Estudios bióticos: Plantas, anfibios, mamíferos, aves y edafofauna epígea (coleópteros y arácnidos), en el complejo de páramo Los Nevados

Descripción

Registros

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Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt (2015). Estudios bióticos: Plantas, edafofauna epígea, anfibios y aves en los complejo de páramo Los Nevados. 13750 registros, aportados por: León, O. (Contacto del recurso), Toro-Marin, Y. (Creador del recurso, Proveedor de metadatos). Versión 2.1. http://doi.org/10.15472/rs81k8

Derechos

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El publicador y propietario de los derechos de este trabajo es Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt. This work is licensed under a Creative Commons Attribution Non Commercial (CC-BY-NC) 4.0 License.

Registro GBIF

Este recurso ha sido registrado en GBIF con el siguiente UUID: 6d4b3e65-5922-46bd-a9b5-9c80b19a28d0.  Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt publica este recurso, y está registrado en GBIF como un publicador de datos avalado por Colombian Biodiversity Information System.

Palabras clave

metadatos; levantamietos de informacion; plantas; mamíferos; aves; anfibios; Caldas; Risaralda; Tolima; wcs.; Specimen; Occurrence

Datos externos

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Contactos

Cobertura geográfica

Los datos proceden de la cordillera central, complejo los nevados, municipios de Marulanda al Norte, Anzoátegui al Sur, Anzoátegui y Líbano al Este y Manizales y Villamaría al Oeste.

Cobertura taxonómica

familia Actinidaceae

familia Adoxaceae

familia Alstroemeriaceae

familia Apiaceae

familia Apocynaceae

familia Aquifoliaceae

familia Araceae

familia Araliaceae

famiia Aspleniaceae

familia Asteraceae

Balanophoraceae

familia Begoniaceae

familia Berberidaceae

familia Blechnaceae

familia Brassicaceae

familia Bromeliaceae

familia Brunelliaceae

familia Calceolariaceae 

familia Campanulaceae

familia Caryophyllaceae

familia Chloranthaceae

familia Clethraceae

familia Convolvulaceae

familia Coriariaceae

familia Cucurbitaceae

familia Cunoniaceae

familia Cyatheaceae

familia Cyperaceae

Dennstaedtiaceae

famila Dryopteridaceae

Elaeocarpaceae

familia Equisetaceae

familia Ericaceae

familia Escalloniaceae

Euphorbiaceae

Fabaceae

familia Gentianaceae

Geraniaceae

Grossulariaceae

familia Gunneraceae

familia Hymenophyllaceae

familia Hypericaceae

Iridaceae

Isoetaceae

familia Lamiaceae

familia Loranthaceae

familia Lycopodiaceae

Malvaceae

familia Melastomataceae

familia Myrsinaceae

Nyctaginaceae

familia Onagraceae

familia Orchidaceae

familia Orobanchaceae

familia Oxalidaceae

familia Passifloraceae

familia Piperaceae

familia Plantaginaceae

familia Poaceae

familia Polygalaceae

Polygonaceae

familia Polypodiaceae

familia Primulaceae

familia Pteridaceae

familia Ranunculaceae

familia Rosaceae

familia Rubiaceae

familia Santalaceae

familia Scrophulariaceae

familia Smilacaceae

familia Solanaceae

familia Symplocaceae

familia Tropaeolaceae

Urticaceae

Winteraceae

familia Woodsiaceae

Xyridaceae

clase Amphibia, orden Anura, familia bufonidae

clase Amphibia, orden Anura, familia Craugastoridae

Clase aves, familia Scolopacidae

Clase aves, familia Emberizidae

Clase aves, familia Thraupidae

Clase aves, familia Trochilidae

Clase aves, familia Troglodytidae

Clase mamiferos, familia Caenolestidae

Clase mamiferos, familia Cricetidae

Clase mamiferos, familia Leporidae

Clase mamiferos, familia Phyllostomidae

Clase mamiferos, familia Soricidae

Clase mamiferos, familia Vespertilionidae

clase Arachnida, familia Araeae

Clase insecta, orden Coleoptera

Cobertura temporal

Datos del proyecto

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Personas asociadas al proyecto:

Métodos de muestreo

El registro de los datos biológicos se llevó a cabo siguiendo las propuestas metodológicas de los componentes de vegetación y fauna para los estudios bióticos, para la identificación y delimitación de los complejos de páramos a escala 1:25.000, elaborado por el Instituto Alexander von Humboldt (2013). Se establecieron cuatro transectos en el departamento de Caldas, uno en el departamento de Risaralda y cinco en el departamento del Tolima, en los siguientes municipios: Manizales, Marulanda, Villamaría, Santa Rosa de Cabal, Anzoátegui, Murillo, Herveo, Ibagué y Santa Isabel. Los muestreos de vertebrados se llevaron a cabo en las localidades de la Reserva Forestal Protectora Río Blanco, en Manizales, en Santa Rosa de Cabal, Anzoátegui y Murillo. Para plantas y artrópodos epigeos los muestreos se realizaron en todos los transectos. En cada una de las estaciones dispuestas a lo largo de los transectos altitudinales se emplearon: redes de niebla y puntos de conteo para aves; redes de niebla y trampas de caída para pequeños mamíferos; transectos de muestreo de banda fija y caminatas aleatorias para anfibios, trampas de caída y captura directa para artrópodos epigeos y parcelas para el estudio de plantas.

Descripción de la metodología paso a paso:

1. Mamíferos Para la captura de pequeños mamíferos no voladores (pequeños roedores, musarañas y zarigüeyas) se utilizaron 40 trampas plegables tipo Sherman dispuestas en un transecto lineal y ubicadas a nivel del suelo, separadas 10 m entre sí, en hojarasca, matorrales, grietas, interior del bosque y caminaderos. Como cebo atrayente se usó una mezcla de avena, maní, mantequilla y esencias de banano, con revisión y recambio cada 24 horas, por un período de tres días. Para la captura de murciélagos se utilizaron ocho redes de niebla de 12 x 2.5 m (ojo de malla de 16 mm), siguiendo las recomendaciones de Patterson et al. (2006), Simmons & Voss (1998) y Tirira (1998). El esfuerzo de muestreo fue de cinco horas por estación; las redes se mantuvieron abiertas entre las 18:00 y las 23:00 horas, con revisión cada 30 minutos. Para cada individuo capturado se registró la fecha y hora de captura, especie, sexo, condición reproductiva y morfometría: masa corporal (peso), longitud total, longitud de la cola, longitud de la pata, longitud de la oreja, longitud antebrazo y adicionalmente longitud de trago y longitud de la hoja nasal en murciélagos. Para la toma de estos datos se usaron pesolas de 30, 100 y 300 gr, también se usaron calibradores manuales.
2. Aves: se emplearon dos métodos: detección visual y captura con redes. Como método de detección se utilizó el conteo por puntos de banda fija, ubicando seis puntos de conteo en cada estación, con 50 m de radio, separados de 100 a 150 m entre sí. En cada punto de conteo se realizaron 15 minutos de observación, con réplica al día siguiente, con un esfuerzo de muestreo de 24 horas por transecto .En cada estación se dispusieron ocho redes de niebla de 12 x 2.5 m (captura) en dos grupos de cuatro redes, separados aproximadamente 100 m entre sí. Las redes estuvieron expuestas desde las 5:30 a las 10:30 horas y desde las 16:00 a las 18:30 horas. Para cada individuo capturado se registró la fecha y hora de captura, especie, sexo, condición reproductiva y morfometría: masa corporal (peso), longitud total y longitud del culmen expuesto, longitud total del ala, envergadura, distancia entre plumas primarias y secundarias, longitud y graduación de la cola, altura y ancho del pico entre comisuras, longitud del tarso y longitud del hallux. Para la toma de estos datos se usaron pesolas de 30, 100 y 300 gr, también se usaron calibradores manuales.
3. Plantas: En cada transecto se definieron entre cinco y siete estaciones de muestreo. En cada transecto altitudinal se establecieron tres parcelas de vegetación por estación de muestreo. El área de las parcelas varió así: en coberturas con dosel continuo parcelas de 100 m2, en coberturas con dosel discontinuo o ausente se levantaron parcelas de 50 m2. En el bosque altoandino y arbustales de páramo se tomaron los siguientes datos para las morfoespecies con un diámetro basal ≥ 2 cm a 30 cm del suelo: altura total, altura a la primera ramificación (para árboles), diámetro del tallo a 30 cm de altura, cobertura de copa, hábito (árbol, arbusto, roseta, hierba, epífita, etc.) y estado fenológico. Las áreas basales se calcularon a partir del diámetro de cada ramificación registrada (Villarreal et al.2006). La cobertura de copa se calculó a partir de las medidas de los diámetros mayor y menor, tomando como referencia el área proyectada de la copa de cada individuo sobre el suelo, En los herbazales, para el caso de macollas y otras especies cuya individualización fue difícil, se registraron las siguientes variables: altura total, cobertura de copa, porcentaje de cobertura, hábito y estado fenológico. Para cada estación de muestreo se elaboraron perfiles verticales de la vegetación registrada en el transecto con base en los levantamientos florísticos realizados; para ello se ubicó un punto de coordenada (x, y). Las muestras colectadas fueron secadas y procesadas en el Herbario CUVC de la Universidad del Valle, posteriormente fueron enviadas a la colección FMB del Instituto Alexander von Humboldt.
4. Artrópodos (coleópteros y arañas): En cada transecto se definieron entre cinco y siete estaciones de muestreo, desde el límite superior al inferior. En cada estación se dispusieron dos transectos de 40 m, distanciados 50 m entre sí. En cada transecto se instalaron cinco trampas de caída. (separadas 10 m), elaboradas con recipientes plásticos de 10 cm de diámetro y medio litro de capacidad, enterrados ras del suelo; a cada trampa se adicionó una mezcla de 300 ml de agua y una gota de jabón (Villarreal et al. 2006). Se realizó captura manual durante una hora diaria en sustratos como la hojarasca, piedras, troncos, necromasa de frailejones y en la vegetación. Las muestras se almacenaron en bolsas de cierre hermético y se etiquetaron con un código referenciando la localidad, estación, transecto, número de trampa y fecha de captura. Posteriormente, los especímenes colectados se depositaron en frascos plásticos con etanol al 80% y se enviaron a colecciones biológicas del Instituto Alexander von Humboldt.
5. Anfibios: En la Reserva Forestal Protectora Río Blanco y Anzoátegui, se usaron recorridos en transectos de banda fija a lo largo de la franja altitudinal en cada una de las estaciones. El uso de caminatas aleatorias se empleó en Santa Rosa de Cabal y Murillo. En los transectos de banda fija, se establecieron en cada estación seis transectos longitudinales de 100 x 2 m, separados por una distancia mínima de 50 m entre sí. el recorrido en cada estación se realizó en distancias no mayores a 270 metros. En ambos casos se realizaron caminatas diurnas y nocturnas, haciendo búsqueda visual y exploraciones en todos los microhábitats. Se usó una herramienta de labranza para remover y buscar especímenes en necromasa de frailejones y puyas. Se tomaron datos morfométricos como: peso, longitud rostro cloaca, ancho de la cabeza, ancho de la boca, longitud del antebrazo, longitud de la tibia, longitud del fémur, longitud del pie, grosor de la piel del dorso, coloración, uso de hábitat y sexo. Para la toma de estos datos se usaron pesolas de 30, 100 y 300 gr, también se usaron calibradores manuales.

Datos de la colección

Referencias bibliográficas

1. Garnier, E. et al. 2007. Assessing the effects of land-use change on plant traits, communities and ecosystem functioning in grasslands: A standardized methodology and lessons from an application to 11 european sites. Annals of Botany 99: 967-985.
2. Flórez, D. E. & H. Sánchez (1995) La diversidad de los arácnidos en Colombia. Aproximación inicial pp: 327-372 En: Rangel O. (ed) Colombia, Diversidad Biótica I., Instituto de Ciencias Naturales, Inderena, FES.
3. Frost, D. R. 2014. Amphibian Species of the World: an Online Reference. Version 6.0. American Museum of Natural History, New York, USA. Disponible en: http://research.amnh.org/herpetology/amphibia/index.html(Acceso: Septiembre 2014).
4. Cornelissen, J. et al. 2003. A handbook of protocols for standardised and easy measurement of plant functional traits worldwide. Australian Journal of Botany 51: 335-380.
5. Tirira. D. G. 1998. Historia Natural de los murciélagos neotropicales. 31–56 pp. En: Biología.sistemática y conservación de los mamíferos del Ecuador (D. G. Tirira. Ed.). Museo de Zoología. Pontificia Universidad Católica del Ecuador. Publicación Especial 1. Quito.
6. Simmons. N. B. & R. S. Voss. 2007. Collection.preparation.and fixation of specimens and tissues. En: Ecological and behavioral methods for the study of bats. 2da Edición (T. H. Kunz and S. Parsons. Eds.). Johns Hopkins University Press.
7. Patterson, B., Stotz, D.F. & S. Solari. 2006. Biological Surveys and Inventories. In Manu. 3-12 pp. En: Mammals and Birds of the Manua Biosphere Reserve, Peru (Patterson, B., Stotz, D.F. & S. Solari. Eds.). Fieldiana: Zoology, New Zeries 110. Field Museum of Natural History.
8. Villarreal.H.. M. Álvarez. S. Córdoba. F. Escobar. G. Fagua. F. Gast. H. Mendoza. M. Ospina & A. M. Umaña. Segunda edición. 2006. Manual de métodos para el desarrollo de inventarios de biodiversidad. Programa de Inventarios de Biodiversidad. Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt. Bogotá. Colombia. 236 pp.

Metadatos adicionales