo 0.5m, las cuales se ubicaron en estaciones sencillas a lo largo del mismo transecto de las trampas Sherman de forma equidistante cada 9 trampas Sherman, al igual que las trampas Sherman, las trampas Tomahawk fueron cebadas y revisadas a diario. Dado lo difícil en la captura de mamíferos medianos y grandes, se complementó esta metodología, realizando una búsqueda activa de rastros, huellas, excrementos, sitios de dormideros o comederos para verificar cada registro. Durante esta búsqueda también se registraron directamente (visualmente o por sonidos) la presencia de las especies. Estos recorridos se realizaron a la par de otras actividades (Aranda 2012) Para complementar esta información se usaron encuestas simples, donde se consignaron el tipo de fauna que está presente en la zona según la información proporcionada por los habitantes; además se instalaron cámaras trampa en algunos sitios de muestreo, estas cámaras trampa serán movidas a otros sitios para estimar la diversidad de fauna de la reserva, sobre todo de animales que no es posible captarlos por medio de los métodos mencionados anteriormente. Inventario de Aves La evaluación de la avifauna se realizó implementando varios métodos de muestreo, lo que permitió una mayor cantidad de registros e información en unidades de tiempo corto. Durante el primer día en cada uno de los sitios se realizó un reconocimiento del área de estudio y se designaron dos transectos de muestreo (6 transectos en total) sobre los cuales se llevó a cabo la ubicación de redes de niebla y los puntos de conteo. Redes de Niebla Para la metodología con redes de niebla se establecieron entre 10 y 16 redes de 6m de longitud, 2.6m de altura y 38 mm de ojo de malla para 10 redes y 22 mm para 6 redes en cada uno de los transectos (Ver esfuerzo de muestreo en Anexo 12) durante dos días, con un esfuerzo de muestreo de 4 días por sitio (12 días de redes en total). Las redes se ubicaron en puntos estratégicos para el paso de las aves, tales como filos de las montañas y transición entre hábitats como bosque-zonas abiertas y fueron abiertas por un tiempo mínimo de 6 horas al día entre las 06:00 y las 18:00 horas. Las aves capturadas fueron depositadas en bolsas de tela hasta su identificación taxonómica con la ayuda de la Guía de las Aves de Colombia (Hilty & Brown, 2001) y Birds of Northern South America an Identification Guide (Restall et al. 2007) y posteriormente se tomaron sus medidas morfológicas (Tabla 1). Después de medir los individuos se realizó un corte en la rectriz externa para evitar medir individuos recapturados, luego de esto las aves fueron liberadas. Los rasgos tomados en cada individuo fueron seleccionados por su fácil medición y fuerte poder explicativo frente a variaciones ambientales. Puntos de Conteo La metodología de puntos de conteo o censos se realizó en los dos transectos establecidos por cada sitio de muestreo, para un total de 6 transectos con una longitud de 1km cada uno. En cada transecto se fijaron 6 puntos de observación separados entre sí cada 200m, sumando un total de 36 puntos de observación en el área muestreada de la reserva. Los transectos fueron trazados a lo largo de caminos y senderos existentes en el área y abarcando diferentes coberturas del paisaje tales como coberturas boscosas, potreros, carreteras rurales, vegetación cercana a fuentes de agua (ríos y quebradas) y mosaicos de cultivos y espacios naturales. En cada punto de observación se registró el número de individuos observados en un radio de 50 m y escuchados en un radio de 100 m, anotando la distancia aproximada a la cual fue detectado cada individuo (Anexo 12). Cada transecto fue recorrido una vez entre las 6:00 y las 10:00 am realizando las observaciones en los puntos del transecto durante 15 minutos, para un total de 6 días efectivos en campo. Observación directa Durante los recorridos para la instalación y revisión de redes de niebla y durante el tiempo que no se evaluaba cuantitativamente en los puntos de conteo, se realizó el registro de aves mediante la observación directa con la ayuda de binoculares y se registraron todas las especies de aves observadas y escuchadas. Esta metodología se llevó a cabo durante las evaluaciones diurnas y nocturnas de trochas de ancho de banda fija y se complementó con evaluaciones al azar y registros casuales.

Additional Metadata