10.15472/rydunn b26543dd-d573-480b-b8b0-7f116ef52886 https://ipt.biodiversidad.co/sib/resource?r=integridad_rfprbitaco Análisis de Integridad Biológica en la Reserva Forestal Protectora Regional Bitaco. Convenio CVC- Univalle 108 de 2017 Wilmar Bolívar- García Universidad del Valle Investigador principal
Calle 13 # 100-00 Cali Valle del Cauca CO
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Eliana Barona Cortés Universidad del Valle Coordinación técnica
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Alan Giraldo López Universidad del Valle Coordinador general
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Wilmar Bolívar- García Universidad del Valle Investigador principal
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Rosa Alexandra Duque Londoño Corporación Autónoma Regional del Valle del Cauca Interventoría
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2019-02-11 spa Los Índices de Integridad Biológica (IIB) tienen en cuenta grupos naturales con alta capacidad de uso como indicadores de calidad ambiental, los cuales permiten descifrar factores ambientales tensionantes y ayudan a entender realidades complejas, a fin de mitigar los efectos de las intervenciones humanas sobre los ecosistemas naturales. En este sentido, el objetivo principal de esta investigación fue llevar a cabo el Análisis de Integridad Biológica para conocer el estado de conservación de la Reserva Forestal Protectora Regional Bitaco, teniendo en cuenta a los anfibios, reptiles, aves, mamíferos y plantas como bioindicadores. Integridad ecología bioindicador Reserva ÁreaProtegida n/a Occurrence GBIF Dataset Type Vocabulary: http://rs.gbif.org/vocabulary/gbif/dataset_type.xml Observation GBIF Dataset Subtype Vocabulary: http://rs.gbif.org/vocabulary/gbif/dataset_subtype.xml To the extent possible under law, the publisher has waived all rights to these data and has dedicated them to the Public Domain (CC0 1.0). Users may copy, modify, distribute and use the work, including for commercial purposes, without restriction. Colombia, Depto Valle del Cauca, Mun La Cumbre, ver. Chicoral y Zaragoza, Reserva Forestal Protectora Regional Bitaco -76.551 -76.496 3.597 3.545 2018-09-22 2017-07-08 Se trabajaron los grupos biológicos: anfibios, reptiles, aves, mamíferos y plantas Acmella ciliata (Kunth) Cass. Adelomyia melanogenys (Fraser, 1840) Aegiphila alba Moldenke Ageratum Aglaiocercus kingi (Hartert, 1898) Akodon affinis (J.A. Allen, 1912) Alchornea acutifolia Müll. Arg. Alchornea grandiflora Müll. Arg. Alchornea latifolia Sw. Allophylus excelsus (Triana & Planch.) Radlk. Alsophila erinacea (H. Karst.) D.S. Conant Amazilia franciae (Bourcier & Mulsant, 1846) Anabacerthia variegaticeps (Sclater, 1857) Aniba perutilis Hemsl. Anisognathus somptuosus (Lesson, 1831) Annona cherimolioides Triana & Planch. Anolis antonii Boulenger, 1908 Anolis eulaemus Boulenger, 1908 Anolis ventrimaculatus Boulenger, 1911 Anoura cultrata Handley, 1960 Anthurium giraldoi Croat Aotus zonalis Goldman, 1914 Ardisia guianensis (Aubl.) Mez Arenaria lanuginosa (Michx.) Rohrb. Arremon brunneinucha (Lafresnaye, 1839) Asplenium Atlapetes albinucha (Lafresnaye & D'Orbigny, 1838) Aulacorhynchus haematopygus (Gould, 1835) Basileuterus culicivorus (Deppe, 1830) Basileuterus tristriatus (von Tschudi, 1844) Bassaricyon gabbii J.A. Allen, 1876 Bassaricyon medius Thomas, 1909 Begonia Beilschmiedia alloiophylla (Rusby) Kosterm. Bidens pilosa L. Billia rosea (Planch. & Linden) C. Ulloa & P. Jørg. Blakea subconnata O. Berg ex Triana Blechnum lehmannii Hieron. Brosimum utile (Kunth) Oken Browallia americana L. Bunchosia Buteo platypterus (Vieillot, 1823) Buthraupis montana (D'Orbigny & Lafresnaye, 1837) Calliandra trinervia Benth. Calliphlox mitchellii (Bourcier, 1847) Camellia sinensis (L.) Kuntze Capsicum geminifolium (Damm.) Hunz. Cardellina canadensis (Linnaeus, 1766) Carollia brevicauda (Schinz, 1821) Casearia arborea (Rich.) Urb. Casearia megacarpa Cuatrec. Casearia sylvestris Sw. Castilleja arvensis Schltdl. & Cham. Catharus ustulatus (Nuttall, 1840) Cecropia obtusifolia Bertol. Cecropia telealba Cuatrec. Centrolene savagei (Ruíz-Carranza & Lynch, 1991) Cerdocyon thous (Linnaeus, 1766) Chamaedorea pinnatifrons (Jacq.) Oerst. Chamaepetes goudotii (Lesson, 1828) Chaptalia nutans (L.) Pol. Chloris ciliata Sw. Chlorochrysa nitidissima Sclater, 1873 Chlorophanes spiza (Linnaeus, 1758) Chloropipo flavicapilla (P.L. Sclater, 1852) Chlorospatha Chlorospatha tokioensis Croat & L.P. Hannon Chlorospingus canigularis (Lafresnaye, 1848) Chlorospingus semifuscus Sclater & Salvin, 1873 Chlorostilbon melanorhynchus Gould, 1860 Chrysochlamys colombiana (Cuatrec.) Cuatrec. Chrysochlamys dependens Planch. & Triana Chusquea Cinnamomum triplinerve (Ruiz & Pav.) Kosterm. Clavija cauliflora Regel Clidemia Coeligena coeligena (Lesson, 1833) Coereba flaveola (Linnaeus, 1758) Colibri thalassinus (Swainson, 1827) Commelina diffusa Burm. f. Condaminea corymbosa (Ruiz & Pav.) DC. Contopus virens (Linnaeus, 1766) Cranioleuca erythrops (Sclater, 1860) Cremastosperma awaense Pirie Cremosperma hirsutissimum Benth. Creurgops verticalis Sclater, 1858 Cricetidae Critoniopsis occidentalis (Cuatrec.) H. Rob. Crotophaga ani Linnaeus, 1758 Cryptopipo holochlora (Sclater, 1888) Crypturellus soui (Hermann, 1783) Cupania livida (Radlk.) Croat Cuphea racemosa (L.f.) Spreng. Cyathea andina (H. Karst.) Domin Cyathea caracasana (Klotzsch) Domin Cybianthus occigranatensis (Cuatrec.) G. Agostini Cybianthus verticilloides (Cuatrec.) G. Agostini Cyclarhis nigrirostris Lafresnaye, 1842 Cyperus Cyphorhinus thoracicus Tschudi, 1844 Dendropsophus columbianus (Boettger, 1892) Dermanura Didelphis marsupialis Linnaeus, 1758 Diglossa caerulescens Sclater, 1856 Diglossa sittoides (D'Orbigny & Lafresnaye, 1838) Doryfera ludovicae (Bourcier & Mulsant, 1847) Dracula chimaera (Rchb. f.) Luer Drymaria ovata Humb. & Bonpl. ex Schult. Dussia lehmannii Harms Dysithamnus mentalis (Temminck, 1823) Elaeagia pastoensis L.E. Mora Eleutheranthera tenella (Kunth) H. Rob. Emilia coccinea (Sims) G. Don Emilia fosbergii Nicolson Empidonax virescens (Vieillot, 1818) Endlicheria rubriflora Mez Eragrostis Eschweilera Eschweilera antioquensis Dugand & Daniel Eschweilera bogotensis R. Knuth Eubucco bourcierii (Lafresnaye, 1845) Eugenia Euphonia cyanocephala (Vieillot, 1818) Euphonia laniirostris D'Orbigny & Lafresnaye, 1837 Euphonia xanthogaster Sundevall, 1834 Eutoxeres aquila (Bourcier, 1847) Falco sparverius Linnaeus, 1758 Faramea glandulosa Poepp. & Endl. Faramea oblongifolia Standl. Ficus Ficus brevibracteata W.C. Burger Ficus insipida Willd. Florisuga mellivora (Linnaeus, 1758) Fraxinus uhdei (Wenz.) Lingelsh. Gaiadendron punctatum (Ruiz & Pav.) G. Don Geissanthus kalbreyeri Mez Gesneriaceae Graffenrieda uribei Wurdack Guarea kunthiana A. Juss. Guatteria crassipes R.E. Fr. Guatteria goudotiana Triana & Planch. Guatteria hirsuta Ruiz & Pav. Handleyomys alfaroi (J.A. Allen, 1891) Hedyosmum cf. bonplandianum Kunth Heliconia Heliocarpus americanus L. Henicorhina leucophrys (von Tschudi, 1844) Herpetotheres cachinnans (Linnaeus, 1758) Hieronyma macrocarpa Müll. Arg. Hieronyma scabrida (Tul.) Müll. Arg. Hydrocotyle leucocephala Cham. & Schltdl. Hypochaeris radicata L. Hypodactylus mantipus (Boulenger, 1908) Hypoxis decumbens L. Hyptis Icterus chrysater (Lesson, 1844) Impatiens balsamina L. Inga acrocephala Steud. Inga cinnamomea Spruce ex Benth. Inga oerstediana Benth. ex Seem. Isachne Kyllinga pumila Michx. Lacistema aggregatum (P.J. Bergius) Rusby Ladenbergia oblongifolia (Humb. ex Mutis) L. Andersson Leiothlypis peregrina (Wilson, A, 1811) Lepidocolaptes lacrymiger (Des Murs, 1849) Leucostethus fraterdanieli (Silverstone, 1971) Masius chrysopterus (Lafresnaye, 1843) Matisia bolivarii Cuatrec. Meliosma frondosa Cuatrec. & Idrobo Meliosma occidentalis Cuatrec. Meliosma schlimii (Turcz.) Triana & Planch. Melothria pendula L. Meriania speciosa (Bonpl.) Naudin Miconia acuminifera Triana Miconia aff. dodecandra Cogn. Miconia affinis DC. Miconia gracilis Triana Miconia longifolia (Aubl.) DC. Miconia neomicrantha Judd & Skean Miconia prasina (Sw.) DC. Miconia prasinifolia Gleason Milvago chimachima (Vieillot, 1816) Mionectes striaticollis (D'Orbigny & Lafresnaye, 1837) Momotus aequatorialis Gould, 1858 Monstera Myadestes ralloides (D'Orbigny, 1840) Myioborus miniatus (Swainson, 1827) Myiodynastes chrysocephalus (von Tschudi, 1844) Myiothlypis coronata (von Tschudi, 1844) Myiozetetes cayanensis (Linnaeus, 1766) Myotis riparius Handley, 1960 Myrcia popayanensis Hieron. Myrmotherula schisticolor (Lawrence, 1865) Nectandra acutifolia (Ruiz & Pav.) Mez Nectandra purpurea (Ruiz & Pav.) Mez Nephelomys pectoralis (J.A. Allen, 1912) Nombre científico Norantea guianensis Aubl. Nymphargus ignotus (Lynch, 1990) Ocotea Ocreatus underwoodii (Lesson, 1832) Odontophorus hyperythrus Gould, 1858 Otoba lehmannii (A.C. Sm.) A.H. Gentry Oxalis Oxalis corniculata L. Pachyramphus polychopterus (Vieillot, 1818) Pachysylvia semibrunnea (Lafresnaye, 1845) Palicourea angustifolia Kunth Palicourea calophlebia Standl. Palicourea deviae C.M. Taylor Palicourea gomezii C.M. Taylor Paspalum Passiflora Passiflora arborea Spreng. Patagioenas subvinacea (Lawrence, 1868) Paullinia obovata (Ruiz & Pav.) Pers. Peperomia Persea Phaethornis guy (Lesson, 1833) Phaethornis syrmatophorus Gould, 1852 Pheucticus ludovicianus (Linnaeus, 1766) Pheugopedius mystacalis Sclater, PL, 1860 Philodendron verrucosum L. Mathieu ex Schott Pholidobolus vertebralis (O'Shaugnessy, 1879) Phyllanthus niruri L. Piaya cayana (Linnaeus, 1766) Picoides fumigatus (D'Orbigny, 1840) Picramnia gracilis Tul. Picrasma excelsa (Sw.) Planch. Pilea centradenioides Seem. Pilea scandens Killip Pionus menstruus (Linnaeus, 1766) Piper Piper aduncum L. Piper crassinervium Kunth Piper imperiale (Miq.) C.DC. Pipraeidea melanonota (Vieillot, 1819) Pipreola riefferii (Boissonneau, 1840) Piranga rubra (Linnaeus, 1758) Plantago australis Lam. Platyrinchus mystaceus Vieillot, 1818 Platyrrhinus dorsalis (Thomas, 1900) Poecilotriccus ruficeps (Kaup, 1852) Pogonotriccus ophthalmicus (Taczanowski, 1874) Pogonotriccus poecilotis (Sclater, 1862) Polygala paniculata L. Pouteria torta (Mart.) Radlk. Premnoplex brunnescens (Sclater, 1856) Premnornis guttuliger (Sclater, 1864) Prestoea acuminata (Willd.) H.E. Moore Pristimantis brevifrons (Lynch, 1981) Pristimantis calcaratus (Boulenger, 1908) Pristimantis erythropleura (Boulenger, 1896) Pristimantis juanchoi (Lynch, 1996) Pristimantis orpacobates (Lynch, Ruíz-Carranza and Ardila-Robayo, 1994) Pristimantis palmeri (Boulenger, 1912) Pristimantis thectopternus (Lynch, 1965) Pseudelephantopus spicatus (Juss. ex Aubl.) C.F. Baker Psychotria Psychotria hazenii Standl. Pteridium arachnoideum (Kaulf.) Maxon Pygochelidon cyanoleuca (Vieillot, 1817) Pyrrhomyias cinnamomeus (D´Orbigny & Lafresnaye, 1837) Ramphocelus flammigerus (Jardine & Selby, 1833) Riama laevis (Boulenger, 1908) Richardia scabra L. Ruagea glabra Triana & Planch. Rytidostylis trianae (Cogn.) Kuntze Salacia Saltator atripennis Sclater, 1856 Saltator striatipectus Lafresnaye, 1847 Sanicula liberta Cham. & Schltdl. Sapium stylare Müll. Arg. Saurauia brachybotrys Turcz. Schistes geoffroyi (Bourcier, 1843) Sclerurus obscurior andinus (Chapman, 1914) Scytalopus latrans Hellmayr, 1924 Scytalopus spillmanni Stresemann, 1937 Scytalopus vicinior Zimmer, 1939 Selaginella Selaginella anceps (C. Presl) C. Presl Serjania diffusa Radlk. Setophaga fusca (Statius Muller, 1776) Sibon nebulatus (Linnaeus, 1758) Sida rhombifolia L. Siparuna laurifolia (Kunth) A. DC. Smilax domingensis Willd. Solanum americanum Mill. Solanum anisophyllum Van Heurck & Müll. Arg. Solanum deflexiflorum Bitter Sorocea trophoides W.C. Burger Spinus psaltria (Say, 1823) Spirotheca rosea (Seem.) P.E. Gibbs & W.S. Alverson Spizaetus ornatus (Daudin, 1800) Sporophila nigricollis (Vieillot, 1823) Stenospermation Sturnira bidens (Tomas, 1915) Sturnira ludovici Anthony, 1924 Synallaxis azarae D'Orbigny, 1835 Tangara arthus Lesson, 1832 Tangara episcopus (Linnaeus, 1766) Tangara gyrola (Linnaeus, 1758) Tangara heinei (Cabanis, 1850) Tangara labradorides (Boissonneau, 1840) Tangara nigroviridis (Lafresnaye, 1843) Tangara ruficervix (Prévost & des Murs, 1846) Tangara vitriolina (Cabanis, 1850) Tapera naevia (Linnaeus, 1766) Tetrorchidium rubrivenium Poepp. Thalurania colombica (Bourcier, 1843) Thamnophilus multistriatus Lafresnaye, 1844 Thamnophilus unicolor (Sclater, 1859) Tiaris olivaceus (Linnaeus, 1766) Tradescantia zanonia (L.) Sw. Trichanthera gigantea (Bonpl.) Nees Troglodytes aedon Vieillot, 1809 Trogon collaris Vieillot, 1817 Trogon personatus Gould, 1842 Turdus fuscater d'Orbigny & Lafresnaye, 1837 Turdus ignobilis Sclater, PL, 1858 Turdus leucops (Taczanowski, 1877) Tyrannus melancholicus Vieillot, 1819 Urotheca lateristriga (Berthold, 1859) Vampyressa thyone Thomas, 1909 Varronia acuta (Pittier) Borhidi Verbesina nudipes S.F. Blake Vismia baccifera (L.) Triana & Planch. Vochysia Vochysia duquei Pilg. Wedelia calycina Rich. Xenops minutus (Sparrman, 1788) Xenops rutilus Temminck, 1821 Xiphorhynchus erythropygius (Sclater, 1859) Xiphorhynchus triangularis (Lafresnaye, 1842) Youngia japonica (L.) DC. Zentrygon frenata (Tschudi, 1843) Zimmerius chrysops (Sclater, 1859) Zonotrichia capensis (Müller, 1776) unkown Wilmar Bolívar- García Universidad del Valle Investigador principal
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La matriz de priorización y evaluación de la integridad biológica de los hábitats evaluados en la Reserva Forestal Protectora de Bitaco, ubicada en la cuenca del río Bitaco, estima y discrimina las diferentes variables de estado identificadas como indicadoras “biológicas” en los usos de tierra que conforman la línea de base. Está conformada por una matriz de análisis multinivel, en la que se registra a través de una jerarquía secuencial de mayor a menor, las variables de estado más significativas “niveles”; y que además condicionan el tipo, la riqueza, la distribución, la vulnerabilidad, las exigencias ecológicas y la abundancia de los indicadores determinados en los sistemas de estudio Esta matriz posee una sección de “entrada” que está constituida por los datos obtenidos en campo y analizados de cada uno de los grupos seleccionados como indicadores biológicos, según el protocolo de monitoreo propuesto. De igual forma posee una sección de salida, conformada por la valoración numérica de los indicadores evaluados para cada uno de los hábitats o sistemas analizados. Los niveles de análisis y valoración de los indicadores biológicos evaluados en las diferentes unidades de paisaje, han sido escogidos y jerarquizados en una matriz de importancia teniendo en cuenta información primaria y secundaria. Los datos ingresados en la matriz son producto de analizar la información generada en campo por cada grupo bioindicador evaluado y sobre cada una de las variables de estado que contempla. Desde el inicio y a medida que se avanza sobre esta, cada uno de los niveles o variables de estado confronta la información obtenida con las distintas categorías que para cada grupo bioindicador se ha asumido como discriminantes y puntúa un valor de referencia para dicho carácter sobre el nivel especifico. La cuenca alta del río Bitaco se encuentra ubicada en el municipio de La Cumbre, en las veredas Chicoral y Zaragoza de la parte media -alta de la Subcuenca del río Bitaco. Al norte limita con la cabecera municipal, al sur con el municipio de Dagua, al oriente con el municipio de Yumbo y al occidente con el corregimiento de Lomitas. Según el sistema actualizado de clasificación de biomas y ecosistemas, diseñado por la CVC y FAUNAGUA (2009), en el área se encuentran dos tipos de ecosistemas: Bosque medio húmedo en montaña fluvio gravitacional (BOMHUMH) y Bosque frío húmedo en montaña fluvio-gravitacional (BOFHUMH). En la zona de estudio identificaron tres tipos de hábitat contrastantes: los bosques de la RFPR Bitaco (BR), los bosques secundarios (BS) y la zona productiva de cultivos de té (TÉ). 1.La RFPR Bitaco tiene una extensión de 194,3 ha donde predominan los bosques maduros intervenidos y los bosques sucesionales. En este estudio se trabajó la zona más conservada de la Reserva (Bosques maduros intervenidos) localizados en las zonas altas y en quebradas con altas pendientes, abarcando cerca de 181,9 ha. 2.Los bosques secundarios (BS) abarca cerca de 36,8 ha, donde se pueden diferenciar dos subzonas. El área alta la cual colinda con la RFPR Bitaco se caracteriza por presentar pendientes moderadas. En la composición vegetal predominan árboles entre 10 y 20 metros de altura, de similiar composición vegetal a la Reserva, el dosel tiene algunos claros, el sotobosque y el estrato bajo son discontinuos. 3. Zona productiva de cultivos de té (TÉ) comprende 50,7 ha, en un rango altitudinal entre 1.860 y 2.031 m s.n.m. En algunas zonas o lotes, las plantas de Té no han sido podadas generando una matriz muy tupida y un microambiente mucho más húmedo comparado con las zonas podadas las cuales presentan menor humedad ANFIBIOS Y REPTILES Fase de campo: para la colecta de la herpetofauna en cada uno de los sitios de muestreo, se utilizó el método de transectas de banda estrecha, través de trayectos previamente establecidos de 80 m de longitud por 4 m de ancho. Los muestreos se llevaron a cabo en la mañana entre las 09:00-13:00 y en las horas de la noche entre las 19:00-23:00 horas. Para cada uno de los individuos colectados se llenó una ficha de campo en el que se registró información concerniente a la hora de captura así como datos ecológicos del sitio de encuentro para cada individuo AVES La técnica de muestreo empleada para este grupo biológico fue la observación directa o captura visual y la captura pasiva. • Captura visual u observación directa: se recorrieron senderos, bosques naturales y plantaciones. Se siguió la metodología de conteo por puntos de amplitud variable, la cual consiste en caminar lentamente y detenerse registrando los individuos visuales o auditivamente en cada punto esperando 10 minutos. Se seleccionaron 5 puntos en total, cada punto se ubicó cada 200 m para cubrir una longitud de 1 km para cada hábitat. Las actividades comportamentales como alimentación, percha, uso del hábitat (arborícola, arbustivo, terrestre, etc.) y tipo de alimento que consumen (insectos, vertebrados, frutos entre otros), fueron registradas. Los censos visuales se ejecutaron en las horas de la mañana entre las 06:00 y las 10:00 horas, y en la tarde entre las 16:00 y las 18:00 horas. • Captura pasiva: Se utilizaron en total seis redes de niebla con extensión de 12 x 2.5 m, con un ojo de malla de 16 mm y se ubicaron durante cuatro días en cada hábitat, sin embargo fueron reubicadas una vez dentro del mismo hábitat después de dos días con el fin de abarcar más área de estudio. Se realizaron revisiones cada hora con algunas excepciones media hora por la brizna, brisa de la niebla y el frío. Las redes operaron entre 6- 10 h y 14- 18h MAMÍFEROS VOLADORES Se utilizaron diez redes de niebla de 12 m de longitud, las cuales operaron entre las 18:00 y 22:00 horas abarcando el primer pico de actividad de los quirópteros. Las redes eran revisadas casa hora y se ubicaron en posibles sitios de paso para los murciélagos, como en senderos, bordes y claros de bosque. De cada individuo capturado se registró especie, sexo y edad, y posteriormente los individuos fueron liberados. El listado taxonómico de especies se realizó siguiendo la propuesta de Gardner 2007, con los ajustes realizados por Ramírez-Chaves et al. 2016 para los mamíferos de Colombia MAMÍFEROS TERRESTRES En cada cobertura fueron empleadas un total de 70 trampas (60 Sherman y 10 National) ubicadas a lo largo de transectos y espaciadas aproximadamente cada 10 metros (Figura 8A y B). La cantidad de transectos por zonas fue diferente ajustándose al relieve del sitio de trabajado, y la accesibilidad del mismo. Se utilizaron dos tipos de cebo: 1) maíz trillado con sardina en salsa de tomate y 2) avena con esencia de vainilla, maduro y papaya Adicionalmente, se instaló de manera simultánea una cámara trampa en cada zona de muestreo, la cual operó durante 7 días efectivos (Figura 8.D). Cada uno de los individuos capturados fue identificado a la menor categoría posible, fotografiado y se registraron datos de: sexo, peso y medidas morfológicas (longitud total, longitud pata, longitud oreja, longitud cola, etc.); posteriormente los individuos fueron liberados. PLANTAS Se caracterizó la flora vascular de cada cobertura vegetal o ecosistema escogido en el área protegida, en términos de la composición y estructura de la vegetación de cada sitio muestreado y el potencial de regeneración. Para la medición de la estructura de la flora leñosa de cada cobertura vegetal o ecosistema de la reserva, se siguió la metodología de cinturón de Gentry (1982). En cada cobertura se realizaron transectos lineales de 50 m de largo por 2 m de ancho para un área total muestreada por transecto de 100 m2. Para ello se usó una cuerda de 50 m seccionada cada 10 m, y se proyectó 1 m a cada lado de ésta con una vara. Se registró el CAP (circunferencia a la altura del pecho) y la altura total de los rametos de los individuos leñosos (i.e. árbol, arbusto y liana) que presentaron un DAP (diámetro a la altura del pecho) ≥ 2,5 m medido a 1,3 m de altura desde el suelo, y el hábito de crecimiento. El CAP se tomó con una cinta métrica y la altura se estimó a ojo. Para la medición del potencial de regeneración de la flora leñosa de cada cobertura vegetal o ecosistema, se realizaron cuatro (4) parcelas de 1 m2 en el área adyacente a cada transecto trazado en la medición de la estructura vegetal. Cada parcela se ubicó con una distancia entre ellas de 10 m, con lo cual la primera parcela estuvo en los primeros 10 m del transecto, la segunda a los 20 m, la tercera a los 30 m y la última a los 40 m. Se registraron las plántulas y juveniles Análisis de Integridad Biológica para la Reserva Forestal Protectora Regional Bitaco_Convenio CVC- Univalle 108 de 2017 Wilmar Bolívar- García Alan Giraldo- López Eliana Barona Cortés Los Índices de Integridad Biológica (IIB) tienen en cuenta grupos naturales con alta capacidad de uso como indicadores de calidad ambiental, los cuales permiten descifrar factores ambientales tensionantes y ayudan a entender realidades complejas, a fin de mitigar los efectos de las intervenciones humanas sobre los ecosistemas naturales. En este sentido, el objetivo principal de esta investigación fue llevar a cabo el Análisis de Integridad Biológica para conocer el estado de conservación de la Reserva Forestal Protectora Regional Bitaco, teniendo en cuenta a los anfibios, reptiles, aves, mamíferos y plantas como bioindicadores. Este convenio fue financiado por la Corporación Autónoma Regional del Valle del Cauca (CVC) y la Universidad del Valle La cuenca alta del río Bitaco se encuentra ubicada en el municipio de La Cumbre, en las veredas Chicoral y Zaragoza de la parte media -alta de la Subcuenca del río Bitaco. Al norte limita con la cabecera municipal, al sur con el municipio de Dagua, al oriente con el municipio de Yumbo y al occidente con el corregimiento de Lomitas. Según el sistema actualizado de clasificación de biomas y ecosistemas, diseñado por la CVC y FAUNAGUA (2009), en el área se encuentran dos tipos de ecosistemas: Bosque medio húmedo en montaña fluvio gravitacional (BOMHUMH) y Bosque frío húmedo en montaña fluvio-gravitacional (BOFHUMH).En esta zona se identificaron tres tipos de hábitat contrastantes: los bosques de la RFPR Bitaco (BR), los bosques secundarios (BS) y la zona productiva de cultivos de té (TÉ). La RFPR Bitaco tiene una extensión de 194,3 ha donde predominan los bosques maduros intervenidos y los bosques sucesionales. En este estudio se trabajó la zona más conservada de la Reserva (Bosques maduros intervenidos) localizados en las zonas altas y en quebradas con altas pendientes, abarcando cerca de 181,9 ha. Las coberturas boscosas se caracterizan por presentar un alto grado de epifitismo con dominancia de las familias Orchidaceae, Araceae, Bromeliaceae y Gesneriaceae, Ericaceae, así como gran abundancia de musgos, hepáticas y líquenes. Los bosques secundarios (BS) abarca cerca de 36,8 ha, donde se pueden diferenciar dos subzonas. El área alta la cual colinda con la RFPR Bitaco se caracteriza por presentar pendientes moderadas. En la composición vegetal predominan árboles entre 10 y 20 metros de altura, de similiar composición vegetal a la Reserva, el dosel tiene algunos claros, el sotobosque y el estrato bajo son discontinuos. Florísticamente está compuesto por árboles y arbustos de la familia Rubiaceae, seguido de Lauraceae y Melastomataceae, aunque también hay una alta abundancia de helechos arbóreos como Cyathea caracassana (Cyatheceae).Zona productiva de cultivos de té (TÉ)comprende un área de 50,7 ha, en un rango altitudinal entre 1.860 y 2.031 m s.n.m. En algunas zonas o lotes, las plantas de Té no han sido podadas generando una matriz muy tupida y un microambiente mucho más húmedo comparado con las zonas podadas las cuales presentan menor humedad.
2018-11-06T05:49:04.146-05:00 dataset Bolívar- García W, Barona Cortés E, Giraldo López A (2018): Análisis de Integridad Biológica en la Reserva Forestal Protectora Regional Bitaco. Convenio CVC- Univalle 108 de 2017. v2.2. Universidad del Valle. Dataset/Occurrence. https://doi.org/10.15472/rydunn https://statics.sibcolombia.net/sib-resources/images/logos-socios/500px/univalle.jpg UV-C Registro Nacional de Colecciones Biológicas: 81 Colección de Anfibios y Reptiles UV Registro Nacional de Colecciones Biológicas: 9 Vertebrados Mamíferos CVA-UV Registro Nacional de Colecciones Biológicas: 78 Colección de Vertebrados - Aves Universidad del Valle CUVC Registro Nacional de Colecciones Biológicas: 34 Herbario CUVC "Luis Siguifredo Espinal - Tascón" alcohol driedAndPressed mounted b26543dd-d573-480b-b8b0-7f116ef52886/v2.2.xml