Estudios bióticos: Plantas, anfibios, mamíferos, aves y edafofauna epígea (coleópteros y arácnidos), en el complejo de páramo Los Nevados

Última versión Publicado por Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt en Feb 9, 2017 Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt

En el complejo de páramos Los Nevados, ubicado en la cordillera central de los Andes Colombianos, en jurisdicción de los departamentos de Caldas, Risaralda y Tolima, en las vertientes oriental y occidental, se llevaron a cabo muestreos para el registro de información en campo de cinco grupos biológicos: plantas, aves, mamíferos, anfibios y edafofauna epigea (coleópteros y arañas). Esto con el fin de aportar información biológica fundamental para la identificación de la franja de transición Páramo-Bosque, como insumo para la delimitación de los páramos en Colombia a través del estudio de la diversidad biológica y su distribución. En un gradiente de elevación entre 3414 y 4026 m, se documentaron 13750 registros de datos con información biológica, 361 para 6 especies de anfibios, 3435 registros de artrópodos de 22 ordenes y 27 familias, 2356 registros para 100 especies de aves, 177 para 20 especies de mamíferos y 7421 para 326 especies y morfoespecies de plantas.

Registros

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  • Occurrence (core)
    13750
  • ResourceRelationship 
    13750

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Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt (2015). Estudios bióticos: Plantas, edafofauna epígea, anfibios y aves en los complejo de páramo Los Nevados. 13750 registros, aportados por: León, O. (Contacto del recurso), Toro-Marin, Y. (Creador del recurso, Proveedor de metadatos). Versión 2.1. http://doi.org/10.15472/rs81k8

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Palabras Clave

metadatos; levantamietos de informacion; plantas; mamíferos; aves; anfibios; Caldas; Risaralda; Tolima; wcs.; Specimen; Occurrence

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Estudios bióticos: Plantas, anfibios, mamíferos, aves y edafofauna epígea (coleópteros y arácnidos), en el complejo de páramo Los Nevadoshttp://i2d.humboldt.org.co/ceiba/resource.do?r=rrbb_nevados_faunaflora_2015 UTF-8 txt

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Proveedor de Contenido
Alejandra Hurtado
Investigadora
WCS Calle 2 # 42-23 Cali Valle del Cauca CO

Cobertura Geográfica

Los datos proceden de la cordillera central, complejo los nevados, municipios de Marulanda al Norte, Anzoátegui al Sur, Anzoátegui y Líbano al Este y Manizales y Villamaría al Oeste.

Coordenadas límite Latitud Mínima Longitud Mínima [4.623, -75.493], Latitud Máxima Longitud Máxima [5.25, -75.217]

Cobertura Taxonómica

familia Actinidaceae

Especie  Saurauia ursina

familia Adoxaceae

Especie  Viburnum undulatum

familia Alstroemeriaceae

Especie  Bomarea,  Bomarea carderi,  Bomarea hirsuta,  Bomarea linifolia,  Bomarea patinii,  Bomarea pauciflora

familia Apiaceae

Especie  Bowlesia,  Eryngium sp.,  Eryngium humboldtii,  Eryngium humile,  Myrrhidendron pennelli

familia Apocynaceae

Especie  Cynanchum

familia Aquifoliaceae

Especie  Ilex myricoides

familia Araceae

Especie  Anthurium oxybelium

familia Araliaceae

Género  Hydrocotyle,  Oreopanax,  Schefflera
Especie  Hydrocotyle humboldtii,  Oreopanax discolor,  Oreopanax glabrifolium,  Oreopanax incisus,  Oreopanax ruizianum,  Oreopanax tolimanus

famiia Aspleniaceae

Género  Asplenium
Especie  Asplenium theciferum,  Asplenium triphyllum

familia Asteraceae

Género  Achyrocline,  Ageratina,  Asteraceae,  Baccharis,  Conyza,  Diplostephium,  Eupatorium,  Gynoxys,  Hieracium,  Hypochaeris,  Jungia,  Munnozia,  Pentacalia,  Taraxacum,  Verbesina
Especie  Achyrocline satureioides,  Aequatorium jamesonii,  Aequatorium polygonoides,  Aequatorium tatamanum,  Ageratina glyptophlebia,  Ageratina tinifolia,  Baccharis buxifolia,  Baccharis caldasiana,  Baccharis genistelloides,  Baccharis latifolia,  Baccharis prunifolia,  Baccharis rupicola,  Baccharis tricuneata,  Baccharis vacciniifolia,  Bidens andicola,  Diplostephium alveolatum,  Diplostephium micradenium,  Diplostephium revolutum,  Diplostephium schultzii,  Diplostephium tolimense,  Diplostephium violaceum,  Espeletia hartwegiana,  Gamochaeta americana,  Gynoxys buxifolia,  Gynoxys lehmannii,  Gynoxys pendula,  Gynoxys tolimensis,  Hieracium avilae,  Hipochaeris radicata,  Mutisia clematis,  Oritrophium peruvianum,  Pentacalia vaccinioides,  Pentacalia andicola,  Pentacalia sylvicola,  Pentacalia vaccinioides,  Senecio formosus,  Senecio repens,  Taraxacum campylodes,  Taraxacum officinale,  Werneria pygmaea,  Xenophyllum crassum

Balanophoraceae

Especie  Corynaea sphaerica

familia Begoniaceae

Género  Begonia
Especie  Begonia ferruginea,  Begonia umbellata,  Begonia urticae

familia Berberidaceae

Especie  Berberis dumaniana,  Berberis goudotii,  Berberis quindiuensis

familia Blechnaceae

Género  Blechnum
Especie  Blechnum arborescens,  Blechnum cordatum,  Blechnum loxense

familia Brassicaceae

Especie  Cardamine flexuosa

familia Bromeliaceae

Género  Aechmaea,  Bromelia,  Greigia,  Guzmania,  Puya
Especie  Greigia columbiana,  Racinaea penlandii,  Tillandsia complanata

familia Brunelliaceae

Especie  Brunellia

familia Calceolariaceae 

Especie  Calceolaria,  Calceolaria fruticosa,  Calceolaria microbefaria

familia Campanulaceae

Especie  Centropogon ferrugineus,  Centropogon hirsutus,  Siphocampylus mirabilis

familia Caryophyllaceae

Género  Cerastium
Especie  Cerastium mollissimum,  Cerastium subspicatum

familia Chloranthaceae

Género  Hedyosmum
Especie  Hedyosmum racemosum

familia Clethraceae

Género  Clethra

familia Convolvulaceae

Género  Convolvulaceae

familia Coriariaceae

Género  Coriaria
Especie  Coriaria ruscifolia

familia Cucurbitaceae

Género  Cucurbitacea

familia Cunoniaceae

Género  Weinmannia
Especie  Weinmannia balbisiana,  Weinmannia mariquitae,  Weinmannia rollottii,  Weinmannia tomentosa

familia Cyatheaceae

Género  Cyathea

familia Cyperaceae

Género  Oreobolus
Especie  Carex bonplandii,  Rhynchospora caucana,  Swallenochloa tessellata

Dennstaedtiaceae

Especie  Histiopteris incisa

famila Dryopteridaceae

Género  Elaphoglossum
Especie  Elaphoglossum engelii,  Elaphoglossum funckii

Elaeocarpaceae

Especie  Vallea stipularis

familia Equisetaceae

Género  Equisetum
Especie  Equisetum bogotense

familia Ericaceae

Género  Gaultheria,  Plutarchia
Especie  Cavendishia bracteata,  Disterigma acuminatum,  Disterigma codonanthum,  Disterigma empetrifolium,  Gaultheria erecta,  Gaultheria foliolosa,  Macleania rupestris,  Myrsine dependens,  Pernettya prostrata,  Plutarchia monantha,  Themistoclesia mucronata,  Vaccinium floribundum,  Gaultheria anastomosans

familia Escalloniaceae

Especie  Escallonia myrtilloides

Euphorbiaceae

Género  Euphorbiaceae

Fabaceae

Especie  Lupinus microphyllus,  Lupinus alopecuroides

familia Gentianaceae

Especie  Gentiana sedifolia

Geraniaceae

Especie  Geranium sibbaldioides,  Geranium diffusum

Grossulariaceae

Especie  Ribes leptostachyum 

familia Gunneraceae

Especie  Gunnera magellanica

familia Hymenophyllaceae

Especie  Hymenophyllum elegantulum

familia Hypericaceae

Género  Hypericum
Especie  Hypericum juniperinum,  Hypericum lancifolium,  Hypericum lancioides,  Hypericum laricifolium

Iridaceae

Especie  Sisyrinchium convolutum,  Xyris subulata

Isoetaceae

Especie  Isoetes colombiana

familia Lamiaceae

Género  Vitex
Especie  Clinopodium brownei,  Satureja nubigena

familia Loranthaceae

Especie  Aetanthus nodosus,  Gaiadendron punctatum,  Loranthaceae,  Tristerix longebracteatus

familia Lycopodiaceae

Género  Huperzia
Especie  Huperzia crassa,  Huperzia hohenackeri,  Lycopodiella cernua,  Lycopodium clavatum

Malvaceae

Género  Acaulimalva

familia Melastomataceae

Especie  Axinaea,  Axinaea colombiana,  Brachyotum,  Brachyotum lindenii,  Brachyotum strigosum,  Bucquetia glutinosa,  Melastomataceae,  Miconia,  Miconia,  Miconia bracteolata,  Miconia chionophila,  Miconia chlorocarpa,  Miconia ferruginea,  Miconia guianensis,  Miconia jahnii,  Miconia ligustrina,  Miconia orcheotoma,  Miconia salicifolia,  Miconia tinifolia,  Tibouchina grossa

familia Myrsinaceae

Género  Ardisia,  Myrsine
Especie  Myrsine coriacea,  Myrsine dependens

Nyctaginaceae

Especie  Colignonia ovalifolia

familia Onagraceae

Género  Fuchsia
Especie  Fuchsia corollata,  Fuchsia hartwegii,  Fuchsia magellanica,  Fuchsia petiolaris

familia Orchidaceae

Género  Elleanthus,  Lepanthes,  Masdevallia,  Pleurothallis,  Stelis
Especie  Cranichis diphylla,  Cyrtochilum auropurpureum,  Cyrtochilum pardinum,  Elleanthus aurantiacus,  Elleanthus graminifolius,  Epidendrum,  Epidendrum,  Epidendrum megalospathum,  Oncidium cultratum,  Pachyphyllum crystallinum,  Pleurothallis coriacardia,  Telipogon alberti

familia Orobanchaceae

Especie  Bartsia santolinifolia,  Castilleja fissifolia,  Clinopodium brownei

familia Oxalidaceae

Especie  Oxalis integra

familia Passifloraceae

Especie  Passiflora mixta

familia Piperaceae

Género  Peperomia
Especie  Peperomia verticillata

familia Plantaginaceae

Especie  Plantago lanceolata,  Plantago linearis,  Plantago rigida

familia Poaceae

Género  Aegopogon,  Aulonemia,  Cortaderia
Especie  Agrostis breviculmis,  Agrostis foliata,  Anthoxanthum odoratum,  Bromus lanatus,  Calamagrostis effusa,  Calamagrostis intermedia,  Chusquea scandens,  Cortaderia columbiana,  Cortaderia nitida,  Holcus lanatus,  Swallenochloa tessellata

familia Polygalaceae

Especie  Monnina aestuans,  Monnina involuta,  Monnina revoluta

Polygonaceae

Género  Polygonum
Especie  Rumex acetosella

familia Polypodiaceae

Género  Serpocaulon
Especie  Campyloneurum angustifolium,  Campyloneurum angustipaleatum,  Melpomene assurgens,  Pleopeltis macrocarpa,  Polypodium monosorum

familia Primulaceae

Género  Geissanthus
Especie  Geissanthus serrulatus

familia Pteridaceae

Género  Eriosorus,  Jamesonia
Especie  Jamesonia bogotensis,  Jamesonia goudotii,  Jamesonia pulchra

familia Ranunculaceae

Género  Ranunculus
Especie  Ranunculus peruvianus,  Ranunculus praemorsus

familia Rosaceae

Género  Acaena,  Aphanes,  Hesperomeles,  Lachemilla,  Prunus,  Rubus
Especie  Acaena elongata,  Azorella multifida,  Escallonia myrtilloides,  Hesperomeles ferruginea,  Hesperomeles heterophylla,  Hesperomeles lanuginosa,  Hesperomeles obtusifolium,  Hesperomeles pernettyoides,  Lachemilla aphanoides,  Lachemilla fulvescens,  Lachemilla nivalis,  Lachemilla orbiculata,  Polylepis sericea,  Rubus compactus,  Rubus glaucus,  Rubus guyanensis

familia Rubiaceae

Especie  Nertera granadensis,  Galium hypocarpium

familia Santalaceae

Especie  Dendrophthora clavata,  Corynaea sphaerica

familia Scrophulariaceae

Especie  Bartsia santolinifolia,  Buddleja bullata,  Buddleja incana

familia Smilacaceae

Género  Smilax

familia Solanaceae

Género  Cestrum,  Sessea,  Solanum
Especie  Saracha quitensis,  Sessea crassivenosa,  Solanum caripense,  Solanum laurifolium

familia Symplocaceae

Género  Symplocos

familia Tropaeolaceae

Especie  Tropaeolum tuberosum

Urticaceae

Género  Pilea

Winteraceae

Especie  Drimys granadensis

familia Woodsiaceae

Especie  Cystopteris fragilis

Xyridaceae

Especie  Xyris subulata

clase Amphibia, orden Anura, familia bufonidae

Especie  Osornophryne percrassa

clase Amphibia, orden Anura, familia Craugastoridae

Especie  Pristimantis leptolophus,  Pristimantis peraticus,  Pristimantis racemus,  Pristimantis simoterus,  Pristimantis uranobates

Clase aves, familia Scolopacidae

Especie  Gallinago nobilis,  Gallinago jamesoni

Clase aves, familia Emberizidae

Especie  Atlapetes pallidinucha

Clase aves, familia Thraupidae

Especie  Anisognathus igniventris,  Tangara vassorii

Clase aves, familia Trochilidae

Especie  Metallura tyrianthina,  Aglaeactis cupripennis

Clase aves, familia Troglodytidae

Especie  Cistothorus platensis

Clase mamiferos, familia Caenolestidae

Especie  Caenolestes fuliginosus

Clase mamiferos, familia Cricetidae

Especie  Akodon affinis,  Microryzomys,  Microryzomys minutus,  Thomasomys,  Thomasomys aureus,  Thomasomys cinereiventer,  Thomasomys laniger,  Thomasomys niveipes

Clase mamiferos, familia Leporidae

Especie  Sylvilagus brasiliensis

Clase mamiferos, familia Phyllostomidae

Género  Anoura
Especie  Anoura geoffroyi,  Sturnira bidens,  Sturnira bidens,  Sturnira erythromos

Clase mamiferos, familia Soricidae

Especie  Cryptotis thomasi

Clase mamiferos, familia Vespertilionidae

Género  Myotis
Especie  Eptesicus andinus,  Histiotus montanus,  Lasiurus blossevillii

clase Arachnida, familia Araeae

Familia  Amaurobiidae,  Anapidae,  Anyphaenidae,  Araneus,  Caponiidae,  Corinnidae,  Dipluridae,  Gnaphosidae,  Linyphiidae,  Lycosidae,  Lygromma,  Mimetidae,  Ochyrocera,  Ochyroceratidae,  Ocrepeira,  Oonopidae,  Palpimanidae,  Paratropididae,  Philodromidae,  Pholcidae,  Pisauridae,  Pomboa,  Salticidae,  Tetragnathidae,  Theridiidae,  Zodariidae

Clase insecta, orden Coleoptera

Familia  Cantharidae,  Carabidae,  Carabidae,  Chrysomelidae,  Chrysomelidae,  Coccinellidae,  Curculionidae,  Dermestidae,  Elateridae,  Erotylidae,  Histeridae,  Latridiidae,  Lycidae,  Lycidae,  Meloidae,  Nitidulidae,  Phengodidae,  Ptiliidae,  Ptilodactylidae,  Pyrochroidae,  Scarabaeidae,  Scirtidae,  Silphidae,  Staphylinidae,  Tenebrionidae

Cobertura Temporal

Fecha Inicial / Fecha Final 2014-03-01 / 2014-12-04

Datos del Proyecto

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Título Fondo Adaptación_Insumos para la Delimitación de Ecosistemas Estratégicos: Páramos y Humedales
Fuentes de Financiación Convenio de Cooperación No. 13-13-014-360CE entre IAvH y WCS
Descripción del Área de Estudio El estudio se llevó a cabo en bosques andinos y páramos de la cordillera Central, en el complejo de páramos Los Nevados, en los departamentos de Caldas, Risaralda y Tolima, entre los meses de Marzo y julio de 2014.
Descripción del Diseño El objetivo principal consistía en elaborar estudios bióticos en jurisdicción de las corporaciones CARDER, CORPOCALDAS y CORTOLIMA, orientado a aportar información biológica para la identificación de la franja de transición Páramo-Bosque en Colombia, específicamente en el complejo de páramos Los Nevados, a través del estudio de la diversidad y distribución de aves, anfibios, pequeños mamíferos, plantas y edafofauna epigea (arañas y coleópteros). Esta información biológica es un insumo importante para establecer la franja de transición Bosque-Páramo, aporte fundamental para lograr la la delimitación de los páramos en Colombia.

Personas asociadas al proyecto:

Proveedor de Contenido
Yadi Toro Marín

Métodos de Muestreo

El registro de los datos biológicos se llevó a cabo siguiendo las propuestas metodológicas de los componentes de vegetación y fauna para los estudios bióticos, para la identificación y delimitación de los complejos de páramos a escala 1:25.000, elaborado por el Instituto Alexander von Humboldt (2013). Se establecieron cuatro transectos en el departamento de Caldas, uno en el departamento de Risaralda y cinco en el departamento del Tolima, en los siguientes municipios: Manizales, Marulanda, Villamaría, Santa Rosa de Cabal, Anzoátegui, Murillo, Herveo, Ibagué y Santa Isabel. Los muestreos de vertebrados se llevaron a cabo en las localidades de la Reserva Forestal Protectora Río Blanco, en Manizales, en Santa Rosa de Cabal, Anzoátegui y Murillo. Para plantas y artrópodos epigeos los muestreos se realizaron en todos los transectos. En cada una de las estaciones dispuestas a lo largo de los transectos altitudinales se emplearon: redes de niebla y puntos de conteo para aves; redes de niebla y trampas de caída para pequeños mamíferos; transectos de muestreo de banda fija y caminatas aleatorias para anfibios, trampas de caída y captura directa para artrópodos epigeos y parcelas para el estudio de plantas.

Área de Estudio El área de estudio se ubicó en el complejo de páramos Los Nevados, en bosques andinos y páramos de la cordillera Central, en jurisdicción de los departamentos de Caldas, Risaralda y Tolima. La fase de registro de información en campo se llevó a cabo entre los meses de marzo y julio de 2014. En Caldas se realizaron muestreos en el municipio de Manizales, Marulanda y Villamaría. En Manizales, la localidad particular del muestreo fue la vereda El Desquite, finca Martinica, Reserva Forestal Protectora Río Blanco, entre 3453 y 3973m. en Marulanda, el estudio se realizó en la Vereda El Páramo, sector El Vergel, entre 3414 y 3730m. En Villamaría, el área de estudio se ubicó en la Vereda El Pindo, sector Playa Larga, entre 3430 y 4023m. En Risaralda, se muestreó en el municipio de Santa Rosa de Cabal, en la Vereda La Linda, Sector Cortaderal, Hacienda La Sierra entre 3620 y 3986m. En Tolima, se llevaron a cabo muestreos en los municipios de Anzoátegui, Herveo, Ibagué, Murillo y Santa Isabel. En Anzoátegui, la localidad de estudio fue el Corregimiento Juntas, Vereda El Vergel, Hacienda Diostán,entre 3503 y 3847m. En Herveo, el área de estudio se ubicó en el sector de Letras, Finca La Romelia, entre 3508 y 3898m. En Ibagué, el muestreo se realizó en la vereda La Primavera, entre 3607 y 3901m. En Murillo, el área de estudio fue el Corregimiento El Bosque, Vereda La Cabaña, Finca El Recreo, entre 3480 y 4005m. En Santa Isabel, el área se ubicó en la vereda Totarito, Finca El Águila, entre 3557 y 3960m.
Control de Calidad En la caracterización de cada grupo se emplearon métodos estandarizados siguiendo protocolos suministrados por el IAvH. Se contó con la retroalimentación de los investigadores que participaron en los muestreos, también con el acompañamiento y asesoría por parte de profesionales calificados de WCS y del Instituto Alexander von Humboldt. Para todos los grupos, la información recopilada se almacenó en hojas de cálculo elaboradas en Excel y en las plantillas para la base de datos de I2D, posteriormente se enviaron bases de datos, muestras biológicas e informes al Instituto Alexander von Humboldt.

Descripción de la metodología paso a paso:

  1. Mamíferos Para la captura de pequeños mamíferos no voladores (pequeños roedores, musarañas y zarigüeyas) se utilizaron 40 trampas plegables tipo Sherman dispuestas en un transecto lineal y ubicadas a nivel del suelo, separadas 10 m entre sí, en hojarasca, matorrales, grietas, interior del bosque y caminaderos. Como cebo atrayente se usó una mezcla de avena, maní, mantequilla y esencias de banano, con revisión y recambio cada 24 horas, por un período de tres días. Para la captura de murciélagos se utilizaron ocho redes de niebla de 12 x 2.5 m (ojo de malla de 16 mm), siguiendo las recomendaciones de Patterson et al. (2006), Simmons & Voss (1998) y Tirira (1998). El esfuerzo de muestreo fue de cinco horas por estación; las redes se mantuvieron abiertas entre las 18:00 y las 23:00 horas, con revisión cada 30 minutos. Para cada individuo capturado se registró la fecha y hora de captura, especie, sexo, condición reproductiva y morfometría: masa corporal (peso), longitud total, longitud de la cola, longitud de la pata, longitud de la oreja, longitud antebrazo y adicionalmente longitud de trago y longitud de la hoja nasal en murciélagos. Para la toma de estos datos se usaron pesolas de 30, 100 y 300 gr, también se usaron calibradores manuales.
  2. Aves: se emplearon dos métodos: detección visual y captura con redes. Como método de detección se utilizó el conteo por puntos de banda fija, ubicando seis puntos de conteo en cada estación, con 50 m de radio, separados de 100 a 150 m entre sí. En cada punto de conteo se realizaron 15 minutos de observación, con réplica al día siguiente, con un esfuerzo de muestreo de 24 horas por transecto .En cada estación se dispusieron ocho redes de niebla de 12 x 2.5 m (captura) en dos grupos de cuatro redes, separados aproximadamente 100 m entre sí. Las redes estuvieron expuestas desde las 5:30 a las 10:30 horas y desde las 16:00 a las 18:30 horas. Para cada individuo capturado se registró la fecha y hora de captura, especie, sexo, condición reproductiva y morfometría: masa corporal (peso), longitud total y longitud del culmen expuesto, longitud total del ala, envergadura, distancia entre plumas primarias y secundarias, longitud y graduación de la cola, altura y ancho del pico entre comisuras, longitud del tarso y longitud del hallux. Para la toma de estos datos se usaron pesolas de 30, 100 y 300 gr, también se usaron calibradores manuales.
  3. Plantas: En cada transecto se definieron entre cinco y siete estaciones de muestreo. En cada transecto altitudinal se establecieron tres parcelas de vegetación por estación de muestreo. El área de las parcelas varió así: en coberturas con dosel continuo parcelas de 100 m2, en coberturas con dosel discontinuo o ausente se levantaron parcelas de 50 m2. En el bosque altoandino y arbustales de páramo se tomaron los siguientes datos para las morfoespecies con un diámetro basal ≥ 2 cm a 30 cm del suelo: altura total, altura a la primera ramificación (para árboles), diámetro del tallo a 30 cm de altura, cobertura de copa, hábito (árbol, arbusto, roseta, hierba, epífita, etc.) y estado fenológico. Las áreas basales se calcularon a partir del diámetro de cada ramificación registrada (Villarreal et al.2006). La cobertura de copa se calculó a partir de las medidas de los diámetros mayor y menor, tomando como referencia el área proyectada de la copa de cada individuo sobre el suelo, En los herbazales, para el caso de macollas y otras especies cuya individualización fue difícil, se registraron las siguientes variables: altura total, cobertura de copa, porcentaje de cobertura, hábito y estado fenológico. Para cada estación de muestreo se elaboraron perfiles verticales de la vegetación registrada en el transecto con base en los levantamientos florísticos realizados; para ello se ubicó un punto de coordenada (x, y). Las muestras colectadas fueron secadas y procesadas en el Herbario CUVC de la Universidad del Valle, posteriormente fueron enviadas a la colección FMB del Instituto Alexander von Humboldt.
  4. Artrópodos (coleópteros y arañas): En cada transecto se definieron entre cinco y siete estaciones de muestreo, desde el límite superior al inferior. En cada estación se dispusieron dos transectos de 40 m, distanciados 50 m entre sí. En cada transecto se instalaron cinco trampas de caída. (separadas 10 m), elaboradas con recipientes plásticos de 10 cm de diámetro y medio litro de capacidad, enterrados ras del suelo; a cada trampa se adicionó una mezcla de 300 ml de agua y una gota de jabón (Villarreal et al. 2006). Se realizó captura manual durante una hora diaria en sustratos como la hojarasca, piedras, troncos, necromasa de frailejones y en la vegetación. Las muestras se almacenaron en bolsas de cierre hermético y se etiquetaron con un código referenciando la localidad, estación, transecto, número de trampa y fecha de captura. Posteriormente, los especímenes colectados se depositaron en frascos plásticos con etanol al 80% y se enviaron a colecciones biológicas del Instituto Alexander von Humboldt.
  5. Anfibios: En la Reserva Forestal Protectora Río Blanco y Anzoátegui, se usaron recorridos en transectos de banda fija a lo largo de la franja altitudinal en cada una de las estaciones. El uso de caminatas aleatorias se empleó en Santa Rosa de Cabal y Murillo. En los transectos de banda fija, se establecieron en cada estación seis transectos longitudinales de 100 x 2 m, separados por una distancia mínima de 50 m entre sí. el recorrido en cada estación se realizó en distancias no mayores a 270 metros. En ambos casos se realizaron caminatas diurnas y nocturnas, haciendo búsqueda visual y exploraciones en todos los microhábitats. Se usó una herramienta de labranza para remover y buscar especímenes en necromasa de frailejones y puyas. Se tomaron datos morfométricos como: peso, longitud rostro cloaca, ancho de la cabeza, ancho de la boca, longitud del antebrazo, longitud de la tibia, longitud del fémur, longitud del pie, grosor de la piel del dorso, coloración, uso de hábitat y sexo. Para la toma de estos datos se usaron pesolas de 30, 100 y 300 gr, también se usaron calibradores manuales.

Datos de la Colección

Nombre de la Colección Herbario Federico Meden Bogotá, Colección de anfibios, entomológica y mamíferos del Instituto Alexander von Humboldt, Universidad ICESI, Universidad del Valle
Identificador de la Colección FMB, IAvH-Am, IAvH-E, IAvH-M, ICESI, CUVC
Identificador de la Colección Parental n/a
Métodos de preservación de los ejemplares Alcohol

Referencias Bibliográficas

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  8. Villarreal.H.. M. Álvarez. S. Córdoba. F. Escobar. G. Fagua. F. Gast. H. Mendoza. M. Ospina & A. M. Umaña. Segunda edición. 2006. Manual de métodos para el desarrollo de inventarios de biodiversidad. Programa de Inventarios de Biodiversidad. Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt. Bogotá. Colombia. 236 pp.

Metadatos Adicionales

El presente recurso tiene información restringida temporalmente. Asociado a este recurso existen conjuntos de datos de rasgos y tejidos.

Propósito Aunar esfuerzos técnicos, científicos, administrativos y financieros con el fin de elaborar los estudios bióticos a escala 1: 25000 del Complejo de Páramos Los Nevados en jurisdicción de CORPOCALDAS, CARDER y CORTOLIMA, para identificar la franja de transición páramo-bosque en el Complejo de Páramos “Los Nevados”.
Identificadores Alternativos doi:10.15472/rs81k8
6d4b3e65-5922-46bd-a9b5-9c80b19a28d0
http://ipt.biodiversidad.co/iavh/resource?r=rrbb_nevados_faunaflora_2015