Biodiversidad registrada en el área de influencia del programa Río Saldaña una Cuenca de Vida en el departamento del Tolima

Registros

Los datos en este recurso de registros biológicos han sido publicados como Archivo Darwin Core(DwC-A), el cual es un formato estándar para compartir datos de biodiversidad como un conjunto de una o más tablas de datos. La tabla de datos del core contiene 1.685 registros.

Este IPT archiva los datos y, por lo tanto, sirve como repositorio de datos. Los datos y los metadatos del recurso están disponibles para su descarga en la sección descargas. La tabla versiones enumera otras versiones del recurso que se han puesto a disposición del público y permite seguir los cambios realizados en el recurso a lo largo del tiempo.

Versiones

La siguiente tabla muestra sólo las versiones publicadas del recurso que son de acceso público.

¿Cómo referenciar?

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WCS Colombia, Parques Nacionales Naturales de Colombia, CORTOLIMA - Corporación Autónoma Regional del Tolima, Fundación Grupo Argos, Concretos Argos S.A.S (2024): Biodiversidad registrada en el área de influencia del programa Río Saldaña una Cuenca de Vida en el departamento del Tolima. v1.2. WCS Colombia. Dataset/Occurrence. https://ipt.biodiversidad.co/sib/resource?r=2019_saldanacuencavida&v=1.2

Derechos

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El publicador y propietario de los derechos de este trabajo es WCS Colombia. Esta obra está bajo una licencia Creative Commons de Atribución/Reconocimiento (CC-BY 4.0).

Registro GBIF

Este recurso ha sido registrado en GBIF con el siguiente UUID: 74460a3a-4da8-440a-8f64-69f964623f52.  WCS Colombia publica este recurso y está registrado en GBIF como un publicador de datos avalado por Colombian Biodiversity Information System.

Palabras clave

Occurrence; Observation; Subcuenca Amoyá; Subcuenca Cucuana; Aves; Plantas; Anfibios; Reptiles; Mamíferos; Tolima

Contactos

Cobertura geográfica

El Programa Río Saldaña una Cuenca de Vida se desarrolla en las subcuencas Amoyá, Alto Saldaña-Siquila y Cucuana de los municipios de Planadas, Chaparral y Roncesvalles del departamento del Tolima. Es importante anotar acerca de la localidad "2024_EL_Mirador", que de acuerdo al certificado de tradición del predio, este se encuentra en Chaparral, sin embargo, de acuerdo a la cartografía del IGAC (2023) este predio se encuentra dentro del municipio de San Antonio (Tolima) y por esta razón los registros asociados a esta localidad tienen registrado este municipio.

Cobertura taxonómica

Se reportan 293 registros para plantas distribuidas en 86 familias, 153 géneros y 147 especies.

Contiene 1392 registros de animales, agrupadas en 4 clases diferentes. En Aves se registró un total de 1072 individuos de 288 especies agrupadas en 44 familias y 17 órdenes. En anfibios se registró 4 familias, 5 géneros y 8 especies. Adicionalmente, se registró 15 familias, 8 órdenes y 18 especies de mamíferos y 3 familias, 3 géneros y 4 especies de reptiles.

Cobertura temporal

Datos del proyecto

Río Saldaña una Cuenca de Vida es una alianza público-privada entre Parques Naturales Nacionales de Colombia (PNN), La Corporación Autónoma Regional del Tolima (CORTOLIMA), Fundación Grupo Argos (FGA), Concreto Argos (CA) y Wildlife Conservation Society (WCS) cuyo objetivo es conservar la biodiversidad y los servicios ecosistémicos asociados a los recursos de agua dulce, los cuales contribuyen al bienestar de las poblaciones locales en las subcuencas Amoyá, Alto Saldaña-Siquila y Cucuana pertenecientes a la cuenca del río Saldaña.

Personas asociadas al proyecto:

Métodos de muestreo

Con el fin de caracterizar la biodiversidad de la fauna y flora se realizaron Evaluaciones Ecológicas Rápidas en cada uno de los predios interesados en registrarse como Reservas Naturales de la Sociedad Civil ubicados en los municipios de Chaparral y Roncesvalles. Se muestrearon 5 predios en el 2019 ubicados en Chaparral (Aves, Plantas, Herpetos y Mamíferos) y 5 predios en el 2023 (Aves) y 5 predios en el 2024 (Aves) en el municipio del Roncesvalles.

Descripción de la metodología paso a paso:

1. Plantas: Se usó el método de “colecciones generales” descrito por el Instituto Humboldt, este consta de realizar identificaciones botánicas a partir de material fértil y/o interesante según el conocimiento previo del investigador, a lo largo de recorridos libres en la zona de estudio; su importancia radica en que genera buenos resultados en cuanto a los listados de composición florística de un sitio y permite identificaciones certeras a partir de las estructura reproductivas; además, facilita la detección de especies raras que a menudo ignoran los muestreos sistemáticos o aleatorios. Adicionalmente, se registraron especies conocidas por el investigador en caso de haberse observado. Cada registro fue fotografiado con cámara Canon SX60HS y georreferenciada con equipos Garmin (GPSMAP 62sc y eTrex 10) o la aplicación Avenza maps (Avenza Systems Inc., 2019).
2. Anfibios y reptiles: Para el registro de especies se implementó la metodología de encuentros visuales (Heyer et al. 1994) en el día (09:00 – 12:00 h) y en la noche (18:00 – 22:00 h) acompañado por un guía de la zona en cada localidad (esfuerzo de muestreo horas/hombre) buscando en el suelo, removiendo hojarasca, bajo troncos, arbustos y árboles. Al encontrar un individuo se registró el nombre de la especie, altura, hábitat en el que se encontraba (e.g. bosque, potrero, etc) y microhábitat (i.e. hoja, tronco, rama, suelo). Además, con un GPS se obtuvo la correspondiente georreferencia de cada individuo observado. Por último, se realizó un registro fotográfico de las especies que pudieron ser capturadas. Ningún individuo fue colectado, todos los individuos fueron liberados en el área donde fueron encontrados. La identificación de los especímenes registrados se realizó con base en literatura, propia experiencia y corroborados por distribución y listados oficiales de artículos científicos (e. g. Clavijo-Garzón et al. 2018; Grisales-Martínez et al. 2017; Llano-Mejía et al. 2010). Para la nomenclatura de los nombres científicos actualizados de los anfibios se siguió a Frost 2019 y para reptiles se siguió a Uetz et al. 2019.
3. Aves: Para registrar y caracterizar la avifauna se usaron dos metodologías: 1) registros visuales y auditivos y 2) captura mediante redes de niebla. Para los registros visuales, se utilizaron binoculares Vortex Viper HD o Nikon 8x42 y para los registros auditivos no identificados se usó una grabadora digital Sony para su posterior identificación. Se realizaron puntos de conteo de radio fijo, distribuidos en los diferentes hábitats y coberturas vegetales de los predios. Cada punto estuvo separado mínimo cada 150 metros y referenciado en un GPS Garmin 64s. La toma de datos se desarrolló en dos jornadas diarias, mañana de 6:00 – 10:00 y tarde de 16:00 – 18:00. La caracterización de la avifauna en algunos sitios se complementó con capturas realizadas mediante redes de niebla, ubicadas principalmente en el borde de bosque, donde se observó la probabilidad de que las aves frecuentaran, por alimento o refugio. Se utilizaron redes de niebla de 12 metros de largo por 3 metros de alto, con un ojo de malla de 16 mm. Los horarios de muestreo establecidos fueron de 6:00 – 10:00 y de 15:00 – 18:00, simultáneamente con los puntos de observación. Para la identificación de algunas especies se utilizaron los libros de “Aves de Colombia” de Hilty y Brown (2001), y la “Guía de campo aves de Colombia” de Ayerbe (2018). Se siguió la nomenclatura taxonómica de American Ornithologists’ Union http://www.museum.lsu.edu/~Remsen/SACCBaseline.htm y la identificación de cantos se realizó con la ayuda de la aplicación Merlin Bird ID 2022 y Xeno-canto https://www.xeno-canto.org/.
4. Mamíferos medianos y grandes: La caracterización de mamíferos medianos y grandes se realizó a traves del método de fototrampeo para determinar la presencia de especies mediante cámaras trampa (RECONYX HC500 HyperFire). Adicionalmente, se registraron rastros, señales y marcas obtenidos durante los recorridos para ubicación de las estaciones. Las cámaras-trampa estuvieron activas de 30 a 60 días aproximadamente. Cada cámara fue instalada en el tronco de un árbol aproximadamente a 50 cm de altura del suelo en lugares donde se evidenció actividad de mamíferos medianos y grandes como sendas, sitios de forrajeo, letrinas, etc. (O'Connell et al. 2010). Se buscó instalar las cámaras en cuadriculas de 500 m x 500 m, para minimizar la autocorrelación espacial en los datos (Royle et al., 2007, Burton et al., 2015). Cada cámara fur programada para un muestreo continuo (24 horas al día) con un intervalo de un segundo entre cada fotografía y con espacio entre disparo (activación y toma de cinco fotografías) de 15 segundos. Para cada una de las estaciones se registraron datos como coordenadas en grados decimales (Datum: WGS 84), información de la cámara (referencia, numero), fecha y hora de instalación, descripción física de la estación, nombre del predio, vereda y municipio. A partir de las fotos obtenidas en campo, se construyó una base de datos de los animales registrados en la zona de estudio. Para procesar la información se utilizó la plataforma Wildlife Insights, siguiendo los lineamientos y los estándares para datos abiertos de trampas cámara (Forrester et al., 2016).

Referencias bibliográficas

1. Remsen, J. V., Jr., J. I. Areta, E. Bonaccorso, S. Claramunt, G. Del-Rio, A. Jaramillo, D. F. Lane, M. B. Robbins, F. G. Stiles, and K. J. Zimmer. Version [2019]. A classification of the bird species of South America. Museum of Natural Science, Louisiana State University. https://www.museum.lsu.edu/~Remsen/SACCBaseline.htm
2. Ayerbe, F. (2018). Avifauna Colombiana. A Field Guide to the Birds of Colombia. Wildlife Conservation Society. Colombia - WCS.
3. Burton, A. C., E. Neilson, D. Moreira, A. Ladle, R. Steenweg, J. T. Fisher, E. Bayne, y/and S. Boutin. (2015). Wildlife camera trapping: A review and recommendations for linking surveys to ecological processes. Journal of Applied Ecology 52(3): 675 – 685. https://doi.org/10.1111/1365-2664.12432
4. Clavijo-Garzón, S., Romero-García J. A., Enciso-Calle, M. P., Viuche-Lozano, A., Herrán-Medina, J., Vejarano-Delgado, M. A., Bernal, M. H. (2018). Lista actualizada de los anfibios del departamento del Tolima, Colombia. Biota Colombiana 19(2): 64 – 72. https://doi.org/10.21068/c2018.v19n02a06
5. Forrester T, O'Brien T, Fegraus E, Jansen P, Palmer J, Kays R, Ahumada J, Stern B, McShea W. (2016). An Open Standard for Camera Trap Data. Biodiversity Data Journal 4: e10197. https://doi.org/10.3897%2FBDJ.4.e10197
6. Frost, Darrel R. (2019). Amphibian Species of the World: an Online Reference. Version 6.0 a http://research.amnh.org/herpetology/amphibia/index.html
7. Grisales-Martinez, F. A., Velasco, J. A., Bolivar, W., Williams, E. E., & Daza, J. M. (2017). The taxonomic and phylogenetic status of some poorly known Anolis species from the Andes of Colombia with the description of a nomen nudum taxon. Zootaxa, 4303(2), 213-230. http://dx.doi.org/10.11646/zootaxa.4303.2.2
8. Hilty, S. L., Brown, W. L. (2001). Guía de las Aves de Colombia, Princeton University Press, Princeton, New York.
9. Llano-Mejía, J. Cortés-Gómez, A. M. Castro-Herrera, F. (2010). Lista de anfibios y reptiles del departamento del Tolima, Colombia. Biota Colombiana, 11 (1 y 2). https://revistas.humboldt.org.co/index.php/biota/article/view/234
10. Merlin Bird ID. 2024. Identify the birds. The Cornell Lab. https://merlin.allaboutbirds.org/
11. O'Connell, A. F., Nichols, J. D., & Karanth, K. U. (2011). Camera traps in animal ecology: methods and analyses (Vol. 271). New York: Springer. https://doi.org/10.1007/978-4-431-99495-4
12. Royle, J. A., Kéry, M., Gautier, R., & Schmid, H. (2007). Hierarchical spatial models of abundance and occurrence from imperfect survey data. Ecological Monographs, 77(3), 465-481. https://doi.org/10.1890/06-0912.1
13. Uetz, P., Freed, P, Aguilar, R., Reyes, F., Kudera, J. & Hošek, J. (eds.) (2019) The Reptile Database http://www.reptile-database.org
14. Xeno-canto 2023. Sharing bird sounds from around the world. https://www.xeno-canto.org/

Metadatos adicionales