10.15472/rydunn
b26543dd-d573-480b-b8b0-7f116ef52886
https://ipt.biodiversidad.co/sib/resource?r=integridad_rfprbitaco
Análisis de Integridad Biológica en la Reserva Forestal Protectora Regional Bitaco. Convenio CVC- Univalle 108 de 2017
Wilmar
Bolívar- García
Universidad del Valle
Investigador principal
Calle 13 # 100-00
Cali
Valle del Cauca
CO
wilmar.bolivar@correounivalle.edu.co
Eliana
Barona Cortés
Universidad del Valle
Coordinación técnica
Calle 13 #100-00
Cali
Valle del Cauca
CO
eliana.barona@correounivalle.edu.co
Alan
Giraldo López
Universidad del Valle
Coordinador general
Cali
Valle del Cauca
CO
alan.giraldo@correounivalle.edu.co
Wilmar
Bolívar- García
Universidad del Valle
Investigador principal
Calle 13 # 100-00
Cali
Valle del Cauca
CO
wilmar.bolivar@correounivalle.edu.co
Eliana
Barona Cortés
Universidad del Valle
Coordinación técnica
Calle 13 #100-00
Cali
Valle del Cauca
CO
eliana.barona@correounivalle.edu.co
Wilmar
Bolívar- García
Universidad del Valle
Investigador principal
Calle 13 # 100-00
Cali
Valle del Cauca
CO
wilmar.bolivar@correounivalle.edu.co
principalInvestigator
Rosa Alexandra
Duque Londoño
Corporación Autónoma Regional del Valle del Cauca
Interventoría
Cra. 56 #11 - 36
Cali
Valle del Cauca
CO
metadataProvider
2019-02-11
spa
Los Índices de Integridad Biológica (IIB) tienen en cuenta grupos naturales con alta capacidad de uso como indicadores de calidad ambiental, los cuales permiten descifrar factores ambientales tensionantes y ayudan a entender realidades complejas, a fin de mitigar los efectos de las intervenciones humanas sobre los ecosistemas naturales. En este sentido, el objetivo principal de esta investigación fue llevar a cabo el Análisis de Integridad Biológica para conocer el estado de conservación de la Reserva Forestal Protectora Regional Bitaco, teniendo en cuenta a los anfibios, reptiles, aves, mamíferos y plantas como bioindicadores.
Integridad
ecología
bioindicador
Reserva
ÁreaProtegida
n/a
Occurrence
GBIF Dataset Type Vocabulary: http://rs.gbif.org/vocabulary/gbif/dataset_type.xml
Observation
GBIF Dataset Subtype Vocabulary: http://rs.gbif.org/vocabulary/gbif/dataset_subtype.xml
To the extent possible under law, the publisher has waived all rights to these data and has dedicated them to the Public Domain (CC0 1.0). Users may copy, modify, distribute and use the work, including for commercial purposes, without restriction.
Colombia, Depto Valle del Cauca, Mun La Cumbre, ver. Chicoral y Zaragoza, Reserva Forestal Protectora Regional Bitaco
-76.551
-76.496
3.597
3.545
2018-09-22
2017-07-08
Se trabajaron los grupos biológicos: anfibios, reptiles, aves, mamíferos y plantas
Acmella ciliata (Kunth) Cass.
Adelomyia melanogenys (Fraser, 1840)
Aegiphila alba Moldenke
Ageratum
Aglaiocercus kingi (Hartert, 1898)
Akodon affinis (J.A. Allen, 1912)
Alchornea acutifolia Müll. Arg.
Alchornea grandiflora Müll. Arg.
Alchornea latifolia Sw.
Allophylus excelsus (Triana & Planch.) Radlk.
Alsophila erinacea (H. Karst.) D.S. Conant
Amazilia franciae (Bourcier & Mulsant, 1846)
Anabacerthia variegaticeps (Sclater, 1857)
Aniba perutilis Hemsl.
Anisognathus somptuosus (Lesson, 1831)
Annona cherimolioides Triana & Planch.
Anolis antonii Boulenger, 1908
Anolis eulaemus Boulenger, 1908
Anolis ventrimaculatus Boulenger, 1911
Anoura cultrata Handley, 1960
Anthurium giraldoi Croat
Aotus zonalis Goldman, 1914
Ardisia guianensis (Aubl.) Mez
Arenaria lanuginosa (Michx.) Rohrb.
Arremon brunneinucha (Lafresnaye, 1839)
Asplenium
Atlapetes albinucha (Lafresnaye & D'Orbigny, 1838)
Aulacorhynchus haematopygus (Gould, 1835)
Basileuterus culicivorus (Deppe, 1830)
Basileuterus tristriatus (von Tschudi, 1844)
Bassaricyon gabbii J.A. Allen, 1876
Bassaricyon medius Thomas, 1909
Begonia
Beilschmiedia alloiophylla (Rusby) Kosterm.
Bidens pilosa L.
Billia rosea (Planch. & Linden) C. Ulloa & P. Jørg.
Blakea subconnata O. Berg ex Triana
Blechnum lehmannii Hieron.
Brosimum utile (Kunth) Oken
Browallia americana L.
Bunchosia
Buteo platypterus (Vieillot, 1823)
Buthraupis montana (D'Orbigny & Lafresnaye, 1837)
Calliandra trinervia Benth.
Calliphlox mitchellii (Bourcier, 1847)
Camellia sinensis (L.) Kuntze
Capsicum geminifolium (Damm.) Hunz.
Cardellina canadensis (Linnaeus, 1766)
Carollia brevicauda (Schinz, 1821)
Casearia arborea (Rich.) Urb.
Casearia megacarpa Cuatrec.
Casearia sylvestris Sw.
Castilleja arvensis Schltdl. & Cham.
Catharus ustulatus (Nuttall, 1840)
Cecropia obtusifolia Bertol.
Cecropia telealba Cuatrec.
Centrolene savagei (Ruíz-Carranza & Lynch, 1991)
Cerdocyon thous (Linnaeus, 1766)
Chamaedorea pinnatifrons (Jacq.) Oerst.
Chamaepetes goudotii (Lesson, 1828)
Chaptalia nutans (L.) Pol.
Chloris ciliata Sw.
Chlorochrysa nitidissima Sclater, 1873
Chlorophanes spiza (Linnaeus, 1758)
Chloropipo flavicapilla (P.L. Sclater, 1852)
Chlorospatha
Chlorospatha tokioensis Croat & L.P. Hannon
Chlorospingus canigularis (Lafresnaye, 1848)
Chlorospingus semifuscus Sclater & Salvin, 1873
Chlorostilbon melanorhynchus Gould, 1860
Chrysochlamys colombiana (Cuatrec.) Cuatrec.
Chrysochlamys dependens Planch. & Triana
Chusquea
Cinnamomum triplinerve (Ruiz & Pav.) Kosterm.
Clavija cauliflora Regel
Clidemia
Coeligena coeligena (Lesson, 1833)
Coereba flaveola (Linnaeus, 1758)
Colibri thalassinus (Swainson, 1827)
Commelina diffusa Burm. f.
Condaminea corymbosa (Ruiz & Pav.) DC.
Contopus virens (Linnaeus, 1766)
Cranioleuca erythrops (Sclater, 1860)
Cremastosperma awaense Pirie
Cremosperma hirsutissimum Benth.
Creurgops verticalis Sclater, 1858
Cricetidae
Critoniopsis occidentalis (Cuatrec.) H. Rob.
Crotophaga ani Linnaeus, 1758
Cryptopipo holochlora (Sclater, 1888)
Crypturellus soui (Hermann, 1783)
Cupania livida (Radlk.) Croat
Cuphea racemosa (L.f.) Spreng.
Cyathea andina (H. Karst.) Domin
Cyathea caracasana (Klotzsch) Domin
Cybianthus occigranatensis (Cuatrec.) G. Agostini
Cybianthus verticilloides (Cuatrec.) G. Agostini
Cyclarhis nigrirostris Lafresnaye, 1842
Cyperus
Cyphorhinus thoracicus Tschudi, 1844
Dendropsophus columbianus (Boettger, 1892)
Dermanura
Didelphis marsupialis Linnaeus, 1758
Diglossa caerulescens Sclater, 1856
Diglossa sittoides (D'Orbigny & Lafresnaye, 1838)
Doryfera ludovicae (Bourcier & Mulsant, 1847)
Dracula chimaera (Rchb. f.) Luer
Drymaria ovata Humb. & Bonpl. ex Schult.
Dussia lehmannii Harms
Dysithamnus mentalis (Temminck, 1823)
Elaeagia pastoensis L.E. Mora
Eleutheranthera tenella (Kunth) H. Rob.
Emilia coccinea (Sims) G. Don
Emilia fosbergii Nicolson
Empidonax virescens (Vieillot, 1818)
Endlicheria rubriflora Mez
Eragrostis
Eschweilera
Eschweilera antioquensis Dugand & Daniel
Eschweilera bogotensis R. Knuth
Eubucco bourcierii (Lafresnaye, 1845)
Eugenia
Euphonia cyanocephala (Vieillot, 1818)
Euphonia laniirostris D'Orbigny & Lafresnaye, 1837
Euphonia xanthogaster Sundevall, 1834
Eutoxeres aquila (Bourcier, 1847)
Falco sparverius Linnaeus, 1758
Faramea glandulosa Poepp. & Endl.
Faramea oblongifolia Standl.
Ficus
Ficus brevibracteata W.C. Burger
Ficus insipida Willd.
Florisuga mellivora (Linnaeus, 1758)
Fraxinus uhdei (Wenz.) Lingelsh.
Gaiadendron punctatum (Ruiz & Pav.) G. Don
Geissanthus kalbreyeri Mez
Gesneriaceae
Graffenrieda uribei Wurdack
Guarea kunthiana A. Juss.
Guatteria crassipes R.E. Fr.
Guatteria goudotiana Triana & Planch.
Guatteria hirsuta Ruiz & Pav.
Handleyomys alfaroi (J.A. Allen, 1891)
Hedyosmum cf. bonplandianum Kunth
Heliconia
Heliocarpus americanus L.
Henicorhina leucophrys (von Tschudi, 1844)
Herpetotheres cachinnans (Linnaeus, 1758)
Hieronyma macrocarpa Müll. Arg.
Hieronyma scabrida (Tul.) Müll. Arg.
Hydrocotyle leucocephala Cham. & Schltdl.
Hypochaeris radicata L.
Hypodactylus mantipus (Boulenger, 1908)
Hypoxis decumbens L.
Hyptis
Icterus chrysater (Lesson, 1844)
Impatiens balsamina L.
Inga acrocephala Steud.
Inga cinnamomea Spruce ex Benth.
Inga oerstediana Benth. ex Seem.
Isachne
Kyllinga pumila Michx.
Lacistema aggregatum (P.J. Bergius) Rusby
Ladenbergia oblongifolia (Humb. ex Mutis) L. Andersson
Leiothlypis peregrina (Wilson, A, 1811)
Lepidocolaptes lacrymiger (Des Murs, 1849)
Leucostethus fraterdanieli (Silverstone, 1971)
Masius chrysopterus (Lafresnaye, 1843)
Matisia bolivarii Cuatrec.
Meliosma frondosa Cuatrec. & Idrobo
Meliosma occidentalis Cuatrec.
Meliosma schlimii (Turcz.) Triana & Planch.
Melothria pendula L.
Meriania speciosa (Bonpl.) Naudin
Miconia acuminifera Triana
Miconia aff. dodecandra Cogn.
Miconia affinis DC.
Miconia gracilis Triana
Miconia longifolia (Aubl.) DC.
Miconia neomicrantha Judd & Skean
Miconia prasina (Sw.) DC.
Miconia prasinifolia Gleason
Milvago chimachima (Vieillot, 1816)
Mionectes striaticollis (D'Orbigny & Lafresnaye, 1837)
Momotus aequatorialis Gould, 1858
Monstera
Myadestes ralloides (D'Orbigny, 1840)
Myioborus miniatus (Swainson, 1827)
Myiodynastes chrysocephalus (von Tschudi, 1844)
Myiothlypis coronata (von Tschudi, 1844)
Myiozetetes cayanensis (Linnaeus, 1766)
Myotis riparius Handley, 1960
Myrcia popayanensis Hieron.
Myrmotherula schisticolor (Lawrence, 1865)
Nectandra acutifolia (Ruiz & Pav.) Mez
Nectandra purpurea (Ruiz & Pav.) Mez
Nephelomys pectoralis (J.A. Allen, 1912)
Nombre científico
Norantea guianensis Aubl.
Nymphargus ignotus (Lynch, 1990)
Ocotea
Ocreatus underwoodii (Lesson, 1832)
Odontophorus hyperythrus Gould, 1858
Otoba lehmannii (A.C. Sm.) A.H. Gentry
Oxalis
Oxalis corniculata L.
Pachyramphus polychopterus (Vieillot, 1818)
Pachysylvia semibrunnea (Lafresnaye, 1845)
Palicourea angustifolia Kunth
Palicourea calophlebia Standl.
Palicourea deviae C.M. Taylor
Palicourea gomezii C.M. Taylor
Paspalum
Passiflora
Passiflora arborea Spreng.
Patagioenas subvinacea (Lawrence, 1868)
Paullinia obovata (Ruiz & Pav.) Pers.
Peperomia
Persea
Phaethornis guy (Lesson, 1833)
Phaethornis syrmatophorus Gould, 1852
Pheucticus ludovicianus (Linnaeus, 1766)
Pheugopedius mystacalis Sclater, PL, 1860
Philodendron verrucosum L. Mathieu ex Schott
Pholidobolus vertebralis (O'Shaugnessy, 1879)
Phyllanthus niruri L.
Piaya cayana (Linnaeus, 1766)
Picoides fumigatus (D'Orbigny, 1840)
Picramnia gracilis Tul.
Picrasma excelsa (Sw.) Planch.
Pilea centradenioides Seem.
Pilea scandens Killip
Pionus menstruus (Linnaeus, 1766)
Piper
Piper aduncum L.
Piper crassinervium Kunth
Piper imperiale (Miq.) C.DC.
Pipraeidea melanonota (Vieillot, 1819)
Pipreola riefferii (Boissonneau, 1840)
Piranga rubra (Linnaeus, 1758)
Plantago australis Lam.
Platyrinchus mystaceus Vieillot, 1818
Platyrrhinus dorsalis (Thomas, 1900)
Poecilotriccus ruficeps (Kaup, 1852)
Pogonotriccus ophthalmicus (Taczanowski, 1874)
Pogonotriccus poecilotis (Sclater, 1862)
Polygala paniculata L.
Pouteria torta (Mart.) Radlk.
Premnoplex brunnescens (Sclater, 1856)
Premnornis guttuliger (Sclater, 1864)
Prestoea acuminata (Willd.) H.E. Moore
Pristimantis brevifrons (Lynch, 1981)
Pristimantis calcaratus (Boulenger, 1908)
Pristimantis erythropleura (Boulenger, 1896)
Pristimantis juanchoi (Lynch, 1996)
Pristimantis orpacobates (Lynch, Ruíz-Carranza and Ardila-Robayo, 1994)
Pristimantis palmeri (Boulenger, 1912)
Pristimantis thectopternus (Lynch, 1965)
Pseudelephantopus spicatus (Juss. ex Aubl.) C.F. Baker
Psychotria
Psychotria hazenii Standl.
Pteridium arachnoideum (Kaulf.) Maxon
Pygochelidon cyanoleuca (Vieillot, 1817)
Pyrrhomyias cinnamomeus (D´Orbigny & Lafresnaye, 1837)
Ramphocelus flammigerus (Jardine & Selby, 1833)
Riama laevis (Boulenger, 1908)
Richardia scabra L.
Ruagea glabra Triana & Planch.
Rytidostylis trianae (Cogn.) Kuntze
Salacia
Saltator atripennis Sclater, 1856
Saltator striatipectus Lafresnaye, 1847
Sanicula liberta Cham. & Schltdl.
Sapium stylare Müll. Arg.
Saurauia brachybotrys Turcz.
Schistes geoffroyi (Bourcier, 1843)
Sclerurus obscurior andinus (Chapman, 1914)
Scytalopus latrans Hellmayr, 1924
Scytalopus spillmanni Stresemann, 1937
Scytalopus vicinior Zimmer, 1939
Selaginella
Selaginella anceps (C. Presl) C. Presl
Serjania diffusa Radlk.
Setophaga fusca (Statius Muller, 1776)
Sibon nebulatus (Linnaeus, 1758)
Sida rhombifolia L.
Siparuna laurifolia (Kunth) A. DC.
Smilax domingensis Willd.
Solanum americanum Mill.
Solanum anisophyllum Van Heurck & Müll. Arg.
Solanum deflexiflorum Bitter
Sorocea trophoides W.C. Burger
Spinus psaltria (Say, 1823)
Spirotheca rosea (Seem.) P.E. Gibbs & W.S. Alverson
Spizaetus ornatus (Daudin, 1800)
Sporophila nigricollis (Vieillot, 1823)
Stenospermation
Sturnira bidens (Tomas, 1915)
Sturnira ludovici Anthony, 1924
Synallaxis azarae D'Orbigny, 1835
Tangara arthus Lesson, 1832
Tangara episcopus (Linnaeus, 1766)
Tangara gyrola (Linnaeus, 1758)
Tangara heinei (Cabanis, 1850)
Tangara labradorides (Boissonneau, 1840)
Tangara nigroviridis (Lafresnaye, 1843)
Tangara ruficervix (Prévost & des Murs, 1846)
Tangara vitriolina (Cabanis, 1850)
Tapera naevia (Linnaeus, 1766)
Tetrorchidium rubrivenium Poepp.
Thalurania colombica (Bourcier, 1843)
Thamnophilus multistriatus Lafresnaye, 1844
Thamnophilus unicolor (Sclater, 1859)
Tiaris olivaceus (Linnaeus, 1766)
Tradescantia zanonia (L.) Sw.
Trichanthera gigantea (Bonpl.) Nees
Troglodytes aedon Vieillot, 1809
Trogon collaris Vieillot, 1817
Trogon personatus Gould, 1842
Turdus fuscater d'Orbigny & Lafresnaye, 1837
Turdus ignobilis Sclater, PL, 1858
Turdus leucops (Taczanowski, 1877)
Tyrannus melancholicus Vieillot, 1819
Urotheca lateristriga (Berthold, 1859)
Vampyressa thyone Thomas, 1909
Varronia acuta (Pittier) Borhidi
Verbesina nudipes S.F. Blake
Vismia baccifera (L.) Triana & Planch.
Vochysia
Vochysia duquei Pilg.
Wedelia calycina Rich.
Xenops minutus (Sparrman, 1788)
Xenops rutilus Temminck, 1821
Xiphorhynchus erythropygius (Sclater, 1859)
Xiphorhynchus triangularis (Lafresnaye, 1842)
Youngia japonica (L.) DC.
Zentrygon frenata (Tschudi, 1843)
Zimmerius chrysops (Sclater, 1859)
Zonotrichia capensis (Müller, 1776)
unkown
Wilmar
Bolívar- García
Universidad del Valle
Investigador principal
Calle 13 # 100-00
Cali
Valle del Cauca
CO
wilmar.bolivar@correounivalle.edu.co
La matriz de priorización y evaluación de la integridad biológica de los hábitats evaluados en la Reserva Forestal Protectora de Bitaco, ubicada en la cuenca del río Bitaco, estima y discrimina las diferentes variables de estado identificadas como indicadoras “biológicas” en los usos de tierra que conforman la línea de base.
Está conformada por una matriz de análisis multinivel, en la que se registra a través de una jerarquía secuencial de mayor a menor, las variables de estado más significativas “niveles”; y que además condicionan el tipo, la riqueza, la distribución, la vulnerabilidad, las exigencias ecológicas y la abundancia de los indicadores determinados en los sistemas de estudio
Esta matriz posee una sección de “entrada” que está constituida por los datos obtenidos en campo y analizados de cada uno de los grupos seleccionados como indicadores biológicos, según el protocolo de monitoreo propuesto. De igual forma posee una sección de salida, conformada por la valoración numérica de los indicadores evaluados para cada uno de los hábitats o sistemas analizados.
Los niveles de análisis y valoración de los indicadores biológicos evaluados en las diferentes unidades de paisaje, han sido escogidos y jerarquizados en una matriz de importancia teniendo en cuenta información primaria y secundaria.
Los datos ingresados en la matriz son producto de analizar la información generada en campo por cada grupo bioindicador evaluado y sobre cada una de las variables de estado que contempla. Desde el inicio y a medida que se avanza sobre esta, cada uno de los niveles o variables de estado confronta la información obtenida con las distintas categorías que para cada grupo bioindicador se ha asumido como discriminantes y puntúa un valor de referencia para dicho carácter sobre el nivel especifico.
La cuenca alta del río Bitaco se encuentra ubicada en el municipio de La Cumbre, en las veredas Chicoral y Zaragoza de la parte media -alta de la Subcuenca del río Bitaco. Al norte limita con la cabecera municipal, al sur con el municipio de Dagua, al oriente con el municipio de Yumbo y al occidente con el corregimiento de Lomitas. Según el sistema actualizado de clasificación de biomas y ecosistemas, diseñado por la CVC y FAUNAGUA (2009), en el área se encuentran dos tipos de ecosistemas: Bosque medio húmedo en montaña fluvio gravitacional (BOMHUMH) y Bosque frío húmedo en montaña fluvio-gravitacional (BOFHUMH).
En la zona de estudio identificaron tres tipos de hábitat contrastantes: los bosques de la RFPR Bitaco (BR), los bosques secundarios (BS) y la zona productiva de cultivos de té (TÉ).
1.La RFPR Bitaco tiene una extensión de 194,3 ha donde predominan los bosques maduros intervenidos y los bosques sucesionales. En este estudio se trabajó la zona más conservada de la Reserva (Bosques maduros intervenidos) localizados en las zonas altas y en quebradas con altas pendientes, abarcando cerca de 181,9 ha.
2.Los bosques secundarios (BS) abarca cerca de 36,8 ha, donde se pueden diferenciar dos subzonas. El área alta la cual colinda con la RFPR Bitaco se caracteriza por presentar pendientes moderadas. En la composición vegetal predominan árboles entre 10 y 20 metros de altura, de similiar composición vegetal a la Reserva, el dosel tiene algunos claros, el sotobosque y el estrato bajo son discontinuos.
3. Zona productiva de cultivos de té (TÉ) comprende 50,7 ha, en un rango altitudinal entre 1.860 y 2.031 m s.n.m. En algunas zonas o lotes, las plantas de Té no han sido podadas generando una matriz muy tupida y un microambiente mucho más húmedo comparado con las zonas podadas las cuales presentan menor humedad
ANFIBIOS Y REPTILES
Fase de campo: para la colecta de la herpetofauna en cada uno de los sitios de muestreo, se utilizó el método de transectas de banda estrecha, través de trayectos previamente establecidos de 80 m de longitud por 4 m de ancho. Los muestreos se llevaron a cabo en la mañana entre las 09:00-13:00 y en las horas de la noche entre las 19:00-23:00 horas. Para cada uno de los individuos colectados se llenó una ficha de campo en el que se registró información concerniente a la hora de captura así como datos ecológicos del sitio de encuentro para cada individuo
AVES
La técnica de muestreo empleada para este grupo biológico fue la observación directa o captura visual y la captura pasiva.
• Captura visual u observación directa: se recorrieron senderos, bosques naturales y plantaciones. Se siguió la metodología de conteo por puntos de amplitud variable, la cual consiste en caminar lentamente y detenerse registrando los individuos visuales o auditivamente en cada punto esperando 10 minutos. Se seleccionaron 5 puntos en total, cada punto se ubicó cada 200 m para cubrir una longitud de 1 km para cada hábitat. Las actividades comportamentales como alimentación, percha, uso del hábitat (arborícola, arbustivo, terrestre, etc.) y tipo de alimento que consumen (insectos, vertebrados, frutos entre otros), fueron registradas. Los censos visuales se ejecutaron en las horas de la mañana entre las 06:00 y las 10:00 horas, y en la tarde entre las 16:00 y las 18:00 horas.
• Captura pasiva: Se utilizaron en total seis redes de niebla con extensión de 12 x 2.5 m, con un ojo de malla de 16 mm y se ubicaron durante cuatro días en cada hábitat, sin embargo fueron reubicadas una vez dentro del mismo hábitat después de dos días con el fin de abarcar más área de estudio. Se realizaron revisiones cada hora con algunas excepciones media hora por la brizna, brisa de la niebla y el frío. Las redes operaron entre 6- 10 h y 14- 18h
MAMÍFEROS VOLADORES
Se utilizaron diez redes de niebla de 12 m de longitud, las cuales operaron entre las 18:00 y 22:00 horas abarcando el primer pico de actividad de los quirópteros. Las redes eran revisadas casa hora y se ubicaron en posibles sitios de paso para los murciélagos, como en senderos, bordes y claros de bosque. De cada individuo capturado se registró especie, sexo y edad, y posteriormente los individuos fueron liberados. El listado taxonómico de especies se realizó siguiendo la propuesta de Gardner 2007, con los ajustes realizados por Ramírez-Chaves et al. 2016 para los mamíferos de Colombia
MAMÍFEROS TERRESTRES
En cada cobertura fueron empleadas un total de 70 trampas (60 Sherman y 10 National) ubicadas a lo largo de transectos y espaciadas aproximadamente cada 10 metros (Figura 8A y B). La cantidad de transectos por zonas fue diferente ajustándose al relieve del sitio de trabajado, y la accesibilidad del mismo. Se utilizaron dos tipos de cebo: 1) maíz trillado con sardina en salsa de tomate y 2) avena con esencia de vainilla, maduro y papaya Adicionalmente, se instaló de manera simultánea una cámara trampa en cada zona de muestreo, la cual operó durante 7 días efectivos (Figura 8.D). Cada uno de los individuos capturados fue identificado a la menor categoría posible, fotografiado y se registraron datos de: sexo, peso y medidas morfológicas (longitud total, longitud pata, longitud oreja, longitud cola, etc.); posteriormente los individuos fueron liberados.
PLANTAS
Se caracterizó la flora vascular de cada cobertura vegetal o ecosistema escogido en el área protegida, en términos de la composición y estructura de la vegetación de cada sitio muestreado y el potencial de regeneración. Para la medición de la estructura de la flora leñosa de cada cobertura vegetal o ecosistema de la reserva, se siguió la metodología de cinturón de Gentry (1982). En cada cobertura se realizaron transectos lineales de 50 m de largo por 2 m de ancho para un área total muestreada por transecto de 100 m2. Para ello se usó una cuerda de 50 m seccionada cada 10 m, y se proyectó 1 m a cada lado de ésta con una vara. Se registró el CAP (circunferencia a la altura del pecho) y la altura total de los rametos de los individuos leñosos (i.e. árbol, arbusto y liana) que presentaron un DAP (diámetro a la altura del pecho) ≥ 2,5 m medido a 1,3 m de altura desde el suelo, y el hábito de crecimiento. El CAP se tomó con una cinta métrica y la altura se estimó a ojo.
Para la medición del potencial de regeneración de la flora leñosa de cada cobertura vegetal o ecosistema, se realizaron cuatro (4) parcelas de 1 m2 en el área adyacente a cada transecto trazado en la medición de la estructura vegetal. Cada parcela se ubicó con una distancia entre ellas de 10 m, con lo cual la primera parcela estuvo en los primeros 10 m del transecto, la segunda a los 20 m, la tercera a los 30 m y la última a los 40 m. Se registraron las plántulas y juveniles
Análisis de Integridad Biológica para la Reserva Forestal Protectora Regional Bitaco_Convenio CVC- Univalle 108 de 2017
Wilmar
Bolívar- García
Alan
Giraldo- López
Eliana
Barona Cortés
Los Índices de Integridad Biológica (IIB) tienen en cuenta grupos naturales con alta capacidad de uso como indicadores de calidad ambiental, los cuales permiten descifrar factores ambientales tensionantes y ayudan a entender realidades complejas, a fin de mitigar los efectos de las intervenciones humanas sobre los ecosistemas naturales. En este sentido, el objetivo principal de esta investigación fue llevar a cabo el Análisis de Integridad Biológica para conocer el estado de conservación de la Reserva Forestal Protectora Regional Bitaco, teniendo en cuenta a los anfibios, reptiles, aves, mamíferos y plantas como bioindicadores.
Este convenio fue financiado por la Corporación Autónoma Regional del Valle del Cauca (CVC) y la Universidad del Valle
La cuenca alta del río Bitaco se encuentra ubicada en el municipio de La Cumbre, en las veredas Chicoral y Zaragoza de la parte media -alta de la Subcuenca del río Bitaco. Al norte limita con la cabecera municipal, al sur con el municipio de Dagua, al oriente con el municipio de Yumbo y al occidente con el corregimiento de Lomitas. Según el sistema actualizado de clasificación de biomas y ecosistemas, diseñado por la CVC y FAUNAGUA (2009), en el área se encuentran dos tipos de ecosistemas: Bosque medio húmedo en montaña fluvio gravitacional (BOMHUMH) y Bosque frío húmedo en montaña fluvio-gravitacional (BOFHUMH).En esta zona se identificaron tres tipos de hábitat contrastantes: los bosques de la RFPR Bitaco (BR), los bosques secundarios (BS) y la zona productiva de cultivos de té (TÉ).
La RFPR Bitaco tiene una extensión de 194,3 ha donde predominan los bosques maduros intervenidos y los bosques sucesionales. En este estudio se trabajó la zona más conservada de la Reserva (Bosques maduros intervenidos) localizados en las zonas altas y en quebradas con altas pendientes, abarcando cerca de 181,9 ha. Las coberturas boscosas se caracterizan por presentar un alto grado de epifitismo con dominancia de las familias Orchidaceae, Araceae, Bromeliaceae y Gesneriaceae, Ericaceae, así como gran abundancia de musgos, hepáticas y líquenes.
Los bosques secundarios (BS) abarca cerca de 36,8 ha, donde se pueden diferenciar dos subzonas. El área alta la cual colinda con la RFPR Bitaco se caracteriza por presentar pendientes moderadas. En la composición vegetal predominan árboles entre 10 y 20 metros de altura, de similiar composición vegetal a la Reserva, el dosel tiene algunos claros, el sotobosque y el estrato bajo son discontinuos. Florísticamente está compuesto por árboles y arbustos de la familia Rubiaceae, seguido de Lauraceae y Melastomataceae, aunque también hay una alta abundancia de helechos arbóreos como Cyathea caracassana (Cyatheceae).Zona productiva de cultivos de té (TÉ)comprende un área de 50,7 ha, en un rango altitudinal entre 1.860 y 2.031 m s.n.m. En algunas zonas o lotes, las plantas de Té no han sido podadas generando una matriz muy tupida y un microambiente mucho más húmedo comparado con las zonas podadas las cuales presentan menor humedad.
2018-11-06T05:49:04.146-05:00
dataset
Bolívar- García W, Barona Cortés E, Giraldo López A (2018): Análisis de Integridad Biológica en la Reserva Forestal Protectora Regional Bitaco. Convenio CVC- Univalle 108 de 2017. v2.2. Universidad del Valle. Dataset/Occurrence. https://doi.org/10.15472/rydunn
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UV-C
Registro Nacional de Colecciones Biológicas: 81
Colección de Anfibios y Reptiles
UV
Registro Nacional de Colecciones Biológicas: 9
Vertebrados Mamíferos
CVA-UV
Registro Nacional de Colecciones Biológicas: 78
Colección de Vertebrados - Aves Universidad del Valle
CUVC
Registro Nacional de Colecciones Biológicas: 34
Herbario CUVC "Luis Siguifredo Espinal - Tascón"
alcohol
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