Estudio de Impacto Ambiental para la Línea de Transmisión a 230 kV Chinú - Montería y subestaciones asociadas

Registros

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Versiones

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Bastidas Parrado D (2022): Estudio de Impacto Ambiental para la Línea de Transmisión a 230 kV Chinú - Montería y subestaciones asociadas. v1.0. No organization. Dataset/Occurrence. https://ipt.biodiversidad.co/permisos/resource?r=1469_ltchimon_20161104&v=1.0

Derechos

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Registro GBIF

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Palabras clave

Amphibia; Arthoniomycetes; Aves; Bryopsida; Dothideomycetes; Equisetopsida; Eudicotyledoneae; Eurotiomycetes; Jungermanniopsida; Lecanoromycetes; Mamamlia; Monocotyledoneae; Reptilia; Specimen; Specimen; Occurrence

Contactos

Cobertura geográfica

Los muestreos se desarrollaron en los municipios de Cereté, Chinú, Ciénaga de Oro, Montería, Sahagun, San Carlos (Córdoba). En el área de estudio se presentan 2 biomas: Zonobioma seco tropical del caribe, helobioma del magdalena y caribe, el área de estudio se encuentra en un área de planicie principalmente, lomerios y piedemonte en menor proporción. El área de estudio esta dominada por coberturas dedicadas a las actividades pecuarias y agricultura. Los ecosistemas naturales identificados correspondieron a bosques de galerías, ciénagas y área pantanosas.

Cobertura taxonómica

Todos los anfobios se identificaron en orden, familia, genero y especie y fueron identificados como: Orden: Anura Familia: Bufonidae, Craugastoridae, Hylidae, Leptodactylidae, Microhylidae Género : Craugastor, Dendropsophus, Elachistocleis, Engystomops, Hypsiboas, Leptodactylus, Pleurodema, Pseudopaludicola, Rhinella, Scarthyla, Scinax, Smilisca Especie: Craugastor raniformis, Dendropsophus microcephalus, Elachistocleis pearsei, Engystomops pustulosus, Hypsiboas crepitans, Hypsiboas pugnax, Leptodactylus bolivianus, Leptodactylus fragilis, Leptodactylus fuscus, Leptodactylus insularum, Leptodactylus savagei, Pleurodema brachyops, Pseudopaludicola pusilla, Rhinella humboldti, Rhinella marina, Scarthyla vigilans, Scinax rostratus, Scinax ruber, Smilisca sila

Todos las aves se identificaron en orden, familia, genero y especie y fueron identificados como: Órdenes: Accipitriformes, Anseriformes, Apodiformes, Caprimulgiformes, Cathartiformes, Charadriiformes, Columbiformes, Coraciiformes, Cuculiformes, Falconiformes, Galbuliformes, Galliformes, Gruiformes, Passeriformes, Pelecaniformes, Piciformes, Psittaciformes, Suliformes Familias: Accipitridae, Anatidae, Anhimidae, Apodidae, Aramidae, Ardeidae, Bucconidae, Caprimulgidae, Cardinalidae, Cathartidae, Cerylidae, Charadriidae, Columbidae, Corvidae, Cracidae, Cuculidae, Emberizidae, Falconidae, Furnariidae, Galbulidae, Hirundinidae, Icteridae, Insertae sedis, Jacanidae, Mimidae, Nyctibiidae, Odontophoridae, Parulidae, Phalacrocoracidae, Picidae, Psittacidae, Rallidae, Scolopacidae, Thamnophilidae, Thraupidae, Threskiornithidae, Tityridae, Trochilidae, Troglodytidae, Turdidae, Tyrannidae, Vireonidae Géneros: Actitis, Amazilia, Amazona, Anthracothorax, Ara, Aramides, Aramus, Aratinga, Ardea, Arremonops, Arundinicola, Brotogeris, Bubulcus, Busarellus, Buteogallus, Butorides, Campephilus, Camptostoma, Campylorhynchus, Cantorchilus, Caracara, Cathartes, Certhiaxis, Chalybura, Chauna, Chloroceryle, Chlorostilbon, Chrysomus, Coccyzus, Coereba, Colaptes, Colinus, Columbina, Coragyps, Crotophaga, Cyanocorax, Cyclarhis, Dendrocincla, Dendrocygna, Dendroplex, Dryocopus, Egretta, Elaenia, Elanus, Empidonax, Fluvicola, Formicivora, Forpus, Furnarius, Galbula, Gampsonix, Geothlypis, Geranospiza, Herpetotheres, Hirundo, Hypnelus, Icterus, Jacana, Leiothlypis, Leptotila, Machetornis, Melanerpes, Mesembrinibis, Milvago, Mimus, Myiodynastes, Myiozetetes, Nemosia, Nyctibius, Nycticorax, Nyctidromus, Oporornis, Ortalis, Pachyramphus, Parabuteo, Parkesia, Patagioenas, Phaethornis, Phalacrocorax, Pheucticus, Phimosus, Piaya, Pilherodius, Pitangus, Poecilotriccus, Porphyrio, Progne, Protonotaria, Quiscalus, Rostrhamus, Rupornis, Sakesphorus, Saltator, setophaga, Sporophila, Stelgidopteryx, Streptoprocne, Sturnella, Synallaxis, Theristicus, Thraupis, Thryophilus, Tigrisoma, Todirostrum, Tringa, Troglodytes, Turdus, Tyrannus, Vanellus, Vireo, Volatinia Especie: Actitis macularius, Amazilia tzacatl, Amazona amazonica, Amazona ochrocephala, Anthracothorax nigricollis, Ara ambiguus, Ara severa, Aramides cajaneus, Aramus guarauna, Aratinga pertinax, Ardea alba, Ardea cocoi, Arremonops conirostris, Arundinicola leucocephala, Brotogeris jugularis, Bubulcus ibis, Busarellus nigricollis, Buteogallus meridionalis, Butorides striatus, Campephilus melanoleucos, Camptostoma obsoletum, Campylorhynchus griseus, Campylorhynchus zonatus, Cantorchilus leucotis, Caracara plancus, Cathartes aura, Cathartes burrovianus, Certhiaxis cinnamomeus, Chalybura buffonii, Chauna chavaria, Chloroceryle amazona, Chlorostilbon gibsoni, Chrysomus icterocephalus, Coccyzus americanus, Coereba flaveola, Colaptes punctigula, Colinus cristatus, Columbina minuta, Columbina squammata, Columbina talpacoti, Coragyps atratus, Crotophaga ani, Crotophaga major, Cyanocorax affinis, Cyclarhis gujanensis, Dendrocincla fuliginosa, Dendrocygna autumnalis, Dendroplex picus, Dryocopus lineatus, Egretta caerulea, Egretta thula, Elaenia chiriquensis, Elaenia flavogaster, Elanus leucurus, Empidonax virescens, Fluvicola pica, Formicivora grisea, Forpus conspicillatus, Forpus xanthopterygius, Furnarius leucopus, Galbula ruficauda, Gampsonix swainsonii, Geothlypis aequinoctialis, Geranospiza caerulescens, Herpetotheres cachinnans, Hirundo rustica, Hypnelus ruficollis, Icterus auricapillus, Icterus galbula, Icterus nigrogularis, Jacana jacana, Leiothlypis peregrina, Leptotila verreauxi, Machetornis rixosa, Melanerpes rubricapillus, Mesembrinibis cayennensis, Milvago chimachima, Mimus gilvus, Myiodynastes luteiventris, Myiodynastes maculatus, Myiozetetes cayanensis, Nemosia pileata, Nyctibius grandis, Nycticorax nycticorax, Nyctidromus albicollis, Oporornis agilis, Ortalis garrula, Pachyramphus cinnamomeus, Pachyramphus rufus, Parabuteo unicinctus, Parkesia noveboracensis, Patagioenas cayanensis, Phaethornis anthophilus, Phalacrocorax brasilianus, Pheucticus ludovicianus, Phimosus infuscatus, Piaya cayana, Pilherodius pileatus, Pitangus lictor, Pitangus sulphuratus, Poecilotriccus sylvia, Porphyrio martinicus, Progne chalybea, Protonotaria citrea, Quiscalus lugubris, Rostrhamus sociabilis, Rupornis magnirostris, Sakesphorus canadensis, Saltator coerulescens, Saltator maximus, setophaga aestiva, setophaga petechia, Setophaga ruticilla, Sporophila intermedia, Sporophila minuta, Sporophila nigricollis, Stelgidopteryx ruficollis, Streptoprocne zonaris, Sturnella militaris, Synallaxis albescens, Synallaxis candei, Theristicus caudatus, Thraupis episcopus, Thraupis palmarum, Thryophilus rufalbus, Tigrisoma lineatum, Todirostrum cinereum, Tringa flavipes, Troglodytes aedon, Turdus grayi, Tyrannus dominicensis, Tyrannus melancholicus, Tyrannus savana, Vanellus chilensis, Vireo flavifrons, Volatinia jacarina

Todos los mamíferos se identificaron en orden, familia, genero y especie y fueron identificados como: Órdenes: Chiroptera, Didelphimorphia, Lagomorpha, Pilosa, Primates, Rodentia Familias: Atelidae, Bradypodidae, Cricetidae, Didelphidae, Heteromyidae, Leporidae, Phyollostomidae, Sciuridae Género s: Alouatta, Artibeus, Bradypus, Caluromys, Carollia, Desmodus, Didelphis, Glossophaga, Heteromys, Marmosa, Oligoryzomys, Oryzomys, Phylloderma, Phyllostomus, Sciurus, sturnira, Sylvilagus, Zygodontomys Especie: Alouatta seniculus, Artibeus jamaicensis, Artibeus sp, Bradypus variegatus, Caluromys lanatus, Carollia perspicillata, Carollia sp, Desmodus rotundus, Didelphis marsupialis, Glossophaga soricina, Heteromys sp, Marmosa robinsoni, Oligoryzomys fulvescens, Oligoryzomys sp, Oryzomys couesi, Oryzomys sp, Phylloderma sp, Phyllostomus discolor, Phyllostomus hastatus, Phyllostomus sp, Sciurus granatensis, Sturnira lilium, sturnira sp, Sylvilagus floridanus, Zygodontomys brevicauda

Todos los reptiles se identificaron en orden, familia, genero y especie y fueron identificados como: Órdenes: Crocodylia, Sauria, Serpentes, Squamata, Testudines Familias Ameiva, Anolis, Basiliscus, Boa, Bothrops, Caiman, Cnemidophorus, Gonatodes, Iguana, Imantodes, Kinosternon, Liophis, Mabuya, Polychrus, Siphlophis, Thamnodynastes, Trachemys, Tupinambis Géneros: Boidae, Colubridae, Corytophanidae, Crocodylidae, Dactyloidae, Dipsadidae, Emydidae, Iguanidae, Kinosternidae, Polychrotidae, Scincidae, Sphaerodactylidae, Teiidae, Viperidae Especie: Ameiva ameiva, Anolis auratus, Anolis tropidogaster, Basiliscus basiliscus, Basiliscus galeritus, Boa constrictor, Bothrops asper, Caiman crocodilus, Cnemidophorus lemniscatus, Gonatodes albogularis, Iguana iguana, Imantodes cenchoa, Kinosternon scorpioides, Liophis lineatus, Mabuya sp, Polychrus gutturosus, Siphlophis cervinus, Thamnodynastes gambotensis, Trachemys callirostris, Tupinambis teguixin

Todos las plantas se identificaron en orden, familia, genero y especie y fueron identificados como: Órdenes: Allismatales, Arthoniales, Asparragales, Boraginales, Brassicales, Caryophillales, Caryophyllales, Cucurbitales, Dicranales, Dioscoreales, Ericales, Fabales, Gentianales, Hypnales, Lamiales, Laurales, Liliales, Magnoliales, Malpighiales, Myrtales, Piperales, Porellales, Pottiales, Ranunculales, Rosales, Santalales, Sapindales, Solanales, Vitales, Zygophyllales Familias: Acanthaceae, Amaranthaceae, Anacardiaceae, Annonaceae, Apocynaceae, Araceae, Arthoniaceae, Bignoniaceae, Boraginaceae, Cactaceae, Calymperaceae, Capparaceae, Combretaceae, Convolvulaceae, Cucurbitaceae, Dioscoreaceae, Entodontaceae, Euphorbiaceae, Lamiaceae, Lauraceae, Lecythidaceae, Leguminosae, Lejeuneaceae, Loranthaceae, Malpighiaceae, Meliaceae, Mennispermaceae, Moraceae, Myrtaceae, Nyctaginaceae, Octoblepharaceae, Orchidaceae, Passifloraceae, Phyllanthaceae, Piperaceae, Polygonaceae, Rubiaceae, Salicaceae, Santalaceae, Sapindaceae, Sapotaceae, Smilacaceae, Stereophyllaceae, Vitaceae, Zygophyllaceae Géneros: Acacia, Albizia, Alibertia, Anadenanthera, Anemopaegma, Anemopaegma , Annona, Astronium, Azadirachta, Bignonia , Brassavola , Bulnesia, Calycophyllum, Calymperes, Capparis, Casearia, Cassia, Chamissoa , Chloroleucon, Chomelia, Cissampelos , Cissus , Coccoloba, Cordia, Crateva, Cryptothecia, Cupania, Cyrtopodium , Dioscorea , Dolichandra, Dolichandra , Entodon , Entodontopsis, Erythrina, Eugenia, Ficus, Ficus , Ficus , Genipa, Guapira, Herpothallon, Hylocereus, Inga, Ipomoea, Jatropha, Lecythis, Lejeunea , Lonchocarpus, Luffa , Malpighia, Merremia , Mesechites, Momordica , Myrospermum, Nectandra, Neea, Octoblepharum, Oryctanthus , Oxandra, Luffa , Passiflora , Paullinia , Philodendron, Phoradendron , Phyllanthus, Piper, Pithecellobium, Platymiscium, Poeppigia, Pouteria, Pterocarpus, Randia, Rauvolfia, Rollinia, Sapium, Senna, Sicydium, Smilax , Spondias, Struthanthus , Syzygium, Terminalia, Tournefortia, Trichanthera, Trichilia, Trichocentrum , Triplaris, Vitex, Xylosma Especies: Acacia glomerosa, Albizia niopoides, Alibertia edulis, Anadenanthera peregrina, Anemopaegma chrysanthum, Anemopaegma chrysanthum, Annona glabra, Annona reticulata, Astronium graveolens, Azadirachta indica, Bignonia corymbosa, Brassavola nodosa, Bulnesia arborea, Calycophyllum candidissimum, Calymperes palisotii, Capparis indica, Casearia arguta, Casearia nitida, Casearia sylvestris, Cassia javanica, Chamissoa altissima, Chloroleucon mangense, Chomelia spinosa, Cissampelos laxiflora, Cissampelos tropaeolifolia, Cissus verticillata, Coccoloba, Coccoloba caracasana, Coccoloba colombiana, Cordia alliodora, Cordia protracta, Crateva tapia, Cryptothecia sp, Cryptothecia striata, Cupania americana, Cupania scrobiculata, Cyrtopodium paniculatum, Dioscorea urophylla, Dolichandra unguis-cati, Dolichandra unguis-cati, Entodon cf. beyrichii, Entodon macropodus, Entodontopsis leucostega, Erythrina fusca, Eugenia acapulcensis, Eugenia florida, Eugenia uniflora, Ficus, Ficus dendrocida, Ficus nymphaeifolia, Ficus pallida, Ficus altissima, Ficus americana, Ficus dendrocida, Ficus hartwegii, Ficus pallida, Genipa americana, Guapira costaricana, Herpothallon sp, Hylocereus monacanthus, Inga spectabilis, Inga vera, Ipomoea sp, Jatropha curcas, Lecythis minor, Lejeunea cf. controversa, Lejeunea controversa, Lejeunea sp, Lejeunea trinitensis, Lonchocarpus velutinus, Luffa operculata, Malpighia glabra, Merremia quinquefolia, Mesechites trifidus, Momordica charantia, Myrospermum frutescens, Nectandra turbacensis, Neea amplifolia, Neea divaricata, Octoblepharum albidum, Oryctanthus alveolatus, Oxandra panamensis, Passiflora biflora, Passiflora misera, Paullinia fuscescens, Paullinia serjaniifolia, Philodendron jacquinii, Phoradendron quadrangulare, Phyllanthus elsiae, Piper marginatum, Piper tuberculatum, Pithecellobium dulce, Pithecellobium lanceolatum, Platymiscium pinnatum, Poeppigia procera, Pouteria caimito, Pterocarpus officinalis, Randia aculeata, Rauvolfia tetraphylla, Rollinia danforthii, Sapium glandulosum, Senna bicapsularis, Sicydium tamnifolium, Smilax spinosa, Spondias mombin, Spondias purpurea, Struthanthus orbicularis, Syzygium cumini, Terminalia catappa, Tournefortia bicolor, Trichanthera gigantea, Trichilia hirta, Trichocentrum nudum, Triplaris cumingiana, Vitex cymosa, Xylosma elegans

Todos las plantas se identificaron en orden, familia, genero y especie y fueron identificados como: Órdenes: Arthoniales, Lecanorales, Ostropales, Peltigerales, Pyrenulales, Teloschistales, Trypetheliales Familia Familias: Arthoniaceae, Collemataceae, Graphidaceae, Parmeliaceae, Physciaceae, Pyrenulaceae, Ramalinaceae, Roccellaceae, Trypetheliaceae Géneros: Arthonia, Bacidia, Carbacantographis, Coniocarpon, Cresponea, Diorygma, Dyplolabia, Graphis, Lecanactis, Leptogium, Opegrapha, Parmotrema, Phaeographis, Physcia, Pyrenula, Pyxine, Ramalina, Trypethelium Especies: Arthonia rubella, Bacidia medialis, Bacidia russeola, Bacidia sp, Carbacantographis Carbacantographis sp, Carbacantographis marcescens, Coniocarpon cinnabarinum, Cresponea flava, Diorygma hieroglyphicum, Dyplolabia oryzoides, Graphis sp, Graphis subassimilis, Lecanactis aff elaeocarpa, Leptogium denticulatum, Opegrapha aff cylindrica, Opegrapha aff quintana, Opegrapha sp, Parmotrema praesorediosum, Parmotrema praesorediosum, Phaeographis nylanderi, Physcia alba, Physcia aff minutula, Physcia aff sorediosa, Physcia aff sorediosa, Physcia decorticata, Physcia erumpens, Physcia tenuis, Pyrenula aff macrocarpa, Pyrenula macrocarpa, Pyrenula macularis, Pyrenula nitidula, Pyrenula ochraceoflava, Pyxine cocoës, Ramalina aspera, Trypethelium eluteriae, Trypethelium sp1

Cobertura temporal

Datos del proyecto

No hay descripción disponible

Personas asociadas al proyecto:

Métodos de muestreo

Para FLORA: Las unidades de muestreo correspondieron a parcelas, las cuales variaron de acuerdo con el biotipo dominante del ecosistema a caracterizar; de esta forma siguiendo los planteamientos metodológicos de Rangel &Velásquez (1997) y Villareal et al (2006), los cuales se basan en la propuesta de Gentry (1982), se establecieron las áreas de las unidades de muestreo para cada tipo de ecosistema. Una vez establecidas las parcela temporales, se inició el proceso de recolección de información primaria para la caracterización de los ecosistemas naturales (3 parcelas. Así pues, en el área de muestreo se inició la medición y registro de información de los individuos encontrados, el tamaño de las parcelas fueron de 10x100 m, dividida en 10 subparcelas de 10x10 m, en estas se censaron y midieron todos los individuos fustales con diámetro 10 cm diámetro a la altura de pecho (DAP a 1,3 m del suelo). En 2 subparcelas escogidas aleatoriamente, se censaron individuos de tipo latizales y brinzales. Adicionalmente se realizó el censo forestal de todos los individuos fustales que hacían parte del área de influencia directa del proyecto, comprendida básicamente por un corredor de 32 metros de ancho por 66 km de longitud. Para los casos anteriormente mencionados, la colecta se realiza con la ayuda de un cortarramas, se tomaron 1 ó dos duplicados por muestra, intentando que estas tuvieran al menos dos entrenudos e inflorescencias y/o infrutescencias, cuando fuese posible. Se consignaron los siguientes datos en la libretas de campo y etiquetas que acompañaban a cada una de las muestras: código de colección, descripción planta, localidad, hábitat, nombre colector/es, fecha. El prensado del material se realizó en hojas de periódico, una vez el material se encuentra prensado, se realizaron paquetes de entre 20 a 30 cm de altura, que fueron depositados en bolsas plásticas de calibre cuatro, sobre las cuales se esparció alcohol al 75% de forma suficiente para garantizar la preservación. Cada uno de los paquetes fue almacenado entre 3 días y una semana, para posteriormente ser embalado y enviado a Bogotá, para su determinación. El material fue secado y puesto en cuarentena en el herbario COL, determinado por botánicos en los laboratorios de dicho herbario y de la empresa -CONCOL-. Finalmente se seleccionó el material adecuado para el depósito en el herbario COL. Para la caracterización de EPIFITAS Vasculares y No Vasculares al 100% en los árboles reportados en el Censo Forestal y 3 parcelas de caracterización como mínimo en cada ecosistema natural presente en el AID, se seleccionaron 8 forófitos por parcela. Para Epifitas Vasculares se realizó en conteo de individuos por forófito, en el caso de las Epifitas No Vasculares, se seleccionó 8 forófitos y se utilizó una plantilla de acetato de 30 X 20 cm por cada espécimen, además para las terrestres y Litófitas se realizó dos (2) parcelas de muestreo. Se seleccionaron 5 levantamientos (cada 10 m) y se usó plantilla de acetato de 30 X 20 cm con cuadricula de 1 cm2. Se realizó la toma de datos por especimen, datos espaciales (geográficos), morfoespecie, número de individuos, número de forófito (árbol), estrato vertical, abundancia, forma de crecimiento en un total de 58 transectos MAMIFEROS: Durante el muestreo de mamíferos se instalaron 40 trampas Sherman, 3 cámaras sensibles al movimiento, cada una de estas durante tres noches por cada cobertura vegetal y 10 redes de niebla de 12 m de longitud las cuales se extendieron 6 horas en la noche en cada cobertura vegetal. AVES: Los registros visuales y auditivos se obtuvieron mediante la metodología de Stiles y Roselli (1998), efectuando recorridos de observación de 3 a 5 Km, en horas de la mañana (5:30 - 11:00 am) y horas de la tarde (15:30 – 18:30), para obtener el número más alto de avistamientos y registros auditivos. Igualmente, se realizaron recorridos nocturnos en cada hábitat entre las 18:00-22:00 horas. A fin de registrar aves crepusculares como búhos, gallinaciegas, entre otras. Los sitios de muestreo se determinaron basándose principalmente en la representatividad y el tipo de la cobertura vegetal del área respecto a la región, el mayor esfuerzo de muestreo se realizó en las unidades con mayor complejidad en su estructura vegetal. HERPETO: Se tomaron los bordes de bosque, caminos, ecotonos y lechos de quebradas como transectos de longitud variable. Los recorridos se hicieron entre las horas de mayor actividad de las especies presentes en la región (4:30 pm - 10:30 pm), adicionalmente para los reptiles se realizarón transectos matutinos (8:00 am – 11:00 am), donde se registraron las especies con hábitos diurnos.

Descripción de la metodología paso a paso:

1. Para FLORA: Las unidades de muestreo correspondieron a parcelas, las cuales variaron de acuerdo con el biotipo dominante del ecosistema a caracterizar; de esta forma siguiendo los planteamientos metodológicos de Rangel &Velásquez (1997) y Villareal et al (2006), los cuales se basan en la propuesta de Gentry (1982), se establecieron las áreas de las unidades de muestreo para cada tipo de ecosistema. Una vez establecidas las parcela temporales, se inició el proceso de recolección de información primaria para la caracterización de los ecosistemas naturales (3 parcelas. Así pues, en el área de muestreo se inició la medición y registro de información de los individuos encontrados, el tamaño de las parcelas fueron de 10x100 m, dividida en 10 subparcelas de 10x10 m, en estas se censaron y midieron todos los individuos fustales con diámetro 10 cm diámetro a la altura de pecho (DAP a 1,3 m del suelo). En 2 subparcelas escogidas aleatoriamente, se censaron individuos de tipo latizales y brinzales. Adicionalmente se realizó el censo forestal de todos los individuos fustales que hacían parte del área de influencia directa del proyecto, comprendida básicamente por un corredor de 32 metros de ancho por 66 km de longitud. Para los casos anteriormente mencionados, la colecta se realiza con la ayuda de un cortarramas, se tomaron 1 ó dos duplicados por muestra, intentando que estas tuvieran al menos dos entrenudos e inflorescencias y/o infrutescencias, cuando fuese posible. Se consignaron los siguientes datos en la libretas de campo y etiquetas que acompañaban a cada una de las muestras: código de colección, descripción planta, localidad, hábitat, nombre colector/es, fecha. El prensado del material se realizó en hojas de periódico, una vez el material se encuentra prensado, se realizaron paquetes de entre 20 a 30 cm de altura, que fueron depositados en bolsas plásticas de calibre cuatro, sobre las cuales se esparció alcohol al 75% de forma suficiente para garantizar la preservación. Cada uno de los paquetes fue almacenado entre 3 días y una semana, para posteriormente ser embalado y enviado a Bogotá, para su determinación. El material fue secado y puesto en cuarentena en el herbario COL, determinado por botánicos en los laboratorios de dicho herbario y de la empresa -CONCOL-. Finalmente se seleccionó el material adecuado para el depósito en el herbario COL. Para la caracterización de EPIFITAS Vasculares y No Vasculares al 100% en los árboles reportados en el Censo Forestal y 3 parcelas de caracterización como mínimo en cada ecosistema natural presente en el AID, se seleccionaron 8 forófitos por parcela. Para Epifitas Vasculares se realizó en conteo de individuos por forófito, en el caso de las Epifitas No Vasculares, se seleccionó 8 forófitos y se utilizó una plantilla de acetato de 30 X 20 cm por cada espécimen, además para las terrestres y Litófitas se realizó dos (2) parcelas de muestreo. Se seleccionaron 5 levantamientos (cada 10 m) y se usó plantilla de acetato de 30 X 20 cm con cuadricula de 1 cm2. Se realizó la toma de datos por especimen, datos espaciales (geográficos), morfoespecie, número de individuos, número de forófito (árbol), estrato vertical, abundancia, forma de crecimiento en un total de 58 transectos MAMIFEROS: Durante el muestreo de mamíferos se instalaron 40 trampas Sherman, 3 cámaras sensibles al movimiento, cada una de estas durante tres noches por cada cobertura vegetal y 10 redes de niebla de 12 m de longitud las cuales se extendieron 6 horas en la noche en cada cobertura vegetal. AVES: Los registros visuales y auditivos se obtuvieron mediante la metodología de Stiles y Roselli (1998), efectuando recorridos de observación de 3 a 5 Km, en horas de la mañana (5:30 - 11:00 am) y horas de la tarde (15:30 – 18:30), para obtener el número más alto de avistamientos y registros auditivos. Igualmente, se realizaron recorridos nocturnos en cada hábitat entre las 18:00-22:00 horas. A fin de registrar aves crepusculares como búhos, gallinaciegas, entre otras. Los sitios de muestreo se determinaron basándose principalmente en la representatividad y el tipo de la cobertura vegetal del área respecto a la región, el mayor esfuerzo de muestreo se realizó en las unidades con mayor complejidad en su estructura vegetal. HERPETO: Se tomaron los bordes de bosque, caminos, ecotonos y lechos de quebradas como transectos de longitud variable. Los recorridos se hicieron entre las horas de mayor actividad de las especies presentes en la región (4:30 pm - 10:30 pm), adicionalmente para los reptiles se realizarón transectos matutinos (8:00 am – 11:00 am), donde se registraron las especies con hábitos diurnos.

Datos de la colección

Metadatos adicionales