Estudios bióticos: Plantas, edafofauna epígea, anfibios y aves de los Complejos de Páramos de Sonsón y Urrao

Última versión Publicado por Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt en Mar 22, 2018 Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt

Este recurso agrupa los resultados del trabajo de investigación llevado a cabo en los complejos de paramos “Sonsón” y “Urrao” durante marzo-agosto de 2014. Los páramos muestreados en el complejo Sonsón fueron: La Vieja, Las Palomas, Chaverras, Norí y Valle Alto (Salamina). Los transectos en Urrao se establecieron en los páramos Pená y La Horqueta (municipio de Abriaquí), El Junco (municipio de Caicedo), El Sol (municipio de Urrao) y Cerro Plateado (municipio de Salgar). El objetivo principal fue determinar la composición florística, ornitológica, edafofauna y herpetológica en cada complejo de páramos y determinar su similitud en diferentes rangos altitudinales que abarcaban los ecosistemas de bosque altoandino, arbustal y herbazal o páramo.

Registros

Los datos en este registros biológicos recurso han sido publicados como Archivo Darwin Core(DwC-A), el cual es un formato estándar para compartir datos de biodiversidad como un conjunto de una o más tablas de datos. La tabla de datos del core contiene 16,929 registros. también existen 2 tablas de datos de extensiones. Un registro en una extensión provee información adicional sobre un registro en el core. El número de registros en cada tabla de datos de la extensión se ilustra a continuación.

  • Occurrence (core)
    16929
  • MeasurementOrFact 
    287793
  • ResourceRelationship 
    16929

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Instituto de Biología, Universidad de Antioquia, Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt (2015). Estudios bióticos: Estudios bióticos: Plantas, edafofauna epígea, anfibios y aves de los Complejos de Páramos de Sonsón y Urrao. 16.929 registros, aportados por: León, O. (Contacto del recurso), Alzate, F. (Creador del recurso, Proveedor de metadatos). Versión 1.1. http://doi.org/10.15472/wiu5hg

Derechos

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El publicador y propietario de los derechos de este trabajo es Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt. This work is licensed under a Creative Commons Attribution Non Commercial (CC-BY-NC) 4.0 License.

Registro GBIF

Este recurso ha sido registrado en GBIF con el siguiente UUID: 5dfaf2ac-5980-4ec5-8490-4607fcd59123.  Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt publica este recurso, y está registrado en GBIF como un publicador de datos avalado por Colombian Biodiversity Information System.

Palabras Clave

aves; edafofauna; flora; herpetofauna; complejo de páramos; altitud; gradiente altitudinal; diversidad; rango taxonómico; especie; Sonsón; Urrao.; Occurrence; Specimen

Datos externos

Los datos del recurso también están disponibles en otros formatos

Estudios bióticos: Plantas, edafofauna epígea, anfibios y aves de los Complejos de Páramos de Sonsón y Urraohttp://i2d.humboldt.org.co/ceiba/resource.do?r=rrbb_urrao-sonson_faunaflora_2015 UTF-8 .txt

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¿Quién creó el recurso?:

Fernando Alzate Alzate
Profesor asociado
Universidad de Antioquia Calle 67 Número 53 - 108 N/A Medellín Antioquia CO (4) 219 56 05
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Investigadora- Unidad Coordinadora Páramos-Fondo Adaptación
Instituto Alexander Von Humboldt Calle 67 Número 53 - 108 N/A Bogotá Bogotá, D.C. CO (571) 3202767 Ext 1262
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Herber Sarrazola
Biologo
Universidad de Antioquia Calle 67 Número 53 - 108 N/A Medellín Antioquia CO (4) 219 56 05
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¿Quién más está asociado con el recurso?:

Usuario
Herber Sarrazola
Biologo
Universidad de Antioquia Calle 67 Número 53 - 108 N/A Medellín Antioquia CO (4) 219 56 05
http://www.udea.edu.co
Autor
Fernando Alzate-Guarín
Coordinador del proyecto e investigador de Flora
Universidad de Antioquia calle 67 No. 53 - 108 N/A Medellín Antioquia CO (4)2195614
http://www.udea.edu.co
Autor
Juan Manuel Daza
Investigador Anfibios
Universidad de Antioquia calle 67 No. 53 - 108 N/A Medellín Antioquia CO (4)2195629
http://www.herpetologicodeantioquia.org
Autor
Marta Isabel Wolff
Investigador Edafofauna epígea
Universidad de Antioquia calle 67 No. 53 - 108 N/A Medellín Antioquia CO (4)2195619
http://www.udea.edu.co
Autor
Juan Luis Parra
Investigador Aves
Universidad de Antioquia calle 67 No. 53 - 108, Of. 7-218 N/A Medellín Antioquia CO (4)2195605
https://sites.google.com/site/juanluisparravergara/
Custodio de los Datos
Infraestructura Institucional de Datos
Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander Von Humboldt Calle 28A No. 15-09 Bogotá, D.C. Bogotá, D.C. 3202767
http://www.humboldt.org.co

Cobertura Geográfica

El área georeferenciada aquí para Sonsón está comprendida por cuatro sitios muestreados en el departamento de Antioquia (cerros: Las Palomas, La Vieja, Alto de Chaverras, Norí) y uno en el departamento de caldas (Valle Alto). Para el caso de Urrao se incluyeron los páramos Pená y La Horqueta (municipio de Abriaquí), El Junco (municipio de Caicedo), El Sol (municipio de Urrao) y Cerro Plateado (municipio de Salgar).

Coordenadas límite Latitud Mínima Longitud Mínima [5.343, -76.132], Latitud Máxima Longitud Máxima [6.569, -75.232]

Cobertura Taxonómica

Los datos corresponden a 406 especies, dos subespecies y 31 generos de plantas registradas en los Complejos de Páramos de Sonsón y Urrao.

Familia  Asteraceae
Género  Blakea,  Bromus,  Buddleja,  Burmeistera,  Calamagrostis,  Clusia,  Columnea,  Cortaderia,  Cyathea,  Elaphoglossum,  Espeletia,  Eugenia,  Freziera,  Geissanthus,  Gordonia,  Graffenrieda,  Ilex,  Killipia,  Miconia,  Myrcianthes,  Ocotea,  Oreopanax,  Persea,  Piper,  Prunus,  Pitcairnia,  Puya,  Schefflera,  Solanum,  Terpsichore,  Vaccinium
Especie  Acronia scabrilinguis (Lindl.) Luer,  Aegiphila novogranatensis Moldenke,  Aetanthus dichotomus  (Ruiz & Pav.) Kuijt,  Ageratina glyptophlebia (B.L. Rob.) R.M. King & H. Rob.,  Ageratina popayanensis (Hieron.) R.M. King & H. Rob.,  Ageratina tinifolia R.M. King & H. Rob.,  Aiouea dubia (Kunth) Mez,  Anthurium bogotense Schott,  Anthurium oxybelium  Schott,  Anthurium salgarense Croat.,  Aragoa occidentalis Pennell,  Arcytophyllum   muticum (Wedd.) Standl.,  Arcytophyllum   nitidum (Kunth) Schltdl.,  Axinaea cf macrophylla (Naudin) Triana,  Axinaea cf merianiae (DC.) Triana,  Axinaea cf pennellii Gleason,  Axinaea fallax Gleason,  Axinaea macrophylla (Naudin) Triana,  Baccharis antioquensis Killip & Cuatrec.,  Baccharis brachylaenoides DC.,  Baccharis caldasiana Cuatrec.,  Baccharis prunifolia Kunth,  Baccharis revoluta Kunth,  Baccharis tricuneata (L. f.) Pers.,  Badilloa sonsonensis R.M. King & H. Rob.,  Bartsia laniflora Benth.,  Bartsia santolinifolia (Kunth) Benth.,  Begonia antioquensis (A. DC.) Warb.,  Bejaria aestuans Mutis ex L.,  Bejaria resinosa Mutis ex L. f.,  Berberis cf verticillata Turcz.,  Berberis psilipoda Turcz.,  Berberis verticillata Turcz.,  Besleria reticulata Fritsch,  Billia rosea (Planch. & Linden) C. Ulloa & P. Jørg.,  Blechnum auratum subsp. auratum (Fée) R.M. Tryon & Stolze,  Blechnum auratum subsp. columbiense (Hieron.) R.M. Tryon & Stolze,  Blechnum lechleri Mett.,  Blechnum loxense (Kunth) Hook. ex Salomon,  Blechnum stipitellatum  (Sodiro) C. Chr.,  Blechnum werckleanum  (Christ) C. Chr.,  Blechnum werffii  R.C. Moran,  Bomarea angustipetala Baker,  Bomarea lehmannii Baker,  Bomarea linifolia (Kunth) Baker,  Bomarea setacea (Ruiz & Pav.) Herb.,  Brunellia aff. goudotii  Tul.,  Brunellia boqueronensis Cuatrec.,  Brunellia goudotii  Tul.,  Bulbostylis juncoides  (Vahl) Kük. ex Osten,  Burmeistera montipomum E. Wimm.,  Calamagrostis cf effusa (Kunth) Steud.,  Calamagrostis effusa (Kunth) Steud.,  Calamagrostis planifolia (Kunth) Trin. ex Steud.,  Carex cf. jamesonii Boott,  Castilleja fissifolia L. f.,  Castilleja integrifolia L. f.,  Cavendishia aff guatapeensis Mansf.,  Cavendishia aff subamplexicaulis A.C. Sm.,  Cavendishia bracteata (Ruiz & Pav. ex J. St.-Hil.) Hoerold,  Cavendishia grossa Luteyn,  Cavendishia guatapeensis Mansf.,  Cavendishia killipii A.C. Sm.,  Cavendishia macrocephala A.C. Sm.,  Cavendishia pubescens  (Kunth) Hemsl.,  Cavendishia tarapotana (Meisn.) Benth. & Hook. f.,  Centropogon aff leucophyllus Gleason,  Centropogon glaucotomentosus E. Wimm.,  Ceroxylon quindiuense  (H. Karst.) H. Wendl.,  Cestrum ochraceum Francey,  Chusquea aperta L.G. Clark,  Chusquea latifolia  L.G. Clark,  Chusquea londoniae L.G. Clark,  Chusquea scandens Kunth,  Chusquea tessellata  Munro,  Cinchona pubescens Vahl,  Clethra fagifolia Kunth,  Clethra ovalifolia Turcz.,  Clethra revoluta (Ruiz & Pav.) Spreng.,  Clethra rugosa Steyerm.,  Clusia aff callejasii Pipoly,  Clusia callejasii Pipoly,  Clusia cf stenophyla Standl.,  Clusia chusquea Ewan,  Clusia cuneifolia Cuatrec.,  Clusia ducu Benth.,  Clusia elliptica Kunth,  Clusia thurifera Planch. & Triana,  Columnea acuminata Benth.,  Columnea aff acuminata Benth.,  Cordia acuta Pittier.,  Cortaderia cf nitida (Kunth) Pilg.,  Cortaderia hapalotricha  (Pilg.) Conert,  Cortaderia nitida (Kunth) Pilg.,  Critoniopsis bogotana (Cuatrec.) H. Rob.,  Critoniopsis mucida (Cuatrec.) H. Rob.,  Critoniopsis ursicola (Cuatrec.) H. Rob.,  Culcita coniifolia (Hook.) Maxon,  Cyathea andina (H. Karst.) Domin,  Cyathea caracasana (Klotzsch) Domin,  Cyathea delgadii Sternb.,  Cyathea lechleri Mett.,  Cyathea meridensis H. Karst.,  Cyathea pallescens (Sodiro) Domin,  Cyathea pauciflora (Kuhn) Lellinger,  Cyathea rufa (Fée) Lellinger,  Cyathea suprastrigosa (Christ) Maxon,  Cybianthus humilis  (Mez) G. Agostini,  Cybianthus laurifolius  (Mez) G. Agostini,  Cybianthus magnus (Mez) Pipoly,  Cybianthus marginatus (Benth.) Pipoly,  Cybianthus pastensis  (Mez) G. Agostini,  Cyrtochilum ramosissimum  (Lindl.) Dalström,  Dendrophthora densifolia  Kuijt,  Dendrophthora virgata  (Trel. ex J.F. Macbr.) Kuijt,  Desfontainia steyermarkii Moldenke,  Diplostephium alveolatum Cuatrec.,  Diplostephium antioquense Cuatrec.,  Diplostephium bicolor S.F. Blake,  Diplostephium cinerascens Cuatrec.,  Diplostephium floribundum (Benth.) Wedd.,  Diplostephium frontinense Cuatrec.,  Diplostephium rosmarinifolius (Benth.) Wedd.,  Diplostephium schultzii Wedd.,  Disterigma acuminatum (Kunth) Nied.,  Disterigma alaternoides (Kunth) Nied.,  Disterigma empetrifolium (Kunth) Drude,  Disterigma microphyllum (G. Don) Luteyn,  Drimys granadensis L. f.,  Drymonia cf crassa C.V. Morton,  Elaeagia karstenii Standl,  Elaphoglossum albescens (Sodiro) Christ,  Elaphoglossum cf. affine (M. Martens & Galeotti) T. Moore,  Elaphoglossum engelii (H. Karst.) Christ,  Elaphoglossum eximium (Mett.) Christ,  Elaphoglossum paramicola A. Rojas,  Elleanthus aurantiacus  (Lindl.) Rchb. f.,  Elleanthus maculatus (Lindl.) Rchb. f.,  Epidendrum cf. macrostachyum   Lindl,  Epidendrum chioneum  Lindl.,  Epidendrum frutex  Rchb. f.,  Epidendrum secundum Jacq.,  Eriosorus flexuosus (Kunth) Copel.,  Escallonia aff. myrtilloides   L. f.,  Escallonia paniculata  (Ruiz & Pav.) Roem. & Schult.,  Espeletia frontinoensis Cuatrec.,  Espeletia occidentalis A.C. Sm.,  Espeletia praefrontina Cuatrec.,  Eugenia byssacea McVaugh,  Faramea flavicans (Humb. & Bonpl. ex Roem. & Schult.) Standl.,  Freziera aff. candicans Tul.,  Freziera sessiliflora  A.H. Gentry,  Freziera verrucosa  (Hieron.) Kobuski,  Gaiadendron punctatum  (Ruiz & Pav.) G. Don,  Galium hypocarpium (L.) Endl. ex Griseb.,  Gaultheria aff amoena A.C. Sm.,  Gaultheria anastomosans (L. f.) Kunth,  Gaultheria erecta Vent.,  Gaultheria glomerata (Cav.) Sleumer,  Gaultheria oreogena A.C. Sm.,  Geissanthus andinus   Mez,  Geissanthus occidentalis  Cuatrec.,  Geonoma undata Klotzsch,  Geonoma orbignyana Mart.,  Geranium lainzii  Aedo.,  Gnaphalium paramorum S.F. Blake,  Gomphichis caucana  Schltr.,  Gomphichis traceyae  Rolfe,  Gordonia fruticosa  (Schrad.) H. Keng,  Graffenrieda emarginata (Ruiz & Pav.) Triana,  Greigia danielii L.B. Sm.,  Greigia vulcanica André,  Guzmania confinis L.B. Sm.,  Guzmania coriostachya (Griseb.) Mez,  Guzmania danielii L.B. Sm.,  Guzmania nidularioides L.B. Sm. & Read,  Guzmania squarrosa (Mez & Sodiro) L.B. Sm. & Pittendr.,  Gynoxys lehmannii Hieron.,  Gynoxys tolimensis Cuatrec.,  Halenia foliosa Gilg,  Hedyosmum cumbalense   H. Karst.,  Hedyosmum goudotianum   Solms,  Hedyosmum translucidum  Cuatrec.,  Hesperomeles ferruginea (Pers.) Benth.,  Hesperomeles goudotiana (Decne.) Killip,  Hesperomeles obtusifolia (Pers.) Lindl.,  Hieracium adenocephalum (Sch. Bip.) Arv.-Touv.,  Hieracium avilae Kunth,  Hieronyma scabrida (Tul.) Müll. Arg.,  Holcus lanatus L.,  Hymenophyllum cf. polyanthos (Sw.) Sw.,  Hymenophyllum lindenii Hook.,  Hypericum costaricense N. Robson,  Hypericum jaramilloi N. Robson,  Hypericum juniperinum Kunth,  Ilex aff. pernervata Cuatrec,  Ilex pernervata Cuatrec,  Ilex aff. colombiana Cuatrec,  Ilex aff. laurina Kunth,  Ilex aff. obtusata Triana & Planch.,  Ilex colombiana Cuatrec,  Ilex laurina Kunth,  Isidrogalvia sessilifolia (Hook.) Cruden,  Jamesonia imbricata (Sw.) Hook. & Grev.,  Jamesonia verticalis Kunze,  Juncus echinocephalus  Balslev,  Jungia coartata Hieron.,  Jungia ferruginea L. f.,  Lachemilla hispidula (L.M. Perry) Rothm.,  Ladenbergia macrocarpa (Vahl) Klotzsch,  Lophosoria quadripinnata (J.F. Gmel.) C. Chr.,  Loricaria complanata (Sch. Bip.) Wedd.,  Lycopodiella glaucescens  (C. Presl) B. Øllg.,  Lycopodium clavatum L.,  Lycopodium jussiaei Desv. ex Poir.,  Macleania aff rupestris (Kunth) A.C. Sm.,  Macleania rupestris (Kunth) A.C. Sm.,  Macrocarpaea aff callejasii J.R. Grant,  Macrocarpaea aff harlingii J.S. Pringle,  Macrocarpaea ovalis (Ruiz & Pav.) Ewan,  Manettia recurva Sprague,  Maxillaria cf. embreei  Dodson,  Maxillaria embreei  Dodson,  Maytenus aff jamesonii Briq.,  Maytenus aff novograntensis cuatrec.,  Maytenus novograntensis Cuatrec.,  Maytenus verticillata (Ruiz & Pav.) DC.,  Meliosma glossophylla Cuatrec.,  Melpomene flabelliformis (Poir.) A.R. Sm. & R.C. Moran,  Melpomene moniliformis (Lag. ex Sw.) A.R. Sm. & R.C. Moran,  Meriania acostae Wurdack,  Meriania aff mutissi (Bonpl.) Humberto Mend. & Fern. Alonso,  Meriania brachycera (Naudin) Humberto Mend. & Fern. Alonso,  Meriania heptamera Lozano & Alvear,  Meriania mutisii (Bonpl.) Humberto Mend. & Fern. Alonso,  Miconia cf. ligustrina (Sm.) Triana,  Miconia cf. resima Naudin,  Miconia cladonia Gleason,  Miconia ligustrina (Sm.) Triana,  Miconia puracensis  Wurdack,  Miconia tinifolia Naudin,  Miconia wurdackii L. Uribe,  Miconia asperrima Triana,  Miconia cf. resima Naudin,  Miconia cf. velutina Triana,  Miconia chlorocarpa Cogn,  Miconia jahnii Pittier,  Miconia multiplinervia Cogn,  Miconia mutisiana Markgr.,  Miconia psychrophila Naudin,  Miconia resima Naudin,  Miconia rhodantha Wurdack,  Miconia salicifolia (Bonpl. ex Naudin) Naudin,  Miconia sandemanii Wurdack,  Miconia theizans (Bonpl.) Cogn.,  Miconia turgida Gleason,  Mikania aschersonii (Klatt) Cuatrec.,  Mikania cordifolia (L. f.) Willd.,  Mikania jamesonii B.L. Rob.,  Monnina aestuans  (L. f.) DC.,  Monnina solandraefolia  Triana & Planch.,  Monnina aff. fastigiata  (Bonpl.) DC.,  Monnina aff. reticulata  B. Eriksen,  Monnina fastigiata  (Bonpl.) DC.,  Monnina myrtilloides  (Bonpl.) DC.,  Monochaetum strigosum Cogn.,  Morella parvifolia  (Benth.) Parra-O.,  Morella pubescens  (Humb. & Bonpl. ex Willd.) Wilbur,  Munnozia jussieui (Cass.) H. Rob. & Brettell,  Myrcianthes rhopaloides (Kunth) McVaugh,  Myrsine andina  (Mez) Pipoly,  Myrsine coriacea  (Sw.) R. Br. ex Roem. & Schult.,  Myrsine dependens  (Ruiz & Pav.) Spreng.,  Myrteola nummularia (Poir.) O. Berg,  Nertera granadensis (Mutis ex L. f.) Druce,  Neurolepis acuminatissima (Munro) Pilg.,  Neurolepis aperta (Munro) Pilg.,  Niphogeton glaucescens  (Kunth) J.F. Macbr.,  Niphogeton killipiana  Mathias & Constance,  Niphogeton ternata  (Willd. ex Schltr.) Mathias & Constance,  Ocotea aff javitensis (Kunth) Pittier,  Ocotea cf sericea Kunth,  Ocotea macropoda (Kunth) Mez,  Ocotea sericea Kunth,  Ocotea smithiana O.C. Schmidt,  Oreobolus goeppingeri  Suess.,  Oreopanax aff. argentatus (Kunth) Decne. & Planch.,  Oreopanax aff. discolor (Kunth) Decne. & Planch.,  Oreopanax aff. trianae Decne. & Planch. ex Harms,  Oreopanax incisus (Willd. ex Schult.) Decne. & Planch.,  Oritrophium aff peruvianum (Lam.) Cuatrec.,  Oritrophium peruvianum (Lam.) Cuatrec.,  Oxalis medicaginea Kunth,  Paepalanthus ensifolius (Kunth) Kunth,  Paepalanthus meridensis Klotzsch ex Körn.,  Palicourea amethystina (Ruiz & Pav.) DC.,  Palicourea   anceps Standl.,  Palicourea angustifolia Kunth.,  Palicourea apicata Kunth,  Palicourea aschersonianoides (Wernham) Steyerm.,  Palicourea garciae Standl.,  Palicourea zarucchii C.M. Taylor,  Panopsis yolombo (Posada-Ar.) Killip,  Pentacalia aff vaccinioides (Kunth) Cuatrec.,  Pentacalia andicola (Turcz.) Cuatrec.,  Pentacalia trianae (Klatt) Cuatrec.,  Pentacalia vaccinioides (Kunth) Cuatrec.,  Pernettya prostrata (Cav.) DC.,  Persea aff ferruginea Kunth,  Persea aff mutisii Kunth,  Persea ferruginea Kunth,  Persea mutisii Kunth,  Phlegmariurus brevifolia  (Grev. & Hook.) B. Øllg.,  Phlegmariurus eversus  (Poir.) B. Øllg.,  Phlegmariurus  brongniartii  (Spring) B. Øllg.,  Phlegmariurus ocananus  (Herter) B. Øllg.,  Phlegmariurus  eversus  (Poir.) B. Øllg.,  Piper montanum C. DC.,  Pleurothallis secunda  Poepp. & Endl.,  Posoqueria   coriacea M. Martens & Galeotti,  Prunus antioquensis Pérez Zab.,  Prunus falcata Cuatrec.,  Psammisia montana Luteyn,  Psidium aff. guianense Pers.,  Psidium guineense Sw.,  Psidium pedicellatum McVaugh,  Pterichis galeata  Lindl.,  Puya cryptantha Cuatrec.,  Puya trianae Baker,  Quercus humboldtii Bonpl.,  Racinaea michelii (Mez) M.A. Spencer & L.B. Sm.,  Racinaea riocreuxii (André) M.A. Spencer & L.B. Sm.,  Racinaea spiculosa (Griseb.) M.A. Spencer & L.B. Sm.,  Rhamnus goudotiana Triana & Planch.,  Rhodostemonodaphne laxa (Meisn.) Rohwer,  Rhynchospora cf. locuples  C.B. Clarke,  Rhynchospora ruiziana  Boeckeler,  Rhynchospora schiedeana Kunth,  Ruagea hirsuta (C. DC.) Harms,  Rubus aff nubigenus Kunth,  Rubus bogotensis Kunth,  Rubus compactus Benth.,  Rubus robustus C. Presl,  Rumex acetosella L.,  Sapium stylare  Müll. Arg.,  Saracha quitensis (Hook.) Miers,  Saurauia stapfiana Buscal.,  Saurauia ursina Triana & Planch.,  Schefflera bogotensis Cuatrec.,  Schefflera quinduensis (Kunth) Harms.,  Schefflera ramosissima Cuatrec.,  Schefflera trianae (Planch. & Linden ex Marchal) Harms,  Senecio formosanus Kitam.,  Serpocaulon eleutherophlebium  (Fée) A.R. Sm.,  Serpocaulon nanegalense  (Sodiro) A.R. Sm.,  Sessea corymbiflora Goudot ex R. Taylor & R. Phillips,  Sisyrinchium convolutum Nocca,  Sisyrinchium palmifolium L.,  Sisyrinchium trinerve Baker,  Smilax domingensis Willd.,  Sphaeradenia laucheana  (Sander ex Mast.) Harling,  Stelis alba Kunth.,  Sticherus rubiginosus (Mett.) Nakai,  Symbolanthus gaultherioides Ewan,  Symplocos flosfragrans  Chaparro,  Symplocos mucronata  Bonpl.,  Symplocos quitensis  Brand,  Symplocos rhomboidea   B. Ståhl,  Symplocos rigidissima  Brand,  Ternstroemia macrocarpa  Triana & Planch.,  Ternstroemia meridionalis  Mutis ex L. f.,  Thelypteris retrorsa  (Sodiro) A.R. Sm.,  Themistoclesia aff mucronata (Benth.) Sleumer,  Themistoclesia epiphytica A.C. Sm.,  Themistoclesia pennellii (A.C. Sm.) Sleumer,  Themistoclesia rostrata A.C. Sm.,  Themistoclesia vegasana A.C. Sm.,  Thibaudia floribunda Kunth,  Tibouchina grossa (L. f.) Cogn.,  Tibouchina lepidota (Bonpl.) Baill.,  Tripodanthus belmirensis  F.J. Roldán & Kuijt,  Turpinia occidentalis  (Sw.) G. Don,  Ugni myricoides (Kunth) O. Berg,  Uncinia subsacculata  G.A. Wheeler & Goetgh.,  Vaccinium aff corymbodendron Ruiz & Pav. ex Dunal,  Vaccinium corymbodendron Ruiz & Pav. ex Dunal,  Vaccinium floribundum Kunth.,  Valeriana aff laurifolia Kunth,  Valeriana bracteata Benth.,  Valeriana stenophylla Killip,  Vallea stipularis L. f.,  Viburnum antioquiense Killip & A.C. Sm.,  Viburnum pichinchense Benth.,  Viburnum tinoides L. f.,  Viburnum undulatum (Oerst.) Killip & A.C. Sm.,  Viola stipularis Sw.,  Vismia aff. baccifera (L.) Triana & Planch.,  Vismia baccifera (L.) Triana & Planch.,  Vismia laevis Triana & Planch.,  Weinmannia aff. rollottii Killip,  Weinmannia elliptica Kunth,  Weinmannia fagaroides Kunth,  Weinmannia multijuga Killip & A.C. Sm.,  Weinmannia pubescens Kunth,  Weinmannia rollottii Killip,  Xyris columbiana Malme,  Xyris subulata Ruiz & Pav.

Se registraron 141 especies de aves, distribuidas en 14 órdenes y 33 familias. Todos los registros se identificaron hasta especie siguiendo la taxonomía propuesta por Remsen et al. 2014. Entre los registros, se resaltan los de Scytalopus canus por ser una especie endémica y en peligro de extinción y Odontophorus hyperythrus, especie endémica y Casi Amenazada.

Especie  Acropternis orthonyx,  Adelomyia melanogenys,  Aglaeactis cupripennis,  Aglaiocercus kingi,  Amazona mercenarius,  Ampelion rubrocristatus,  Andigena nigrirostris,  Anisognathus igniventris,  Anisognathus lacrymosus,  Arremon assimilis,  Arremon brunneinucha,  Atlapetes latinuchus,  Atlapetes pallidinucha,  Atlapetes schistaceus,  Boissoneaua flavescens,  Buteo albigula,  Buteo brachyurus,  Buteo platypterus,  Buthraupis montana,  Cacicus chrysonotus,  Caracara cheriway,  Catamblyrhynchus diadema,  Catamenia homochroa,  Catamenia inornata,  Cathartes aura,  Catharus fuscater,  Catharus ustulatus,  Chalcostigma herrani,  Chamaeza mollissima,  Chlorornis riefferii,  Cinnycerthia olivascens,  Cinnycerthia unirufa,  Cistothorus platensis,  Cnemathraupis eximia,  Cnemoscopus rubrirostris,  Coeligena lutetiae,  Coeligena orina,  Coeligena torquata,  Colaptes rivolii,  Colaptes rubiginosus,  Colibri coruscans,  Colibri thalassinus,  Conirostrum albifrons,  Conirostrum sitticolor,  Coragyps atratus,  Cyanolyca armillata,  Cyclarhis nigrirostris,  Cyphorhinus thoracicus,  Dendrocincla tyrannina,  Diglossa albilatera,  Diglossa brunneiventris,  Diglossa caerulescens,  Diglossa cyanea,  Diglossa gloriosissima,  Diglossa humeralis,  Diglossa lafresnayii,  Doryfera ludovicae,  Dubusia taeniata,  Elaenia frantzii,  Ensifera ensifera,  Eriocnemis derbyi,  Eriocnemis mosquera,  Eriocnemis vestita,  Gallinago nobilis,  Geranoaetus polyosoma,  Glaucidium jardinii,  Grallaria nuchalis,  Grallaria ruficapilla,  Grallaria rufula,  Grallaricula nana,  Hapalopsittaca amazonina,  Haplophaedia aureliae,  Heliangelus exortis,  Hellmayrea gularis,  Hemispingus atropileus,  Hemispingus verticalis,  Hemitriccus granadensis,  Henicorhina leucophrys,  Iridosornis porphyrocephalus,  Iridosornis rufivertex,  Lafresnaya lafresnayi,  Margarornis squamiger,  Mecocerculus leucophrys,  Mecocerculus stictopterus,  Metallura tyrianthina,  Metallura williami,  Mionectes striaticollis,  Myadestes ralloides,  Myioborus ornatus,  Myiotheretes fumigatus,  Myiotheretes striaticollis,  Myiothlypis coronata,  Myiothlypis luteoviridis,  Myiothlypis nigrocristata,  Myornis senilis,  Nothocercus julius,  Nyctidromus albicollis,  Ochthoeca diadema,  Ochthoeca frontalis,  Ochthoeca fumicolor,  Ochthoeca rufipectoralis,  Odontophorus hyperythrus,  Orochelidon flavipes,  Orochelidon murina,  Pachyramphus versicolor,  Patagioenas fasciata,  Penelope montagnii,  Phyllomyias nigrocapillus,  Phyllomyias uropygialis (cf),  Picoides fumigatus,  Pipreola arcuata,  Pipreola riefferii,  Poecilotriccus ruficeps,  Premnoplex brunnescens,  Pseudocolaptes boissonneautii,  Pseudotriccus ruficeps,  Pterophanes cyanopterus,  Pygochelidon cyanoleuca,  Pyrrhomyias cinnamomeus,  Ramphomicron microrhynchum,  Scytalopus canus,  Scytalopus latrans,  Scytalopus spillmanni,  Sericossypha albocristata,  Sporagra spinescens,  Streptoprocne rutila,  Streptoprocne zonaris,  Synallaxis azarae,  Synallaxis unirufa,  Systellura longirostris,  Tangara vassorii,  Thripadectes holostictus,  Troglodytes aedon,  Troglodytes solstitialis,  Trogon personatus,  Turdus fuscater,  Turdus serranus,  Tyrannus tyrannus,  Vireo leucophrys,  Xenops rutilans,  Zonotrichia capensis

Registros de Edafofauna Para el complejo Sonson. Se capturaron 2.526 individuos y se reportaron 233 especies/morfo-especies, pertenecientes a siete familias y cuatro ordenes (Coleoptera, Dictyoptera, Diptera e Hymenoptera) de insectos. Solo el 21% de las especies/msp reportadas en este trabajo se conoce su identidad taxonómica a nivel genérico o especifico.

Familia  Staphylinidae,  Blaberidae,  Blattidae,  Ectobiidae,  Phoridae,  Sphaeroceridae,  Formicidae
Género  Aleodorus (Staphylinidae),  Anotylus (Staphylinidae),  Aptilotus (Sphaeroceridae),  Arthmius (Staphylinidae),  Atheta (Staphylinidae),  Fustiger (Staphylinidae),  Hamotus (Staphylinidae),  Hoplandria (Staphylinidae),  Megalopinus (Staphylinidae),  Myrmecocephalus (Staphylinidae),  Paedorus (Staphylinidae),  Palaminus (Staphylinidae),  Parademosoma (Staphylinidae),  Phloeopora (Staphylinidae),  Platydracus (Staphylinidae),  Plectoptera (Ectobiidae),  Rhexinia (Staphylinidae),  Silusina (Staphylinidae),  Eurycotis (Blattidae),  Pelmatosilpha (Blattidae),  Anaplecta (Ectobiidae),  Chorisoneura (Ectobiidae),  Conicera (Phoridae),  Abaristophora (Phoridae),  Megaselia (Phoridae),  Metopina (Phoridae),  Camponotus (Formicidae),  Crematogaster (Formicidae),  Euphyllodromia (Ectobiidae),  Myrmelachista (Formicidae),  Pheidole (Formicidae),  Phloeonomus (Staphylinidae)
Especie  Strumigenys gundlachi (Formicidae),  Labidus praedator (Formicidae),  Labidus spininodis (Formicidae),  Pachycondyla carbonaria (Formicidae)

Registros de herpetofauna correspondientes a los complejos Urrao y Sonson

Género  Pristimantis
Especie  Anolis heterodermus,  Bolitoglossa hypacra,  Bolitoglossa vallecula,  Centrolene buckleyi,  Niceforonia adenobrachia,  Osornophryne percrassa,  Pristimantis aff. dorsopictus,  Pristimantis aff. scoloblepharus,  Pristimantis aff. simoterus,  Pristimantis aff. tribulosus,  Pristimantis aff. uranobates,  Pristimantis cf. parectatus,  Pristimantis cf. scoloblepharus,  Pristimantis dorsopictus,  Pristimantis parectatus,  Pristimantis permixtus,  Pristimantis satagius,  Pristimantis scoloblepharus,  Pristimantis simoterus,  Pristimantis tribulosus,  Pristimantis uranobates,  Rhinella ruizi
Forma  Pristimantis sp. "camuflado",  Pristimantis sp. "dorado",  Pristimantis sp. "pecoso",  Pristimantis sp. "verde"

Cobertura Temporal

Fecha Inicial / Fecha Final 2014-03-15 / 2014-09-09

Datos del Proyecto

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Título Fondo Adaptación Insumos para la Delimitación de Ecosistemas Estratégicos: Páramos y Humedales
Fuentes de Financiación CONVENIO DE COOPERACIÓN No. 13-13-014-347CE ENTRE EL INSTITUTO DE INVESTIGACIÓN DE RECURSOS BIOLÓGICOS “ALEXANDER VON HUMBOLDT” Y LA UNIVERSIDAD DE ANTIOQUIA.
Descripción del Área de Estudio El complejo de páramos Sonsón se encuentra ubicado en las inmediaciones del municipio del mismo nombre en el departamento de Antioquia y los municipios de Salamina, Pensilvania y Marulanda del departamento de Caldas comprendiendo un área total de 8707 hectáreas a escala 1:100.000 y fue incluido en el atlas de páramos de Colombia en el 2013 (IAvH del 2013). El complejo de páramos Frontino-Urrao hace parte del distrito Frontino-Tatamá, ubicado hacia el norte de la cordillera Occidental en el departamento de Antioquia, conformado por dos conglomerados de páramo que poseen una extensión total de 4.030 hectáreas (ha), alcanzando 3.930 m de altitud. En el presente trabajo se muestrearon cinco sitios pertenecientes al complejo, cuatro de los cuales se ubican en el departamento de Antioquia y uno en el departamento de Caldas. Los sitios muestreados corresponden a los nombres de La Vieja, Las Palomas, el Alto de Chaverras, Norí y Valle Alto. El complejo cuenta con además con los cerros Perrillo y Sirgüa Arriba a los cuales no fue posible acceder debido a la falta de garantías en cuanto seguridad y orden publico; estos sitios tienen historial de presencia de grupos al margen de la ley, además de reportes que indican la posibilidad de existencia de minas antipersonales. Dos de los sitios incluidos en los muestreos (La Vieja y Norí) no hacen parte de la delimitación inicial propuesta por el IAvH en 2013 para el complejo del páramo de Sonsón.
Descripción del Diseño Los páramos en Colombia de acuerdo a la resolución 0937 de 2011 del Ministerio de Medio Ambiente y Desarrollo Sostenible están representados en una extensión de 1’932.000 hectáreas, las cuales se dividen en 34 complejos de páramo. La propuesta planteada en el año 2013 por el IAvH para establecer y definir las áreas de paramo en Colombia, basado en cartografía de 1:100.000, añade dos complejos más y cuantifica el área de páramos de Colombia en 2’906.137 hectáreas. Uno de los nuevos complejos que ha sido propuesto y reconocido por el Atlas de páramos de 2013 es el de Sonsón, para el cual se plantea un área de 8.707 hectáreas. Varias definiciones se han propuesto para los páramos, pero su conceptualización resulta heterogénea y en ocasiones contradictoria. En el establecimiento de los límites entre el bosque y el páramo han prevalecido criterios provenientes de aproximaciones biofísicas como el clima, altitud, suelos, biodiversidad y endemismos (Van der Hammen 2006). Cuatrecasas (1958) definió los páramos como áreas elevadas y descubiertas, delimitadas por el bosque alto-andino en el límite inferior y el nivel en el superior. De acuerdo a la clasificación de Cuatrecasas (1958), esta formación vegetal es dividida en: Subpáramo, Páramo y Superpáramo. Monasterio (1980) circunscribe el paramo a las áreas andinas entre 3000 y 4500 msnm. Las condiciones ambientales juegan un papel decisivo en la ocurrencia de este ecosistema, por lo que variables como humedad, vientos y temperatura, inciden en favorecer o desplazar la ocurrencia de este ecosistema. Algunas hipótesis plantean que durante las glaciaciones una parte de los fragmentos montañosos pudieron unirse, debido al descenso del límite bosque-páramo, permitiendo así el intercambio de especies. Otros fragmentos se aislaron temporalmente sin posibilidad de intercambio y así resultaron diferentes grados de aislamiento geográfico en las distintas áreas de páramo del país (Hernández et al, 1992; Van der Hammen, 1997). Se evidencia un patrón ecológico reiterado que consiste en la disminución de la diversidad en ambientes cuyas condiciones ambientales son particularmente severas, como por ejemplo los páramos (Navas, 1999). Dentro del grupo de los vertebrados, los reptiles son el linaje que presenta menor número de especies en este tipo de ambientes, contrario ocurre con las aves, que es el grupo más diverso, seguido de anfibios y mamíferos (Van der Hammen, 1997; Rangel, 2000). En este informe se presentan los resultados obtenidos de los estudios bióticos para los complejo de Páramos de Sonsón, con la finalidad de aportar información para definir la franja de transición páramo-bosque en estos complejos. Este trabajo se realizó en el convenio de cooperación establecido entre el Instituto de Investigación de Recursos Biológicos “Alexander von Humboldt” y la Universidad de Antioquia. Los trabajos de exploración, inventario y análisis fueron desarrollados por docentes e investigadores del Instituto de Biología de la Universidad de Antioquia. En dicho trabajo participaron los grupos de investigación: Grupo de Estudios Botánicos, Grupo Herpetológico de Antioquia, Grupo de Ecología y Evolución de Vertebrados y el Grupo de Entomología Universidad de Antioquia.

Personas asociadas al proyecto:

Curador
Fernando Alzate Guarín

Métodos de Muestreo

Vegetación por parcelas Anfibios por encuentro visual y trampas pitfall Aves por registro visual y redes Edafofauna epígea por busqueda manual y trampas pitfall.

Área de Estudio El complejo de páramos Sonsón se encuentra ubicado en las inmediaciones del municipio del mismo nombre en el departamento de Antioquia y los municipios de Salamina, Pensilvania y Marulanda del departamento de Caldas comprendiendo un área total de 8707 hectáreas a escala 1:100.000. En el presente trabajo se muestrearon cinco sitios pertenecientes al complejo, cuatro de los cuales se ubican en el departamento de Antioquia y uno en el departamento de Caldas. El cerro de Las Palomas se encuentra al oriente de la cabecera municipal y representa la altura más emblemática del municipio de Sonsón, ya que es el referente de páramo para los lugareños. La cobertura vegetal de páramo para este cerro está constituida por cerca de 10 ha que se ubican en la parte más alta, donde se advierte una muy densa y diversa vegetación paramuna, dominada por representantes de las familias Asteraceae, Bromeliaceae y Poaceae. El ascenso al sitio se da por la Vereda San Francisco, desviándose de la carretera que comunica a Sonsón con Nariño. El cerro La Vieja constituye una zona con evidente cobertura de páramo, la cual no fue incluida en polígono definido para el complejo de Sonsón, defina en el 2013 por el IAvH. Ubicado al norte del cerro Las Palomas, ingresando por la vereda Manzanares. La Vieja es una montaña muy escarpada cuya cara occidental se encuentra en buena parte en roca descubierta. La vegetación de páramo para este cerro se encuentra en la ceja superior, conservando algunas poblaciones en los peñascos que están un poco más protegidos de la acción del viento. Llama la atención en este lugar, que solo se detectó una pequeñísima población de Espeletia, la cual se encontraba en una roca de muy difícil acceso. Al norte del cerro de La Vieja se ubica el cerro Norí, en la vereda del mismo nombre del municipio de Sonsón. El área cubierta con vegetación de páramo en este cerro es pequeña ya que está representada solo en la parte superior y plana de la cima. Norí constituye uno de los tres cerros que tradicionalmente para la comunidad local forman en conjunto el páramo de Sonsón. A pesar de lo anterior, este cerro no fue incluido en el complejo por la propuesta de IAvH del año 2013, pero las exploraciones de campo realizadas en Norí mostraron las características bióticas y ambientales propias de páramo, por estas razones se decidió incluir este cerro en los levantamientos de información biológica. En las partes bajas del cerro discurren algunas quebradas, pero la cima carece de fuentes hídricas. Para acceder a este sitio se desvía de la vía que comunica Sonsón con La Unión a la altura del río Tasajo por la vereda Norí. En la vía que comunica los municipios de Sonsón con Nariño se encuentra la vereda Chaverras, en cuyo costado sur y contiguo al cerro de Las Palomas se ubica el Alto de Chaverras, conocido también como el alto de Los Cristos. Este cerro es un área de bosque alto andino de varios estratos y con algunos representantes de vegetación de páramo. El camino de herradura que comunicaba a Medellín con Bogotá, atraviesa este cerro, el cual fue usado durante muchos años para el transporte de mercancías y personas. En la parte norte del departamento de Caldas, en limites de los municipios de Salamina, Marulanda y Pensilvania, se ubica la vereda Valle Alto, la cual posee una zona de tierras altas con características ecológicas de páramo (nivel altitudinal, vientos, composición vegetal, etc.) que se extiende de forma amplia y que favorece la formación de cauces que luego irrigan las tierras bajas. Esta zona a pesar de no contener especies de Espeletia, tiene otras características que la permiten identificar como área de páramo. El acceso a Valle Alto se hace por el corregimiento San Félix, municipio de Salamina, donde se abandona la vía que comunica con Marulanda en cercanías de la vereda El Páramo. El complejo de páramos Frontino-Urrao hace parte del distrito Frontino-Tatamá, ubicado hacia el norte de la cordillera Occidental en el departamento de Antioquia, conformado por dos conglomerados de páramo que poseen una extensión total de 4.030 hectáreas (ha), alcanzando 3.930 m de altitud. Esta zona comprende una serie de páramos muy extensos entre los que se encuentra el páramo de El Sol, un sitio importante de referencia que abarca la mayor extensión de la cobertura de páramo en Antioquia, con cerca de 3.642 ha (Morales et al. 2007), y con paisajes glaciares cónicos de pendientes fuertes y cañones profundos que alternan abruptamente con un sistema de mesetas que albergan valles, depresiones y planicies lacustres (Pinto-Zárate 2009). Algunos de los sitios muestreados forman parte de este páramo, ya que su cercanía geográfica y su conexión por medio de cadenas montañosas así lo evidencia, sin embargo otros sitios explorados como Cerro Plateado y La Horqueta, se encuentra separados del páramo El Sol. Entre los municipios que poseen ecosistema de páramo en este complejo se encuentran Urrao, Caicedo, Abriaquí, Salgar y Betulia en el departamento de Antioquia y El Carmen de Atrato en jurisdicción del Chocó. Algunos de los páramos de este complejo son importantes puntos de referencia para la población ya que constituyen sitios de gran valor turístico y paisajístico.
Control de Calidad Instrumentos para medir y pesar completamente nuevos y calibrados Medición y pesaje por una sola persona para disminuir el porcentaje de error.

Descripción de la metodología paso a paso:

  1. Flora: La selección de los sitios de muestreo se hizo preferencialmente hacia áreas que presentaran características adecuadas para la toma de datos, como un buen estado de conservación, evitando senderos, vías, cañadas y otros factores que pudieran modificar la vegetación, y por el contrario, tratando de favorecer lugares donde existan vacíos de información y en lo posible manteniendo la orientación, a fin de conservar las condiciones boscosas naturales de los sitios. En cada sitio visitado se realizó el montaje de un transecto altitudinal, que tuvo 4 o 5 estaciones de muestreo separadas entre sí altitudinalmente 100 m en lo posible o mínimo 50, y priorizando la zona de transición bosque altoandino-páramo y la cobertura de páramo. En cada estación se realizaron tres replicas separadas a una distancia ideal de 30 metros. Las parcelas o réplicas de bosque altoandino fueron de 100 m2, con 4 m de ancho x 25 m de largo y divididas en 5 subparcelas de 4 m x 5 m. Las parcelas de arbustales y herbazales fueron de 50 m2, con 4 m de ancho x 12,5 m de largo, y divididas en 5 subparcelas de 4 m x 2,5 m. En cada replica se tomó la información del lugar como municipio, vereda, sitio, ubicación geográfica, cobertura, altitud, orientación e inclinación. Además de datos como hábito, Altura total, Altura de la primera ramificación, Diámetro a 30 cm del suelo, Cobertura de copa, estado fenológico y porcentaje de cobertura por subparcela para las hierbas.
  2. Aves: En cada sitio se definieron cinco estaciones de muestreo separadas por un mínimo de 50 metros en elevación, cubriendo zonas de Páramo, Transición Páramo-Bosque altoandino y Bosque altoandino. En cada estación se hicieron puntos de conteo durante 20 minutos haciendo registros visuales y auditivos de especies de aves. Los puntos de conteo fueron recorridos por dos observadores en distintas horas en la mañana durante cinco días consecutivos. Los observadores iniciaban en extremos opuestos alternando los puntos de inicio cada día. De esta manera se realizaban 10 censos para cada punto de conteo en cada páramo. Adicionalmente, se instalaron redes de niebla para captura de aves, en estaciones donde el terreno era adecuado.
  3. Edafofauna: Entre los meses de marzo y julio del 2014 se visitaron cinco áreas de páramo pertenecientes al complejo de páramos de Sonsón entre los municipios de Sonsón (Antioquia) y Pensilvania (Caldas). En cada área visitada se realizó un transecto altitudinal sobre el cual se establecieron entre tres y cuatro estaciones separadas altitudinalmente entre 60 y 100 m. El número de estaciones a instalar y la variación entre sus distancias dependieron del tamaño del área y del gradiente altitudinal hallado en cada área. En total se instalaron 19 estaciones ubicadas entre 2.862 y 3.587 m.s.n.m. Adicionalmente la ubicación de las estaciones estuvo relacionada con los tipos de coberturas vegetales (Páramo, Transición y Bosque alto andino) presentes en al área. En cada estación se realizó por 48 horas la caracterización de la edafofauna. Como el termino edafofauna se abarca todas aquellas formas animales que habitan en el suelo, este estudio se limitó a hexápodos de los órdenes Coleoptera (Staphylinidae), Dictyoptera, Diptera (Phoridae y Sphaeroceridae) e Hymenoptera (Formicidae). El material obtenido fue separado, curado y determinado a nivel de familia, género y especie (cuando fue posible). Aquellas especies en las que no fue posible determinar su identidad a nivel genérico ni específico, fueron nombradas con la palabra “morfo”. Los datos obtenidos fueron tabulados y analizados utilizando Microsoft Excel. Se estimó la abundancia relativa y la riqueza especifica. Adicionalmente se calcularon curvas de acumulación de especies (por estación y para el transecto), curvas de diversidad-dominancia, números de Hill (Numero efectivo de spp), número efectivo de gremios y betadiversidad - Complemetariedad (Bray-Curtis - entre estaciones de un mismo transecto y entre trayectos). De igual manera se procedió en el complejo Urrao, en el cual se realizaron los montajes en los municipios de Caicedo, Urrao, Abriaquí y Salgar.
  4. Herpetofauna: Se efectuaron cinco salidas de campo, una a cada uno de los transectos con un promedio de cuatro días efectivos de campo en cada páramo. El número de participantes por salida fue de cuatro personas. Respecto al número de estaciones, estas fueron seleccionadas con un grado de separación de 100 metros altitudinales entre cada una de ellas, con lo que se obtuvieron cinco estaciones en la mayoría de los transectos muestreados, a excepción de aquellos transectos cuya área de páramo era muy reducida. En todas las estaciones se utilizó un esfuerzo de muestreo de 4-6 horas efectivas por 4 personas por estación. Iniciando los muestreos a las 18:00 horas y finalizando a las 22:00 horas. El muestreo se efectuó bajo la metodología de relevamiento por encuentros visuales (REV), se trabajó cada hora en cada estación, por los cuatro días. Alternando la hora de inicio a diario entre las estaciones, iniciando el día 1 a las 18:00 horas en la estación 1 y finalizando a las 22:00 horas en la estación 5, mientras que el día 2 se iniciaba a las 18:00 horas en la estación 5 y finalizando a las 22:00 horas en la estación 1. Igualmente se alternaban los días siguientes de duración de la salida de campo. Así se garantizaba cubrir las cuatro horas efectivas de muestreo en cada una de las estaciones.

Datos de la Colección

Nombre de la Colección Colecciones Biológicas Instituto Alexander von Humboldt, Colecciones Biológicas Universidad de Antioquia
Identificador de la Colección IAvH, HUA, FMB, MHUA, MUUA
Identificador de la Colección Parental N/A
Métodos de preservación de los ejemplares Otro
Unidades Curatoriales Entre 1 y 804 espécimen de herbario ,  Entre 1 y 45 pieles de aves ,  Entre 1 y 100 Frascos con insectos

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Metadatos Adicionales

Existen documentos asociados que ya fueron incorporados a i2D (Levantamientos y rasgos + tejidos).

Propósito Elaborar los estudios bióticos a escala 1: 25000 de los Complejos de Páramos Frontino - Urrao y Sonsón, localizados en jurisdicción de CORANTIOQUIA, CORNARE y CORPOURABA, para identificar la franja de transición páramo-bosque en los Complejos de Páramos de Frontino - Urrao y Sonsón.
Identificadores Alternativos doi:10.15472/wiu5hg
http://ipt.biodiversidad.co/iavh/resource?r=rrbb_urrao-sonson_faunaflora_2015