Estudios bióticos: Plantas, anfibios, mamíferos, aves y edafofauna epígea (coleópteros y arácnidos), en el complejo de páramo Los Nevados

Versão mais recente publicado por Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt em Feb 9, 2017 Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt

En el complejo de páramos Los Nevados, ubicado en la cordillera central de los Andes Colombianos, en jurisdicción de los departamentos de Caldas, Risaralda y Tolima, en las vertientes oriental y occidental, se llevaron a cabo muestreos para el registro de información en campo de cinco grupos biológicos: plantas, aves, mamíferos, anfibios y edafofauna epigea (coleópteros y arañas). Esto con el fin de aportar información biológica fundamental para la identificación de la franja de transición Páramo-Bosque, como insumo para la delimitación de los páramos en Colombia a través del estudio de la diversidad biológica y su distribución. En un gradiente de elevación entre 3414 y 4026 m, se documentaron 13750 registros de datos con información biológica, 361 para 6 especies de anfibios, 3435 registros de artrópodos de 22 ordenes y 27 familias, 2356 registros para 100 especies de aves, 177 para 20 especies de mamíferos y 7421 para 326 especies y morfoespecies de plantas.

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  • ResourceRelationship 
    13750

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Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt (2015). Estudios bióticos: Plantas, edafofauna epígea, anfibios y aves en los complejo de páramo Los Nevados. 13750 registros, aportados por: León, O. (Contacto del recurso), Toro-Marin, Y. (Creador del recurso, Proveedor de metadatos). Versión 2.1. http://doi.org/10.15472/rs81k8

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Palavras-chave

metadatos; levantamietos de informacion; plantas; mamíferos; aves; anfibios; Caldas; Risaralda; Tolima; wcs.; Specimen; Occurrence

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Estudios bióticos: Plantas, anfibios, mamíferos, aves y edafofauna epígea (coleópteros y arácnidos), en el complejo de páramo Los Nevadoshttp://i2d.humboldt.org.co/ceiba/resource.do?r=rrbb_nevados_faunaflora_2015 UTF-8 txt

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Provedor de Conteúdo
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Investigadora
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Provedor de Conteúdo
Alejandra Hurtado
Investigadora
WCS Calle 2 # 42-23 Cali Valle del Cauca CO

Cobertura Geográfica

Los datos proceden de la cordillera central, complejo los nevados, municipios de Marulanda al Norte, Anzoátegui al Sur, Anzoátegui y Líbano al Este y Manizales y Villamaría al Oeste.

Coordenadas delimitadoras Sul Oeste [4.623, -75.493], Norte Leste [5.25, -75.217]

Cobertura Taxonômica

familia Actinidaceae

Espécie  Saurauia ursina

familia Adoxaceae

Espécie  Viburnum undulatum

familia Alstroemeriaceae

Espécie  Bomarea,  Bomarea carderi,  Bomarea hirsuta,  Bomarea linifolia,  Bomarea patinii,  Bomarea pauciflora

familia Apiaceae

Espécie  Bowlesia,  Eryngium sp.,  Eryngium humboldtii,  Eryngium humile,  Myrrhidendron pennelli

familia Apocynaceae

Espécie  Cynanchum

familia Aquifoliaceae

Espécie  Ilex myricoides

familia Araceae

Espécie  Anthurium oxybelium

familia Araliaceae

Gênero  Hydrocotyle,  Oreopanax,  Schefflera
Espécie  Hydrocotyle humboldtii,  Oreopanax discolor,  Oreopanax glabrifolium,  Oreopanax incisus,  Oreopanax ruizianum,  Oreopanax tolimanus

famiia Aspleniaceae

Gênero  Asplenium
Espécie  Asplenium theciferum,  Asplenium triphyllum

familia Asteraceae

Gênero  Achyrocline,  Ageratina,  Asteraceae,  Baccharis,  Conyza,  Diplostephium,  Eupatorium,  Gynoxys,  Hieracium,  Hypochaeris,  Jungia,  Munnozia,  Pentacalia,  Taraxacum,  Verbesina
Espécie  Achyrocline satureioides,  Aequatorium jamesonii,  Aequatorium polygonoides,  Aequatorium tatamanum,  Ageratina glyptophlebia,  Ageratina tinifolia,  Baccharis buxifolia,  Baccharis caldasiana,  Baccharis genistelloides,  Baccharis latifolia,  Baccharis prunifolia,  Baccharis rupicola,  Baccharis tricuneata,  Baccharis vacciniifolia,  Bidens andicola,  Diplostephium alveolatum,  Diplostephium micradenium,  Diplostephium revolutum,  Diplostephium schultzii,  Diplostephium tolimense,  Diplostephium violaceum,  Espeletia hartwegiana,  Gamochaeta americana,  Gynoxys buxifolia,  Gynoxys lehmannii,  Gynoxys pendula,  Gynoxys tolimensis,  Hieracium avilae,  Hipochaeris radicata,  Mutisia clematis,  Oritrophium peruvianum,  Pentacalia vaccinioides,  Pentacalia andicola,  Pentacalia sylvicola,  Pentacalia vaccinioides,  Senecio formosus,  Senecio repens,  Taraxacum campylodes,  Taraxacum officinale,  Werneria pygmaea,  Xenophyllum crassum

Balanophoraceae

Espécie  Corynaea sphaerica

familia Begoniaceae

Gênero  Begonia
Espécie  Begonia ferruginea,  Begonia umbellata,  Begonia urticae

familia Berberidaceae

Espécie  Berberis dumaniana,  Berberis goudotii,  Berberis quindiuensis

familia Blechnaceae

Gênero  Blechnum
Espécie  Blechnum arborescens,  Blechnum cordatum,  Blechnum loxense

familia Brassicaceae

Espécie  Cardamine flexuosa

familia Bromeliaceae

Gênero  Aechmaea,  Bromelia,  Greigia,  Guzmania,  Puya
Espécie  Greigia columbiana,  Racinaea penlandii,  Tillandsia complanata

familia Brunelliaceae

Espécie  Brunellia

familia Calceolariaceae 

Espécie  Calceolaria,  Calceolaria fruticosa,  Calceolaria microbefaria

familia Campanulaceae

Espécie  Centropogon ferrugineus,  Centropogon hirsutus,  Siphocampylus mirabilis

familia Caryophyllaceae

Gênero  Cerastium
Espécie  Cerastium mollissimum,  Cerastium subspicatum

familia Chloranthaceae

Gênero  Hedyosmum
Espécie  Hedyosmum racemosum

familia Clethraceae

Gênero  Clethra

familia Convolvulaceae

Gênero  Convolvulaceae

familia Coriariaceae

Gênero  Coriaria
Espécie  Coriaria ruscifolia

familia Cucurbitaceae

Gênero  Cucurbitacea

familia Cunoniaceae

Gênero  Weinmannia
Espécie  Weinmannia balbisiana,  Weinmannia mariquitae,  Weinmannia rollottii,  Weinmannia tomentosa

familia Cyatheaceae

Gênero  Cyathea

familia Cyperaceae

Gênero  Oreobolus
Espécie  Carex bonplandii,  Rhynchospora caucana,  Swallenochloa tessellata

Dennstaedtiaceae

Espécie  Histiopteris incisa

famila Dryopteridaceae

Gênero  Elaphoglossum
Espécie  Elaphoglossum engelii,  Elaphoglossum funckii

Elaeocarpaceae

Espécie  Vallea stipularis

familia Equisetaceae

Gênero  Equisetum
Espécie  Equisetum bogotense

familia Ericaceae

Gênero  Gaultheria,  Plutarchia
Espécie  Cavendishia bracteata,  Disterigma acuminatum,  Disterigma codonanthum,  Disterigma empetrifolium,  Gaultheria erecta,  Gaultheria foliolosa,  Macleania rupestris,  Myrsine dependens,  Pernettya prostrata,  Plutarchia monantha,  Themistoclesia mucronata,  Vaccinium floribundum,  Gaultheria anastomosans

familia Escalloniaceae

Espécie  Escallonia myrtilloides

Euphorbiaceae

Gênero  Euphorbiaceae

Fabaceae

Espécie  Lupinus microphyllus,  Lupinus alopecuroides

familia Gentianaceae

Espécie  Gentiana sedifolia

Geraniaceae

Espécie  Geranium sibbaldioides,  Geranium diffusum

Grossulariaceae

Espécie  Ribes leptostachyum 

familia Gunneraceae

Espécie  Gunnera magellanica

familia Hymenophyllaceae

Espécie  Hymenophyllum elegantulum

familia Hypericaceae

Gênero  Hypericum
Espécie  Hypericum juniperinum,  Hypericum lancifolium,  Hypericum lancioides,  Hypericum laricifolium

Iridaceae

Espécie  Sisyrinchium convolutum,  Xyris subulata

Isoetaceae

Espécie  Isoetes colombiana

familia Lamiaceae

Gênero  Vitex
Espécie  Clinopodium brownei,  Satureja nubigena

familia Loranthaceae

Espécie  Aetanthus nodosus,  Gaiadendron punctatum,  Loranthaceae,  Tristerix longebracteatus

familia Lycopodiaceae

Gênero  Huperzia
Espécie  Huperzia crassa,  Huperzia hohenackeri,  Lycopodiella cernua,  Lycopodium clavatum

Malvaceae

Gênero  Acaulimalva

familia Melastomataceae

Espécie  Axinaea,  Axinaea colombiana,  Brachyotum,  Brachyotum lindenii,  Brachyotum strigosum,  Bucquetia glutinosa,  Melastomataceae,  Miconia,  Miconia,  Miconia bracteolata,  Miconia chionophila,  Miconia chlorocarpa,  Miconia ferruginea,  Miconia guianensis,  Miconia jahnii,  Miconia ligustrina,  Miconia orcheotoma,  Miconia salicifolia,  Miconia tinifolia,  Tibouchina grossa

familia Myrsinaceae

Gênero  Ardisia,  Myrsine
Espécie  Myrsine coriacea,  Myrsine dependens

Nyctaginaceae

Espécie  Colignonia ovalifolia

familia Onagraceae

Gênero  Fuchsia
Espécie  Fuchsia corollata,  Fuchsia hartwegii,  Fuchsia magellanica,  Fuchsia petiolaris

familia Orchidaceae

Gênero  Elleanthus,  Lepanthes,  Masdevallia,  Pleurothallis,  Stelis
Espécie  Cranichis diphylla,  Cyrtochilum auropurpureum,  Cyrtochilum pardinum,  Elleanthus aurantiacus,  Elleanthus graminifolius,  Epidendrum,  Epidendrum,  Epidendrum megalospathum,  Oncidium cultratum,  Pachyphyllum crystallinum,  Pleurothallis coriacardia,  Telipogon alberti

familia Orobanchaceae

Espécie  Bartsia santolinifolia,  Castilleja fissifolia,  Clinopodium brownei

familia Oxalidaceae

Espécie  Oxalis integra

familia Passifloraceae

Espécie  Passiflora mixta

familia Piperaceae

Gênero  Peperomia
Espécie  Peperomia verticillata

familia Plantaginaceae

Espécie  Plantago lanceolata,  Plantago linearis,  Plantago rigida

familia Poaceae

Gênero  Aegopogon,  Aulonemia,  Cortaderia
Espécie  Agrostis breviculmis,  Agrostis foliata,  Anthoxanthum odoratum,  Bromus lanatus,  Calamagrostis effusa,  Calamagrostis intermedia,  Chusquea scandens,  Cortaderia columbiana,  Cortaderia nitida,  Holcus lanatus,  Swallenochloa tessellata

familia Polygalaceae

Espécie  Monnina aestuans,  Monnina involuta,  Monnina revoluta

Polygonaceae

Gênero  Polygonum
Espécie  Rumex acetosella

familia Polypodiaceae

Gênero  Serpocaulon
Espécie  Campyloneurum angustifolium,  Campyloneurum angustipaleatum,  Melpomene assurgens,  Pleopeltis macrocarpa,  Polypodium monosorum

familia Primulaceae

Gênero  Geissanthus
Espécie  Geissanthus serrulatus

familia Pteridaceae

Gênero  Eriosorus,  Jamesonia
Espécie  Jamesonia bogotensis,  Jamesonia goudotii,  Jamesonia pulchra

familia Ranunculaceae

Gênero  Ranunculus
Espécie  Ranunculus peruvianus,  Ranunculus praemorsus

familia Rosaceae

Gênero  Acaena,  Aphanes,  Hesperomeles,  Lachemilla,  Prunus,  Rubus
Espécie  Acaena elongata,  Azorella multifida,  Escallonia myrtilloides,  Hesperomeles ferruginea,  Hesperomeles heterophylla,  Hesperomeles lanuginosa,  Hesperomeles obtusifolium,  Hesperomeles pernettyoides,  Lachemilla aphanoides,  Lachemilla fulvescens,  Lachemilla nivalis,  Lachemilla orbiculata,  Polylepis sericea,  Rubus compactus,  Rubus glaucus,  Rubus guyanensis

familia Rubiaceae

Espécie  Nertera granadensis,  Galium hypocarpium

familia Santalaceae

Espécie  Dendrophthora clavata,  Corynaea sphaerica

familia Scrophulariaceae

Espécie  Bartsia santolinifolia,  Buddleja bullata,  Buddleja incana

familia Smilacaceae

Gênero  Smilax

familia Solanaceae

Gênero  Cestrum,  Sessea,  Solanum
Espécie  Saracha quitensis,  Sessea crassivenosa,  Solanum caripense,  Solanum laurifolium

familia Symplocaceae

Gênero  Symplocos

familia Tropaeolaceae

Espécie  Tropaeolum tuberosum

Urticaceae

Gênero  Pilea

Winteraceae

Espécie  Drimys granadensis

familia Woodsiaceae

Espécie  Cystopteris fragilis

Xyridaceae

Espécie  Xyris subulata

clase Amphibia, orden Anura, familia bufonidae

Espécie  Osornophryne percrassa

clase Amphibia, orden Anura, familia Craugastoridae

Espécie  Pristimantis leptolophus,  Pristimantis peraticus,  Pristimantis racemus,  Pristimantis simoterus,  Pristimantis uranobates

Clase aves, familia Scolopacidae

Espécie  Gallinago nobilis,  Gallinago jamesoni

Clase aves, familia Emberizidae

Espécie  Atlapetes pallidinucha

Clase aves, familia Thraupidae

Espécie  Anisognathus igniventris,  Tangara vassorii

Clase aves, familia Trochilidae

Espécie  Metallura tyrianthina,  Aglaeactis cupripennis

Clase aves, familia Troglodytidae

Espécie  Cistothorus platensis

Clase mamiferos, familia Caenolestidae

Espécie  Caenolestes fuliginosus

Clase mamiferos, familia Cricetidae

Espécie  Akodon affinis,  Microryzomys,  Microryzomys minutus,  Thomasomys,  Thomasomys aureus,  Thomasomys cinereiventer,  Thomasomys laniger,  Thomasomys niveipes

Clase mamiferos, familia Leporidae

Espécie  Sylvilagus brasiliensis

Clase mamiferos, familia Phyllostomidae

Gênero  Anoura
Espécie  Anoura geoffroyi,  Sturnira bidens,  Sturnira bidens,  Sturnira erythromos

Clase mamiferos, familia Soricidae

Espécie  Cryptotis thomasi

Clase mamiferos, familia Vespertilionidae

Gênero  Myotis
Espécie  Eptesicus andinus,  Histiotus montanus,  Lasiurus blossevillii

clase Arachnida, familia Araeae

Família  Amaurobiidae,  Anapidae,  Anyphaenidae,  Araneus,  Caponiidae,  Corinnidae,  Dipluridae,  Gnaphosidae,  Linyphiidae,  Lycosidae,  Lygromma,  Mimetidae,  Ochyrocera,  Ochyroceratidae,  Ocrepeira,  Oonopidae,  Palpimanidae,  Paratropididae,  Philodromidae,  Pholcidae,  Pisauridae,  Pomboa,  Salticidae,  Tetragnathidae,  Theridiidae,  Zodariidae

Clase insecta, orden Coleoptera

Família  Cantharidae,  Carabidae,  Carabidae,  Chrysomelidae,  Chrysomelidae,  Coccinellidae,  Curculionidae,  Dermestidae,  Elateridae,  Erotylidae,  Histeridae,  Latridiidae,  Lycidae,  Lycidae,  Meloidae,  Nitidulidae,  Phengodidae,  Ptiliidae,  Ptilodactylidae,  Pyrochroidae,  Scarabaeidae,  Scirtidae,  Silphidae,  Staphylinidae,  Tenebrionidae

Cobertura Temporal

Data Inicial / Data final 2014-03-01 / 2014-12-04

Dados Sobre o Projeto

Nenhuma descrição disponível

Título Fondo Adaptación_Insumos para la Delimitación de Ecosistemas Estratégicos: Páramos y Humedales
Financiamento Convenio de Cooperación No. 13-13-014-360CE entre IAvH y WCS
Descrição da Área de Estudo El estudio se llevó a cabo en bosques andinos y páramos de la cordillera Central, en el complejo de páramos Los Nevados, en los departamentos de Caldas, Risaralda y Tolima, entre los meses de Marzo y julio de 2014.
Descrição do Design El objetivo principal consistía en elaborar estudios bióticos en jurisdicción de las corporaciones CARDER, CORPOCALDAS y CORTOLIMA, orientado a aportar información biológica para la identificación de la franja de transición Páramo-Bosque en Colombia, específicamente en el complejo de páramos Los Nevados, a través del estudio de la diversidad y distribución de aves, anfibios, pequeños mamíferos, plantas y edafofauna epigea (arañas y coleópteros). Esta información biológica es un insumo importante para establecer la franja de transición Bosque-Páramo, aporte fundamental para lograr la la delimitación de los páramos en Colombia.

O pessoal envolvido no projeto:

Provedor de Conteúdo
Yadi Toro Marín

Métodos de Amostragem

El registro de los datos biológicos se llevó a cabo siguiendo las propuestas metodológicas de los componentes de vegetación y fauna para los estudios bióticos, para la identificación y delimitación de los complejos de páramos a escala 1:25.000, elaborado por el Instituto Alexander von Humboldt (2013). Se establecieron cuatro transectos en el departamento de Caldas, uno en el departamento de Risaralda y cinco en el departamento del Tolima, en los siguientes municipios: Manizales, Marulanda, Villamaría, Santa Rosa de Cabal, Anzoátegui, Murillo, Herveo, Ibagué y Santa Isabel. Los muestreos de vertebrados se llevaron a cabo en las localidades de la Reserva Forestal Protectora Río Blanco, en Manizales, en Santa Rosa de Cabal, Anzoátegui y Murillo. Para plantas y artrópodos epigeos los muestreos se realizaron en todos los transectos. En cada una de las estaciones dispuestas a lo largo de los transectos altitudinales se emplearon: redes de niebla y puntos de conteo para aves; redes de niebla y trampas de caída para pequeños mamíferos; transectos de muestreo de banda fija y caminatas aleatorias para anfibios, trampas de caída y captura directa para artrópodos epigeos y parcelas para el estudio de plantas.

Área de Estudo El área de estudio se ubicó en el complejo de páramos Los Nevados, en bosques andinos y páramos de la cordillera Central, en jurisdicción de los departamentos de Caldas, Risaralda y Tolima. La fase de registro de información en campo se llevó a cabo entre los meses de marzo y julio de 2014. En Caldas se realizaron muestreos en el municipio de Manizales, Marulanda y Villamaría. En Manizales, la localidad particular del muestreo fue la vereda El Desquite, finca Martinica, Reserva Forestal Protectora Río Blanco, entre 3453 y 3973m. en Marulanda, el estudio se realizó en la Vereda El Páramo, sector El Vergel, entre 3414 y 3730m. En Villamaría, el área de estudio se ubicó en la Vereda El Pindo, sector Playa Larga, entre 3430 y 4023m. En Risaralda, se muestreó en el municipio de Santa Rosa de Cabal, en la Vereda La Linda, Sector Cortaderal, Hacienda La Sierra entre 3620 y 3986m. En Tolima, se llevaron a cabo muestreos en los municipios de Anzoátegui, Herveo, Ibagué, Murillo y Santa Isabel. En Anzoátegui, la localidad de estudio fue el Corregimiento Juntas, Vereda El Vergel, Hacienda Diostán,entre 3503 y 3847m. En Herveo, el área de estudio se ubicó en el sector de Letras, Finca La Romelia, entre 3508 y 3898m. En Ibagué, el muestreo se realizó en la vereda La Primavera, entre 3607 y 3901m. En Murillo, el área de estudio fue el Corregimiento El Bosque, Vereda La Cabaña, Finca El Recreo, entre 3480 y 4005m. En Santa Isabel, el área se ubicó en la vereda Totarito, Finca El Águila, entre 3557 y 3960m.
Controle de Qualidade En la caracterización de cada grupo se emplearon métodos estandarizados siguiendo protocolos suministrados por el IAvH. Se contó con la retroalimentación de los investigadores que participaron en los muestreos, también con el acompañamiento y asesoría por parte de profesionales calificados de WCS y del Instituto Alexander von Humboldt. Para todos los grupos, la información recopilada se almacenó en hojas de cálculo elaboradas en Excel y en las plantillas para la base de datos de I2D, posteriormente se enviaron bases de datos, muestras biológicas e informes al Instituto Alexander von Humboldt.

Descrição dos passos do método:

  1. Mamíferos Para la captura de pequeños mamíferos no voladores (pequeños roedores, musarañas y zarigüeyas) se utilizaron 40 trampas plegables tipo Sherman dispuestas en un transecto lineal y ubicadas a nivel del suelo, separadas 10 m entre sí, en hojarasca, matorrales, grietas, interior del bosque y caminaderos. Como cebo atrayente se usó una mezcla de avena, maní, mantequilla y esencias de banano, con revisión y recambio cada 24 horas, por un período de tres días. Para la captura de murciélagos se utilizaron ocho redes de niebla de 12 x 2.5 m (ojo de malla de 16 mm), siguiendo las recomendaciones de Patterson et al. (2006), Simmons & Voss (1998) y Tirira (1998). El esfuerzo de muestreo fue de cinco horas por estación; las redes se mantuvieron abiertas entre las 18:00 y las 23:00 horas, con revisión cada 30 minutos. Para cada individuo capturado se registró la fecha y hora de captura, especie, sexo, condición reproductiva y morfometría: masa corporal (peso), longitud total, longitud de la cola, longitud de la pata, longitud de la oreja, longitud antebrazo y adicionalmente longitud de trago y longitud de la hoja nasal en murciélagos. Para la toma de estos datos se usaron pesolas de 30, 100 y 300 gr, también se usaron calibradores manuales.
  2. Aves: se emplearon dos métodos: detección visual y captura con redes. Como método de detección se utilizó el conteo por puntos de banda fija, ubicando seis puntos de conteo en cada estación, con 50 m de radio, separados de 100 a 150 m entre sí. En cada punto de conteo se realizaron 15 minutos de observación, con réplica al día siguiente, con un esfuerzo de muestreo de 24 horas por transecto .En cada estación se dispusieron ocho redes de niebla de 12 x 2.5 m (captura) en dos grupos de cuatro redes, separados aproximadamente 100 m entre sí. Las redes estuvieron expuestas desde las 5:30 a las 10:30 horas y desde las 16:00 a las 18:30 horas. Para cada individuo capturado se registró la fecha y hora de captura, especie, sexo, condición reproductiva y morfometría: masa corporal (peso), longitud total y longitud del culmen expuesto, longitud total del ala, envergadura, distancia entre plumas primarias y secundarias, longitud y graduación de la cola, altura y ancho del pico entre comisuras, longitud del tarso y longitud del hallux. Para la toma de estos datos se usaron pesolas de 30, 100 y 300 gr, también se usaron calibradores manuales.
  3. Plantas: En cada transecto se definieron entre cinco y siete estaciones de muestreo. En cada transecto altitudinal se establecieron tres parcelas de vegetación por estación de muestreo. El área de las parcelas varió así: en coberturas con dosel continuo parcelas de 100 m2, en coberturas con dosel discontinuo o ausente se levantaron parcelas de 50 m2. En el bosque altoandino y arbustales de páramo se tomaron los siguientes datos para las morfoespecies con un diámetro basal ≥ 2 cm a 30 cm del suelo: altura total, altura a la primera ramificación (para árboles), diámetro del tallo a 30 cm de altura, cobertura de copa, hábito (árbol, arbusto, roseta, hierba, epífita, etc.) y estado fenológico. Las áreas basales se calcularon a partir del diámetro de cada ramificación registrada (Villarreal et al.2006). La cobertura de copa se calculó a partir de las medidas de los diámetros mayor y menor, tomando como referencia el área proyectada de la copa de cada individuo sobre el suelo, En los herbazales, para el caso de macollas y otras especies cuya individualización fue difícil, se registraron las siguientes variables: altura total, cobertura de copa, porcentaje de cobertura, hábito y estado fenológico. Para cada estación de muestreo se elaboraron perfiles verticales de la vegetación registrada en el transecto con base en los levantamientos florísticos realizados; para ello se ubicó un punto de coordenada (x, y). Las muestras colectadas fueron secadas y procesadas en el Herbario CUVC de la Universidad del Valle, posteriormente fueron enviadas a la colección FMB del Instituto Alexander von Humboldt.
  4. Artrópodos (coleópteros y arañas): En cada transecto se definieron entre cinco y siete estaciones de muestreo, desde el límite superior al inferior. En cada estación se dispusieron dos transectos de 40 m, distanciados 50 m entre sí. En cada transecto se instalaron cinco trampas de caída. (separadas 10 m), elaboradas con recipientes plásticos de 10 cm de diámetro y medio litro de capacidad, enterrados ras del suelo; a cada trampa se adicionó una mezcla de 300 ml de agua y una gota de jabón (Villarreal et al. 2006). Se realizó captura manual durante una hora diaria en sustratos como la hojarasca, piedras, troncos, necromasa de frailejones y en la vegetación. Las muestras se almacenaron en bolsas de cierre hermético y se etiquetaron con un código referenciando la localidad, estación, transecto, número de trampa y fecha de captura. Posteriormente, los especímenes colectados se depositaron en frascos plásticos con etanol al 80% y se enviaron a colecciones biológicas del Instituto Alexander von Humboldt.
  5. Anfibios: En la Reserva Forestal Protectora Río Blanco y Anzoátegui, se usaron recorridos en transectos de banda fija a lo largo de la franja altitudinal en cada una de las estaciones. El uso de caminatas aleatorias se empleó en Santa Rosa de Cabal y Murillo. En los transectos de banda fija, se establecieron en cada estación seis transectos longitudinales de 100 x 2 m, separados por una distancia mínima de 50 m entre sí. el recorrido en cada estación se realizó en distancias no mayores a 270 metros. En ambos casos se realizaron caminatas diurnas y nocturnas, haciendo búsqueda visual y exploraciones en todos los microhábitats. Se usó una herramienta de labranza para remover y buscar especímenes en necromasa de frailejones y puyas. Se tomaron datos morfométricos como: peso, longitud rostro cloaca, ancho de la cabeza, ancho de la boca, longitud del antebrazo, longitud de la tibia, longitud del fémur, longitud del pie, grosor de la piel del dorso, coloración, uso de hábitat y sexo. Para la toma de estos datos se usaron pesolas de 30, 100 y 300 gr, también se usaron calibradores manuales.

Dados de Coleção

Nome da Coleção Herbario Federico Meden Bogotá, Colección de anfibios, entomológica y mamíferos del Instituto Alexander von Humboldt, Universidad ICESI, Universidad del Valle
Identificador da Coleção FMB, IAvH-Am, IAvH-E, IAvH-M, ICESI, CUVC
Identificador da Coleção Parental n/a
Métodos de preservação do espécime Álcool

Citações bibliográficas

  1. Garnier, E. et al. 2007. Assessing the effects of land-use change on plant traits, communities and ecosystem functioning in grasslands: A standardized methodology and lessons from an application to 11 european sites. Annals of Botany 99: 967-985.
  2. Flórez, D. E. & H. Sánchez (1995) La diversidad de los arácnidos en Colombia. Aproximación inicial pp: 327-372 En: Rangel O. (ed) Colombia, Diversidad Biótica I., Instituto de Ciencias Naturales, Inderena, FES.
  3. Frost, D. R. 2014. Amphibian Species of the World: an Online Reference. Version 6.0. American Museum of Natural History, New York, USA. Disponible en: http://research.amnh.org/herpetology/amphibia/index.html(Acceso: Septiembre 2014).
  4. Cornelissen, J. et al. 2003. A handbook of protocols for standardised and easy measurement of plant functional traits worldwide. Australian Journal of Botany 51: 335-380.
  5. Tirira. D. G. 1998. Historia Natural de los murciélagos neotropicales. 31–56 pp. En: Biología.sistemática y conservación de los mamíferos del Ecuador (D. G. Tirira. Ed.). Museo de Zoología. Pontificia Universidad Católica del Ecuador. Publicación Especial 1. Quito.
  6. Simmons. N. B. & R. S. Voss. 2007. Collection.preparation.and fixation of specimens and tissues. En: Ecological and behavioral methods for the study of bats. 2da Edición (T. H. Kunz and S. Parsons. Eds.). Johns Hopkins University Press.
  7. Patterson, B., Stotz, D.F. & S. Solari. 2006. Biological Surveys and Inventories. In Manu. 3-12 pp. En: Mammals and Birds of the Manua Biosphere Reserve, Peru (Patterson, B., Stotz, D.F. & S. Solari. Eds.). Fieldiana: Zoology, New Zeries 110. Field Museum of Natural History.
  8. Villarreal.H.. M. Álvarez. S. Córdoba. F. Escobar. G. Fagua. F. Gast. H. Mendoza. M. Ospina & A. M. Umaña. Segunda edición. 2006. Manual de métodos para el desarrollo de inventarios de biodiversidad. Programa de Inventarios de Biodiversidad. Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt. Bogotá. Colombia. 236 pp.

Metadados Adicionais

El presente recurso tiene información restringida temporalmente. Asociado a este recurso existen conjuntos de datos de rasgos y tejidos.

Propósito Aunar esfuerzos técnicos, científicos, administrativos y financieros con el fin de elaborar los estudios bióticos a escala 1: 25000 del Complejo de Páramos Los Nevados en jurisdicción de CORPOCALDAS, CARDER y CORTOLIMA, para identificar la franja de transición páramo-bosque en el Complejo de Páramos “Los Nevados”.
Identificadores alternativos doi:10.15472/rs81k8
6d4b3e65-5922-46bd-a9b5-9c80b19a28d0
http://ipt.biodiversidad.co/iavh/resource?r=rrbb_nevados_faunaflora_2015