OCCURRENCE

Estudios bióticos: Plantas, anfibios, mamíferos, aves y edafofauna epígea (coleópteros y arácnidos), en el complejo de páramo Los Nevados

Последняя версия опубликована Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt 9 февраля 2017 г. Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt
En el complejo de páramos Los Nevados, ubicado en la cordillera central de los Andes Colombianos, en jurisdicción de los departamentos de Caldas, Risaralda y Tolima, en las vertientes oriental y occidental, se llevaron a cabo muestreos para el registro de información en campo de cinco grupos biológicos: plantas, aves, mamíferos, anfibios y edafofauna epigea (coleópteros y arañas). Esto con el fin de aportar información biológica fundamental para la identificación de la franja de transición Páramo-Bosque, como insumo para la delimitación de los páramos en Colombia a través del estudio de la diversidad biológica y su distribución. En un gradiente de elevación entre 3414 y 4026 m, se documentaron 13750 registros de datos con información biológica, 361 para 6 especies de anfibios, 3435 regis... Больше
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Дата публикации:
9 февраля 2017 г.
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CC-BY-NC 4.0

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En el complejo de páramos Los Nevados, ubicado en la cordillera central de los Andes Colombianos, en jurisdicción de los departamentos de Caldas, Risaralda y Tolima, en las vertientes oriental y occidental, se llevaron a cabo muestreos para el registro de información en campo de cinco grupos biológicos: plantas, aves, mamíferos, anfibios y edafofauna epigea (coleópteros y arañas). Esto con el fin de aportar información biológica fundamental para la identificación de la franja de transición Páramo-Bosque, como insumo para la delimitación de los páramos en Colombia a través del estudio de la diversidad biológica y su distribución. En un gradiente de elevación entre 3414 y 4026 m, se documentaron 13750 registros de datos con información biológica, 361 para 6 especies de anfibios, 3435 registros de artrópodos de 22 ordenes y 27 familias, 2356 registros para 100 especies de aves, 177 para 20 especies de mamíferos y 7421 para 326 especies y morfoespecies de plantas.

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Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt (2015). Estudios bióticos: Plantas, edafofauna epígea, anfibios y aves en los complejo de páramo Los Nevados. 13750 registros, aportados por: León, O. (Contacto del recurso), Toro-Marin, Y. (Creador del recurso, Proveedor de metadatos). Versión 2.1. http://doi.org/10.15472/rs81k8

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Ключевые слова

metadatos; levantamietos de informacion; plantas; mamíferos; aves; anfibios; Caldas; Risaralda; Tolima; wcs.; Specimen; Occurrence

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Географический охват

Los datos proceden de la cordillera central, complejo los nevados, municipios de Marulanda al Norte, Anzoátegui al Sur, Anzoátegui y Líbano al Este y Manizales y Villamaría al Oeste.

Ограничивающие координаты Юг Запад [4,623, -75,493], Север Восток [5,25, -75,217]

Таксономический охват

familia Actinidaceae

Species  Saurauia ursina

familia Adoxaceae

Species  Viburnum undulatum

familia Alstroemeriaceae

Species  Bomarea,  Bomarea carderi,  Bomarea hirsuta,  Bomarea linifolia,  Bomarea patinii,  Bomarea pauciflora

familia Apiaceae

Species  Bowlesia,  Eryngium sp.,  Eryngium humboldtii,  Eryngium humile,  Myrrhidendron pennelli

familia Apocynaceae

Species  Cynanchum

familia Aquifoliaceae

Species  Ilex myricoides

familia Araceae

Species  Anthurium oxybelium

familia Araliaceae

Genus  Hydrocotyle,  Oreopanax,  Schefflera
Species  Hydrocotyle humboldtii,  Oreopanax discolor,  Oreopanax glabrifolium,  Oreopanax incisus,  Oreopanax ruizianum,  Oreopanax tolimanus

famiia Aspleniaceae

Genus  Asplenium
Species  Asplenium theciferum,  Asplenium triphyllum

familia Asteraceae

Genus  Achyrocline,  Ageratina,  Asteraceae,  Baccharis,  Conyza,  Diplostephium,  Eupatorium,  Gynoxys,  Hieracium,  Hypochaeris,  Jungia,  Munnozia,  Pentacalia,  Taraxacum,  Verbesina
Species  Achyrocline satureioides,  Aequatorium jamesonii,  Aequatorium polygonoides,  Aequatorium tatamanum,  Ageratina glyptophlebia,  Ageratina tinifolia,  Baccharis buxifolia,  Baccharis caldasiana,  Baccharis genistelloides,  Baccharis latifolia,  Baccharis prunifolia,  Baccharis rupicola,  Baccharis tricuneata,  Baccharis vacciniifolia,  Bidens andicola,  Diplostephium alveolatum,  Diplostephium micradenium,  Diplostephium revolutum,  Diplostephium schultzii,  Diplostephium tolimense,  Diplostephium violaceum,  Espeletia hartwegiana,  Gamochaeta americana,  Gynoxys buxifolia,  Gynoxys lehmannii,  Gynoxys pendula,  Gynoxys tolimensis,  Hieracium avilae,  Hipochaeris radicata,  Mutisia clematis,  Oritrophium peruvianum,  Pentacalia vaccinioides,  Pentacalia andicola,  Pentacalia sylvicola,  Pentacalia vaccinioides,  Senecio formosus,  Senecio repens,  Taraxacum campylodes,  Taraxacum officinale,  Werneria pygmaea,  Xenophyllum crassum

Balanophoraceae

Species  Corynaea sphaerica

familia Begoniaceae

Genus  Begonia
Species  Begonia ferruginea,  Begonia umbellata,  Begonia urticae

familia Berberidaceae

Species  Berberis dumaniana,  Berberis goudotii,  Berberis quindiuensis

familia Blechnaceae

Genus  Blechnum
Species  Blechnum arborescens,  Blechnum cordatum,  Blechnum loxense

familia Brassicaceae

Species  Cardamine flexuosa

familia Bromeliaceae

Genus  Aechmaea,  Bromelia,  Greigia,  Guzmania,  Puya
Species  Greigia columbiana,  Racinaea penlandii,  Tillandsia complanata

familia Brunelliaceae

Species  Brunellia

familia Calceolariaceae 

Species  Calceolaria,  Calceolaria fruticosa,  Calceolaria microbefaria

familia Campanulaceae

Species  Centropogon ferrugineus,  Centropogon hirsutus,  Siphocampylus mirabilis

familia Caryophyllaceae

Genus  Cerastium
Species  Cerastium mollissimum,  Cerastium subspicatum

familia Chloranthaceae

Genus  Hedyosmum
Species  Hedyosmum racemosum

familia Clethraceae

Genus  Clethra

familia Convolvulaceae

Genus  Convolvulaceae

familia Coriariaceae

Genus  Coriaria
Species  Coriaria ruscifolia

familia Cucurbitaceae

Genus  Cucurbitacea

familia Cunoniaceae

Genus  Weinmannia
Species  Weinmannia balbisiana,  Weinmannia mariquitae,  Weinmannia rollottii,  Weinmannia tomentosa

familia Cyatheaceae

Genus  Cyathea

familia Cyperaceae

Genus  Oreobolus
Species  Carex bonplandii,  Rhynchospora caucana,  Swallenochloa tessellata

Dennstaedtiaceae

Species  Histiopteris incisa

famila Dryopteridaceae

Genus  Elaphoglossum
Species  Elaphoglossum engelii,  Elaphoglossum funckii

Elaeocarpaceae

Species  Vallea stipularis

familia Equisetaceae

Genus  Equisetum
Species  Equisetum bogotense

familia Ericaceae

Genus  Gaultheria,  Plutarchia
Species  Cavendishia bracteata,  Disterigma acuminatum,  Disterigma codonanthum,  Disterigma empetrifolium,  Gaultheria erecta,  Gaultheria foliolosa,  Macleania rupestris,  Myrsine dependens,  Pernettya prostrata,  Plutarchia monantha,  Themistoclesia mucronata,  Vaccinium floribundum,  Gaultheria anastomosans

familia Escalloniaceae

Species  Escallonia myrtilloides

Euphorbiaceae

Genus  Euphorbiaceae

Fabaceae

Species  Lupinus microphyllus,  Lupinus alopecuroides

familia Gentianaceae

Species  Gentiana sedifolia

Geraniaceae

Species  Geranium sibbaldioides,  Geranium diffusum

Grossulariaceae

Species  Ribes leptostachyum 

familia Gunneraceae

Species  Gunnera magellanica

familia Hymenophyllaceae

Species  Hymenophyllum elegantulum

familia Hypericaceae

Genus  Hypericum
Species  Hypericum juniperinum,  Hypericum lancifolium,  Hypericum lancioides,  Hypericum laricifolium

Iridaceae

Species  Sisyrinchium convolutum,  Xyris subulata

Isoetaceae

Species  Isoetes colombiana

familia Lamiaceae

Genus  Vitex
Species  Clinopodium brownei,  Satureja nubigena

familia Loranthaceae

Species  Aetanthus nodosus,  Gaiadendron punctatum,  Loranthaceae,  Tristerix longebracteatus

familia Lycopodiaceae

Genus  Huperzia
Species  Huperzia crassa,  Huperzia hohenackeri,  Lycopodiella cernua,  Lycopodium clavatum

Malvaceae

Genus  Acaulimalva

familia Melastomataceae

Species  Axinaea,  Axinaea colombiana,  Brachyotum,  Brachyotum lindenii,  Brachyotum strigosum,  Bucquetia glutinosa,  Melastomataceae,  Miconia,  Miconia,  Miconia bracteolata,  Miconia chionophila,  Miconia chlorocarpa,  Miconia ferruginea,  Miconia guianensis,  Miconia jahnii,  Miconia ligustrina,  Miconia orcheotoma,  Miconia salicifolia,  Miconia tinifolia,  Tibouchina grossa

familia Myrsinaceae

Genus  Ardisia,  Myrsine
Species  Myrsine coriacea,  Myrsine dependens

Nyctaginaceae

Species  Colignonia ovalifolia

familia Onagraceae

Genus  Fuchsia
Species  Fuchsia corollata,  Fuchsia hartwegii,  Fuchsia magellanica,  Fuchsia petiolaris

familia Orchidaceae

Genus  Elleanthus,  Lepanthes,  Masdevallia,  Pleurothallis,  Stelis
Species  Cranichis diphylla,  Cyrtochilum auropurpureum,  Cyrtochilum pardinum,  Elleanthus aurantiacus,  Elleanthus graminifolius,  Epidendrum,  Epidendrum,  Epidendrum megalospathum,  Oncidium cultratum,  Pachyphyllum crystallinum,  Pleurothallis coriacardia,  Telipogon alberti

familia Orobanchaceae

Species  Bartsia santolinifolia,  Castilleja fissifolia,  Clinopodium brownei

familia Oxalidaceae

Species  Oxalis integra

familia Passifloraceae

Species  Passiflora mixta

familia Piperaceae

Genus  Peperomia
Species  Peperomia verticillata

familia Plantaginaceae

Species  Plantago lanceolata,  Plantago linearis,  Plantago rigida

familia Poaceae

Genus  Aegopogon,  Aulonemia,  Cortaderia
Species  Agrostis breviculmis,  Agrostis foliata,  Anthoxanthum odoratum,  Bromus lanatus,  Calamagrostis effusa,  Calamagrostis intermedia,  Chusquea scandens,  Cortaderia columbiana,  Cortaderia nitida,  Holcus lanatus,  Swallenochloa tessellata

familia Polygalaceae

Species  Monnina aestuans,  Monnina involuta,  Monnina revoluta

Polygonaceae

Genus  Polygonum
Species  Rumex acetosella

familia Polypodiaceae

Genus  Serpocaulon
Species  Campyloneurum angustifolium,  Campyloneurum angustipaleatum,  Melpomene assurgens,  Pleopeltis macrocarpa,  Polypodium monosorum

familia Primulaceae

Genus  Geissanthus
Species  Geissanthus serrulatus

familia Pteridaceae

Genus  Eriosorus,  Jamesonia
Species  Jamesonia bogotensis,  Jamesonia goudotii,  Jamesonia pulchra

familia Ranunculaceae

Genus  Ranunculus
Species  Ranunculus peruvianus,  Ranunculus praemorsus

familia Rosaceae

Genus  Acaena,  Aphanes,  Hesperomeles,  Lachemilla,  Prunus,  Rubus
Species  Acaena elongata,  Azorella multifida,  Escallonia myrtilloides,  Hesperomeles ferruginea,  Hesperomeles heterophylla,  Hesperomeles lanuginosa,  Hesperomeles obtusifolium,  Hesperomeles pernettyoides,  Lachemilla aphanoides,  Lachemilla fulvescens,  Lachemilla nivalis,  Lachemilla orbiculata,  Polylepis sericea,  Rubus compactus,  Rubus glaucus,  Rubus guyanensis

familia Rubiaceae

Species  Nertera granadensis,  Galium hypocarpium

familia Santalaceae

Species  Dendrophthora clavata,  Corynaea sphaerica

familia Scrophulariaceae

Species  Bartsia santolinifolia,  Buddleja bullata,  Buddleja incana

familia Smilacaceae

Genus  Smilax

familia Solanaceae

Genus  Cestrum,  Sessea,  Solanum
Species  Saracha quitensis,  Sessea crassivenosa,  Solanum caripense,  Solanum laurifolium

familia Symplocaceae

Genus  Symplocos

familia Tropaeolaceae

Species  Tropaeolum tuberosum

Urticaceae

Genus  Pilea

Winteraceae

Species  Drimys granadensis

familia Woodsiaceae

Species  Cystopteris fragilis

Xyridaceae

Species  Xyris subulata

clase Amphibia, orden Anura, familia bufonidae

Species  Osornophryne percrassa

clase Amphibia, orden Anura, familia Craugastoridae

Species  Pristimantis leptolophus,  Pristimantis peraticus,  Pristimantis racemus,  Pristimantis simoterus,  Pristimantis uranobates

Clase aves, familia Scolopacidae

Species  Gallinago nobilis,  Gallinago jamesoni

Clase aves, familia Emberizidae

Species  Atlapetes pallidinucha

Clase aves, familia Thraupidae

Species  Anisognathus igniventris,  Tangara vassorii

Clase aves, familia Trochilidae

Species  Metallura tyrianthina,  Aglaeactis cupripennis

Clase aves, familia Troglodytidae

Species  Cistothorus platensis

Clase mamiferos, familia Caenolestidae

Species  Caenolestes fuliginosus

Clase mamiferos, familia Cricetidae

Species  Akodon affinis,  Microryzomys,  Microryzomys minutus,  Thomasomys,  Thomasomys aureus,  Thomasomys cinereiventer,  Thomasomys laniger,  Thomasomys niveipes

Clase mamiferos, familia Leporidae

Species  Sylvilagus brasiliensis

Clase mamiferos, familia Phyllostomidae

Genus  Anoura
Species  Anoura geoffroyi,  Sturnira bidens,  Sturnira bidens,  Sturnira erythromos

Clase mamiferos, familia Soricidae

Species  Cryptotis thomasi

Clase mamiferos, familia Vespertilionidae

Genus  Myotis
Species  Eptesicus andinus,  Histiotus montanus,  Lasiurus blossevillii

clase Arachnida, familia Araeae

Family  Amaurobiidae,  Anapidae,  Anyphaenidae,  Araneus,  Caponiidae,  Corinnidae,  Dipluridae,  Gnaphosidae,  Linyphiidae,  Lycosidae,  Lygromma,  Mimetidae,  Ochyrocera,  Ochyroceratidae,  Ocrepeira,  Oonopidae,  Palpimanidae,  Paratropididae,  Philodromidae,  Pholcidae,  Pisauridae,  Pomboa,  Salticidae,  Tetragnathidae,  Theridiidae,  Zodariidae

Clase insecta, orden Coleoptera

Family  Cantharidae,  Carabidae,  Carabidae,  Chrysomelidae,  Chrysomelidae,  Coccinellidae,  Curculionidae,  Dermestidae,  Elateridae,  Erotylidae,  Histeridae,  Latridiidae,  Lycidae,  Lycidae,  Meloidae,  Nitidulidae,  Phengodidae,  Ptiliidae,  Ptilodactylidae,  Pyrochroidae,  Scarabaeidae,  Scirtidae,  Silphidae,  Staphylinidae,  Tenebrionidae

Временной охват

Дата начала / Дата окончания 2014-03-01 / 2014-12-04

Данные проекта

Описание отсутсвует

Название Fondo Adaptación_Insumos para la Delimitación de Ecosistemas Estratégicos: Páramos y Humedales
Финансирование Convenio de Cooperación No. 13-13-014-360CE entre IAvH y WCS
Описание района исследования El estudio se llevó a cabo en bosques andinos y páramos de la cordillera Central, en el complejo de páramos Los Nevados, en los departamentos de Caldas, Risaralda y Tolima, entre los meses de Marzo y julio de 2014.
Описание плана выполнения исследований El objetivo principal consistía en elaborar estudios bióticos en jurisdicción de las corporaciones CARDER, CORPOCALDAS y CORTOLIMA, orientado a aportar información biológica para la identificación de la franja de transición Páramo-Bosque en Colombia, específicamente en el complejo de páramos Los Nevados, a través del estudio de la diversidad y distribución de aves, anfibios, pequeños mamíferos, plantas y edafofauna epigea (arañas y coleópteros). Esta información biológica es un insumo importante para establecer la franja de transición Bosque-Páramo, aporte fundamental para lograr la la delimitación de los páramos en Colombia.

Исполнители проекта:

Content Provider
Yadi Toro Marín

Методы сбора

El registro de los datos biológicos se llevó a cabo siguiendo las propuestas metodológicas de los componentes de vegetación y fauna para los estudios bióticos, para la identificación y delimitación de los complejos de páramos a escala 1:25.000, elaborado por el Instituto Alexander von Humboldt (2013). Se establecieron cuatro transectos en el departamento de Caldas, uno en el departamento de Risaralda y cinco en el departamento del Tolima, en los siguientes municipios: Manizales, Marulanda, Villamaría, Santa Rosa de Cabal, Anzoátegui, Murillo, Herveo, Ibagué y Santa Isabel. Los muestreos de vertebrados se llevaron a cabo en las localidades de la Reserva Forestal Protectora Río Blanco, en Manizales, en Santa Rosa de Cabal, Anzoátegui y Murillo. Para plantas y artrópodos epigeos los muestreos se realizaron en todos los transectos. En cada una de las estaciones dispuestas a lo largo de los transectos altitudinales se emplearon: redes de niebla y puntos de conteo para aves; redes de niebla y trampas de caída para pequeños mamíferos; transectos de muestreo de banda fija y caminatas aleatorias para anfibios, trampas de caída y captura directa para artrópodos epigeos y parcelas para el estudio de plantas.

Охват исследования El área de estudio se ubicó en el complejo de páramos Los Nevados, en bosques andinos y páramos de la cordillera Central, en jurisdicción de los departamentos de Caldas, Risaralda y Tolima. La fase de registro de información en campo se llevó a cabo entre los meses de marzo y julio de 2014. En Caldas se realizaron muestreos en el municipio de Manizales, Marulanda y Villamaría. En Manizales, la localidad particular del muestreo fue la vereda El Desquite, finca Martinica, Reserva Forestal Protectora Río Blanco, entre 3453 y 3973m. en Marulanda, el estudio se realizó en la Vereda El Páramo, sector El Vergel, entre 3414 y 3730m. En Villamaría, el área de estudio se ubicó en la Vereda El Pindo, sector Playa Larga, entre 3430 y 4023m. En Risaralda, se muestreó en el municipio de Santa Rosa de Cabal, en la Vereda La Linda, Sector Cortaderal, Hacienda La Sierra entre 3620 y 3986m. En Tolima, se llevaron a cabo muestreos en los municipios de Anzoátegui, Herveo, Ibagué, Murillo y Santa Isabel. En Anzoátegui, la localidad de estudio fue el Corregimiento Juntas, Vereda El Vergel, Hacienda Diostán,entre 3503 y 3847m. En Herveo, el área de estudio se ubicó en el sector de Letras, Finca La Romelia, entre 3508 y 3898m. En Ibagué, el muestreo se realizó en la vereda La Primavera, entre 3607 y 3901m. En Murillo, el área de estudio fue el Corregimiento El Bosque, Vereda La Cabaña, Finca El Recreo, entre 3480 y 4005m. En Santa Isabel, el área se ubicó en la vereda Totarito, Finca El Águila, entre 3557 y 3960m.
Контроль качества En la caracterización de cada grupo se emplearon métodos estandarizados siguiendo protocolos suministrados por el IAvH. Se contó con la retroalimentación de los investigadores que participaron en los muestreos, también con el acompañamiento y asesoría por parte de profesionales calificados de WCS y del Instituto Alexander von Humboldt. Para todos los grupos, la información recopilada se almacenó en hojas de cálculo elaboradas en Excel y en las plantillas para la base de datos de I2D, posteriormente se enviaron bases de datos, muestras biológicas e informes al Instituto Alexander von Humboldt.

Описание этапа методики:

  1. Mamíferos Para la captura de pequeños mamíferos no voladores (pequeños roedores, musarañas y zarigüeyas) se utilizaron 40 trampas plegables tipo Sherman dispuestas en un transecto lineal y ubicadas a nivel del suelo, separadas 10 m entre sí, en hojarasca, matorrales, grietas, interior del bosque y caminaderos. Como cebo atrayente se usó una mezcla de avena, maní, mantequilla y esencias de banano, con revisión y recambio cada 24 horas, por un período de tres días. Para la captura de murciélagos se utilizaron ocho redes de niebla de 12 x 2.5 m (ojo de malla de 16 mm), siguiendo las recomendaciones de Patterson et al. (2006), Simmons & Voss (1998) y Tirira (1998). El esfuerzo de muestreo fue de cinco horas por estación; las redes se mantuvieron abiertas entre las 18:00 y las 23:00 horas, con revisión cada 30 minutos. Para cada individuo capturado se registró la fecha y hora de captura, especie, sexo, condición reproductiva y morfometría: masa corporal (peso), longitud total, longitud de la cola, longitud de la pata, longitud de la oreja, longitud antebrazo y adicionalmente longitud de trago y longitud de la hoja nasal en murciélagos. Para la toma de estos datos se usaron pesolas de 30, 100 y 300 gr, también se usaron calibradores manuales.
  2. Aves: se emplearon dos métodos: detección visual y captura con redes. Como método de detección se utilizó el conteo por puntos de banda fija, ubicando seis puntos de conteo en cada estación, con 50 m de radio, separados de 100 a 150 m entre sí. En cada punto de conteo se realizaron 15 minutos de observación, con réplica al día siguiente, con un esfuerzo de muestreo de 24 horas por transecto .En cada estación se dispusieron ocho redes de niebla de 12 x 2.5 m (captura) en dos grupos de cuatro redes, separados aproximadamente 100 m entre sí. Las redes estuvieron expuestas desde las 5:30 a las 10:30 horas y desde las 16:00 a las 18:30 horas. Para cada individuo capturado se registró la fecha y hora de captura, especie, sexo, condición reproductiva y morfometría: masa corporal (peso), longitud total y longitud del culmen expuesto, longitud total del ala, envergadura, distancia entre plumas primarias y secundarias, longitud y graduación de la cola, altura y ancho del pico entre comisuras, longitud del tarso y longitud del hallux. Para la toma de estos datos se usaron pesolas de 30, 100 y 300 gr, también se usaron calibradores manuales.
  3. Plantas: En cada transecto se definieron entre cinco y siete estaciones de muestreo. En cada transecto altitudinal se establecieron tres parcelas de vegetación por estación de muestreo. El área de las parcelas varió así: en coberturas con dosel continuo parcelas de 100 m2, en coberturas con dosel discontinuo o ausente se levantaron parcelas de 50 m2. En el bosque altoandino y arbustales de páramo se tomaron los siguientes datos para las morfoespecies con un diámetro basal ≥ 2 cm a 30 cm del suelo: altura total, altura a la primera ramificación (para árboles), diámetro del tallo a 30 cm de altura, cobertura de copa, hábito (árbol, arbusto, roseta, hierba, epífita, etc.) y estado fenológico. Las áreas basales se calcularon a partir del diámetro de cada ramificación registrada (Villarreal et al.2006). La cobertura de copa se calculó a partir de las medidas de los diámetros mayor y menor, tomando como referencia el área proyectada de la copa de cada individuo sobre el suelo, En los herbazales, para el caso de macollas y otras especies cuya individualización fue difícil, se registraron las siguientes variables: altura total, cobertura de copa, porcentaje de cobertura, hábito y estado fenológico. Para cada estación de muestreo se elaboraron perfiles verticales de la vegetación registrada en el transecto con base en los levantamientos florísticos realizados; para ello se ubicó un punto de coordenada (x, y). Las muestras colectadas fueron secadas y procesadas en el Herbario CUVC de la Universidad del Valle, posteriormente fueron enviadas a la colección FMB del Instituto Alexander von Humboldt.
  4. Artrópodos (coleópteros y arañas): En cada transecto se definieron entre cinco y siete estaciones de muestreo, desde el límite superior al inferior. En cada estación se dispusieron dos transectos de 40 m, distanciados 50 m entre sí. En cada transecto se instalaron cinco trampas de caída. (separadas 10 m), elaboradas con recipientes plásticos de 10 cm de diámetro y medio litro de capacidad, enterrados ras del suelo; a cada trampa se adicionó una mezcla de 300 ml de agua y una gota de jabón (Villarreal et al. 2006). Se realizó captura manual durante una hora diaria en sustratos como la hojarasca, piedras, troncos, necromasa de frailejones y en la vegetación. Las muestras se almacenaron en bolsas de cierre hermético y se etiquetaron con un código referenciando la localidad, estación, transecto, número de trampa y fecha de captura. Posteriormente, los especímenes colectados se depositaron en frascos plásticos con etanol al 80% y se enviaron a colecciones biológicas del Instituto Alexander von Humboldt.
  5. Anfibios: En la Reserva Forestal Protectora Río Blanco y Anzoátegui, se usaron recorridos en transectos de banda fija a lo largo de la franja altitudinal en cada una de las estaciones. El uso de caminatas aleatorias se empleó en Santa Rosa de Cabal y Murillo. En los transectos de banda fija, se establecieron en cada estación seis transectos longitudinales de 100 x 2 m, separados por una distancia mínima de 50 m entre sí. el recorrido en cada estación se realizó en distancias no mayores a 270 metros. En ambos casos se realizaron caminatas diurnas y nocturnas, haciendo búsqueda visual y exploraciones en todos los microhábitats. Se usó una herramienta de labranza para remover y buscar especímenes en necromasa de frailejones y puyas. Se tomaron datos morfométricos como: peso, longitud rostro cloaca, ancho de la cabeza, ancho de la boca, longitud del antebrazo, longitud de la tibia, longitud del fémur, longitud del pie, grosor de la piel del dorso, coloración, uso de hábitat y sexo. Para la toma de estos datos se usaron pesolas de 30, 100 y 300 gr, también se usaron calibradores manuales.

Данные коллекции

Название коллекции Herbario Federico Meden Bogotá, Colección de anfibios, entomológica y mamíferos del Instituto Alexander von Humboldt, Universidad ICESI, Universidad del Valle
Идентификатор коллекции FMB, IAvH-Am, IAvH-E, IAvH-M, ICESI, CUVC
Идентификатор родительской коллекции n/a
Методы сохранения образцов Alcohol

Библиографические ссылки

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El presente recurso tiene información restringida temporalmente. Asociado a este recurso existen conjuntos de datos de rasgos y tejidos.

Цель Aunar esfuerzos técnicos, científicos, administrativos y financieros con el fin de elaborar los estudios bióticos a escala 1: 25000 del Complejo de Páramos Los Nevados en jurisdicción de CORPOCALDAS, CARDER y CORTOLIMA, para identificar la franja de transición páramo-bosque en el Complejo de Páramos “Los Nevados”.
Альтернативные идентификаторы doi:10.15472/rs81k8
6d4b3e65-5922-46bd-a9b5-9c80b19a28d0
http://ipt.biodiversidad.co/iavh/resource?r=rrbb_nevados_faunaflora_2015