Estudios bióticos: Plantas, anfibios, mamíferos, aves y edafofauna epígea (coleópteros y arácnidos), en el complejo de páramo Los Nevados

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Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt (2015). Estudios bióticos: Plantas, edafofauna epígea, anfibios y aves en los complejo de páramo Los Nevados. 13750 registros, aportados por: León, O. (Contacto del recurso), Toro-Marin, Y. (Creador del recurso, Proveedor de metadatos). Versión 2.1. http://doi.org/10.15472/rs81k8

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El publicador y propietario de los derechos de este trabajo es Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt. This work is licensed under a Creative Commons Attribution Non Commercial (CC-BY-NC) 4.0 License.

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Este recurso ha sido registrado en GBIF con el siguiente UUID: 6d4b3e65-5922-46bd-a9b5-9c80b19a28d0.  Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt publica este recurso, y está registrado en GBIF como un publicador de datos avalado por Colombian Biodiversity Information System.

Palabras Clave

metadatos; levantamietos de informacion; plantas; mamíferos; aves; anfibios; Caldas; Risaralda; Tolima; wcs.; Specimen; Occurrence

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Estudios bióticos: Plantas, anfibios, mamíferos, aves y edafofauna epígea (coleópteros y arácnidos), en el complejo de páramo Los Nevados	http://i2d.humboldt.org.co/ceiba/resource.do?r=rrbb_nevados_faunaflora_2015 UTF-8 txt

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Cobertura Geográfica

Los datos proceden de la cordillera central, complejo los nevados, municipios de Marulanda al Norte, Anzoátegui al Sur, Anzoátegui y Líbano al Este y Manizales y Villamaría al Oeste.

Coordenadas límite	Latitud Mínima Longitud Mínima [4.623, -75.493], Latitud Máxima Longitud Máxima [5.25, -75.217]

Cobertura Taxonómica

familia Actinidaceae

Especie	Saurauia ursina

familia Adoxaceae

Especie	Viburnum undulatum

familia Alstroemeriaceae

Especie	Bomarea,  Bomarea carderi,  Bomarea hirsuta,  Bomarea linifolia,  Bomarea patinii,  Bomarea pauciflora

familia Apiaceae

Especie	Bowlesia,  Eryngium sp.,  Eryngium humboldtii,  Eryngium humile,  Myrrhidendron pennelli

familia Apocynaceae

Especie	Cynanchum

familia Aquifoliaceae

Especie	Ilex myricoides

familia Araceae

Especie	Anthurium oxybelium

familia Araliaceae

Género	Hydrocotyle,  Oreopanax,  Schefflera
Especie	Hydrocotyle humboldtii,  Oreopanax discolor,  Oreopanax glabrifolium,  Oreopanax incisus,  Oreopanax ruizianum,  Oreopanax tolimanus

famiia Aspleniaceae

Género	Asplenium
Especie	Asplenium theciferum,  Asplenium triphyllum

familia Asteraceae

Género

Achyrocline,  Ageratina,  Asteraceae,  Baccharis,  Conyza,  Diplostephium,  Eupatorium,  Gynoxys,  Hieracium,  Hypochaeris,  Jungia,  Munnozia,  Pentacalia,  Taraxacum,  Verbesina

Especie

Achyrocline satureioides,  Aequatorium jamesonii,  Aequatorium polygonoides,  Aequatorium tatamanum,  Ageratina glyptophlebia,  Ageratina tinifolia,  Baccharis buxifolia,  Baccharis caldasiana,  Baccharis genistelloides,  Baccharis latifolia,  Baccharis prunifolia,  Baccharis rupicola,  Baccharis tricuneata,  Baccharis vacciniifolia,  Bidens andicola,  Diplostephium alveolatum,  Diplostephium micradenium,  Diplostephium revolutum,  Diplostephium schultzii,  Diplostephium tolimense,  Diplostephium violaceum,  Espeletia hartwegiana,  Gamochaeta americana,  Gynoxys buxifolia,  Gynoxys lehmannii,  Gynoxys pendula,  Gynoxys tolimensis,  Hieracium avilae,  Hipochaeris radicata,  Mutisia clematis,  Oritrophium peruvianum,  Pentacalia vaccinioides,  Pentacalia andicola,  Pentacalia sylvicola,  Pentacalia vaccinioides,  Senecio formosus,  Senecio repens,  Taraxacum campylodes,  Taraxacum officinale,  Werneria pygmaea,  Xenophyllum crassum

Balanophoraceae

Especie	Corynaea sphaerica

familia Begoniaceae

Género	Begonia
Especie	Begonia ferruginea,  Begonia umbellata,  Begonia urticae

familia Berberidaceae

Especie	Berberis dumaniana,  Berberis goudotii,  Berberis quindiuensis

familia Blechnaceae

Género	Blechnum
Especie	Blechnum arborescens,  Blechnum cordatum,  Blechnum loxense

familia Brassicaceae

Especie	Cardamine flexuosa

familia Bromeliaceae

Género	Aechmaea,  Bromelia,  Greigia,  Guzmania,  Puya
Especie	Greigia columbiana,  Racinaea penlandii,  Tillandsia complanata

familia Brunelliaceae

Especie	Brunellia

familia Calceolariaceae 

Especie	Calceolaria,  Calceolaria fruticosa,  Calceolaria microbefaria

familia Campanulaceae

Especie	Centropogon ferrugineus,  Centropogon hirsutus,  Siphocampylus mirabilis

familia Caryophyllaceae

Género	Cerastium
Especie	Cerastium mollissimum,  Cerastium subspicatum

familia Chloranthaceae

Género	Hedyosmum
Especie	Hedyosmum racemosum

familia Clethraceae

Género	Clethra

familia Convolvulaceae

Género	Convolvulaceae

familia Coriariaceae

Género	Coriaria
Especie	Coriaria ruscifolia

familia Cucurbitaceae

Género	Cucurbitacea

familia Cunoniaceae

Género	Weinmannia
Especie	Weinmannia balbisiana,  Weinmannia mariquitae,  Weinmannia rollottii,  Weinmannia tomentosa

familia Cyatheaceae

Género	Cyathea

familia Cyperaceae

Género	Oreobolus
Especie	Carex bonplandii,  Rhynchospora caucana,  Swallenochloa tessellata

Dennstaedtiaceae

Especie	Histiopteris incisa

famila Dryopteridaceae

Género	Elaphoglossum
Especie	Elaphoglossum engelii,  Elaphoglossum funckii

Elaeocarpaceae

Especie	Vallea stipularis

familia Equisetaceae

Género	Equisetum
Especie	Equisetum bogotense

familia Ericaceae

Género	Gaultheria,  Plutarchia
Especie	Cavendishia bracteata,  Disterigma acuminatum,  Disterigma codonanthum,  Disterigma empetrifolium,  Gaultheria erecta,  Gaultheria foliolosa,  Macleania rupestris,  Myrsine dependens,  Pernettya prostrata,  Plutarchia monantha,  Themistoclesia mucronata,  Vaccinium floribundum,  Gaultheria anastomosans

familia Escalloniaceae

Especie	Escallonia myrtilloides

Euphorbiaceae

Género	Euphorbiaceae

Fabaceae

Especie	Lupinus microphyllus,  Lupinus alopecuroides

familia Gentianaceae

Especie	Gentiana sedifolia

Geraniaceae

Especie	Geranium sibbaldioides,  Geranium diffusum

Grossulariaceae

Especie	Ribes leptostachyum

familia Gunneraceae

Especie	Gunnera magellanica

familia Hymenophyllaceae

Especie	Hymenophyllum elegantulum

familia Hypericaceae

Género	Hypericum
Especie	Hypericum juniperinum,  Hypericum lancifolium,  Hypericum lancioides,  Hypericum laricifolium

Iridaceae

Especie	Sisyrinchium convolutum,  Xyris subulata

Isoetaceae

Especie	Isoetes colombiana

familia Lamiaceae

Género	Vitex
Especie	Clinopodium brownei,  Satureja nubigena

familia Loranthaceae

Especie	Aetanthus nodosus,  Gaiadendron punctatum,  Loranthaceae,  Tristerix longebracteatus

familia Lycopodiaceae

Género	Huperzia
Especie	Huperzia crassa,  Huperzia hohenackeri,  Lycopodiella cernua,  Lycopodium clavatum

Malvaceae

Género	Acaulimalva

familia Melastomataceae

Especie	Axinaea,  Axinaea colombiana,  Brachyotum,  Brachyotum lindenii,  Brachyotum strigosum,  Bucquetia glutinosa,  Melastomataceae,  Miconia,  Miconia,  Miconia bracteolata,  Miconia chionophila,  Miconia chlorocarpa,  Miconia ferruginea,  Miconia guianensis,  Miconia jahnii,  Miconia ligustrina,  Miconia orcheotoma,  Miconia salicifolia,  Miconia tinifolia,  Tibouchina grossa

familia Myrsinaceae

Género	Ardisia,  Myrsine
Especie	Myrsine coriacea,  Myrsine dependens

Nyctaginaceae

Especie	Colignonia ovalifolia

familia Onagraceae

Género	Fuchsia
Especie	Fuchsia corollata,  Fuchsia hartwegii,  Fuchsia magellanica,  Fuchsia petiolaris

familia Orchidaceae

Género	Elleanthus,  Lepanthes,  Masdevallia,  Pleurothallis,  Stelis
Especie	Cranichis diphylla,  Cyrtochilum auropurpureum,  Cyrtochilum pardinum,  Elleanthus aurantiacus,  Elleanthus graminifolius,  Epidendrum,  Epidendrum,  Epidendrum megalospathum,  Oncidium cultratum,  Pachyphyllum crystallinum,  Pleurothallis coriacardia,  Telipogon alberti

familia Orobanchaceae

Especie	Bartsia santolinifolia,  Castilleja fissifolia,  Clinopodium brownei

familia Oxalidaceae

Especie	Oxalis integra

familia Passifloraceae

Especie	Passiflora mixta

familia Piperaceae

Género	Peperomia
Especie	Peperomia verticillata

familia Plantaginaceae

Especie	Plantago lanceolata,  Plantago linearis,  Plantago rigida

familia Poaceae

Género	Aegopogon,  Aulonemia,  Cortaderia
Especie	Agrostis breviculmis,  Agrostis foliata,  Anthoxanthum odoratum,  Bromus lanatus,  Calamagrostis effusa,  Calamagrostis intermedia,  Chusquea scandens,  Cortaderia columbiana,  Cortaderia nitida,  Holcus lanatus,  Swallenochloa tessellata

familia Polygalaceae

Especie	Monnina aestuans,  Monnina involuta,  Monnina revoluta

Polygonaceae

Género	Polygonum
Especie	Rumex acetosella

familia Polypodiaceae

Género	Serpocaulon
Especie	Campyloneurum angustifolium,  Campyloneurum angustipaleatum,  Melpomene assurgens,  Pleopeltis macrocarpa,  Polypodium monosorum

familia Primulaceae

Género	Geissanthus
Especie	Geissanthus serrulatus

familia Pteridaceae

Género	Eriosorus,  Jamesonia
Especie	Jamesonia bogotensis,  Jamesonia goudotii,  Jamesonia pulchra

familia Ranunculaceae

Género	Ranunculus
Especie	Ranunculus peruvianus,  Ranunculus praemorsus

familia Rosaceae

Género	Acaena,  Aphanes,  Hesperomeles,  Lachemilla,  Prunus,  Rubus
Especie	Acaena elongata,  Azorella multifida,  Escallonia myrtilloides,  Hesperomeles ferruginea,  Hesperomeles heterophylla,  Hesperomeles lanuginosa,  Hesperomeles obtusifolium,  Hesperomeles pernettyoides,  Lachemilla aphanoides,  Lachemilla fulvescens,  Lachemilla nivalis,  Lachemilla orbiculata,  Polylepis sericea,  Rubus compactus,  Rubus glaucus,  Rubus guyanensis

familia Rubiaceae

Especie	Nertera granadensis,  Galium hypocarpium

familia Santalaceae

Especie	Dendrophthora clavata,  Corynaea sphaerica

familia Scrophulariaceae

Especie	Bartsia santolinifolia,  Buddleja bullata,  Buddleja incana

familia Smilacaceae

Género	Smilax

familia Solanaceae

Género	Cestrum,  Sessea,  Solanum
Especie	Saracha quitensis,  Sessea crassivenosa,  Solanum caripense,  Solanum laurifolium

familia Symplocaceae

Género	Symplocos

familia Tropaeolaceae

Especie	Tropaeolum tuberosum

Urticaceae

Género	Pilea

Winteraceae

Especie	Drimys granadensis

familia Woodsiaceae

Especie	Cystopteris fragilis

Xyridaceae

Especie	Xyris subulata

clase Amphibia, orden Anura, familia bufonidae

Especie	Osornophryne percrassa

clase Amphibia, orden Anura, familia Craugastoridae

Especie	Pristimantis leptolophus,  Pristimantis peraticus,  Pristimantis racemus,  Pristimantis simoterus,  Pristimantis uranobates

Clase aves, familia Scolopacidae

Especie	Gallinago nobilis,  Gallinago jamesoni

Clase aves, familia Emberizidae

Especie	Atlapetes pallidinucha

Clase aves, familia Thraupidae

Especie	Anisognathus igniventris,  Tangara vassorii

Clase aves, familia Trochilidae

Especie	Metallura tyrianthina,  Aglaeactis cupripennis

Clase aves, familia Troglodytidae

Especie	Cistothorus platensis

Clase mamiferos, familia Caenolestidae

Especie	Caenolestes fuliginosus

Clase mamiferos, familia Cricetidae

Especie	Akodon affinis,  Microryzomys,  Microryzomys minutus,  Thomasomys,  Thomasomys aureus,  Thomasomys cinereiventer,  Thomasomys laniger,  Thomasomys niveipes

Clase mamiferos, familia Leporidae

Especie	Sylvilagus brasiliensis

Clase mamiferos, familia Phyllostomidae

Género	Anoura
Especie	Anoura geoffroyi,  Sturnira bidens,  Sturnira bidens,  Sturnira erythromos

Clase mamiferos, familia Soricidae

Especie	Cryptotis thomasi

Clase mamiferos, familia Vespertilionidae

Género	Myotis
Especie	Eptesicus andinus,  Histiotus montanus,  Lasiurus blossevillii

clase Arachnida, familia Araeae

Familia	Amaurobiidae,  Anapidae,  Anyphaenidae,  Araneus,  Caponiidae,  Corinnidae,  Dipluridae,  Gnaphosidae,  Linyphiidae,  Lycosidae,  Lygromma,  Mimetidae,  Ochyrocera,  Ochyroceratidae,  Ocrepeira,  Oonopidae,  Palpimanidae,  Paratropididae,  Philodromidae,  Pholcidae,  Pisauridae,  Pomboa,  Salticidae,  Tetragnathidae,  Theridiidae,  Zodariidae

Clase insecta, orden Coleoptera

Familia	Cantharidae,  Carabidae,  Carabidae,  Chrysomelidae,  Chrysomelidae,  Coccinellidae,  Curculionidae,  Dermestidae,  Elateridae,  Erotylidae,  Histeridae,  Latridiidae,  Lycidae,  Lycidae,  Meloidae,  Nitidulidae,  Phengodidae,  Ptiliidae,  Ptilodactylidae,  Pyrochroidae,  Scarabaeidae,  Scirtidae,  Silphidae,  Staphylinidae,  Tenebrionidae

Cobertura Temporal

Fecha Inicial / Fecha Final	2014-03-01 / 2014-12-04

Datos del Proyecto

No hay descripción disponible

Título	Fondo Adaptación_Insumos para la Delimitación de Ecosistemas Estratégicos: Páramos y Humedales
Fuentes de Financiación	Convenio de Cooperación No. 13-13-014-360CE entre IAvH y WCS
Descripción del Área de Estudio	El estudio se llevó a cabo en bosques andinos y páramos de la cordillera Central, en el complejo de páramos Los Nevados, en los departamentos de Caldas, Risaralda y Tolima, entre los meses de Marzo y julio de 2014.
Descripción del Diseño	El objetivo principal consistía en elaborar estudios bióticos en jurisdicción de las corporaciones CARDER, CORPOCALDAS y CORTOLIMA, orientado a aportar información biológica para la identificación de la franja de transición Páramo-Bosque en Colombia, específicamente en el complejo de páramos Los Nevados, a través del estudio de la diversidad y distribución de aves, anfibios, pequeños mamíferos, plantas y edafofauna epigea (arañas y coleópteros). Esta información biológica es un insumo importante para establecer la franja de transición Bosque-Páramo, aporte fundamental para lograr la la delimitación de los páramos en Colombia.

Personas asociadas al proyecto:

Métodos de Muestreo

El registro de los datos biológicos se llevó a cabo siguiendo las propuestas metodológicas de los componentes de vegetación y fauna para los estudios bióticos, para la identificación y delimitación de los complejos de páramos a escala 1:25.000, elaborado por el Instituto Alexander von Humboldt (2013). Se establecieron cuatro transectos en el departamento de Caldas, uno en el departamento de Risaralda y cinco en el departamento del Tolima, en los siguientes municipios: Manizales, Marulanda, Villamaría, Santa Rosa de Cabal, Anzoátegui, Murillo, Herveo, Ibagué y Santa Isabel. Los muestreos de vertebrados se llevaron a cabo en las localidades de la Reserva Forestal Protectora Río Blanco, en Manizales, en Santa Rosa de Cabal, Anzoátegui y Murillo. Para plantas y artrópodos epigeos los muestreos se realizaron en todos los transectos. En cada una de las estaciones dispuestas a lo largo de los transectos altitudinales se emplearon: redes de niebla y puntos de conteo para aves; redes de niebla y trampas de caída para pequeños mamíferos; transectos de muestreo de banda fija y caminatas aleatorias para anfibios, trampas de caída y captura directa para artrópodos epigeos y parcelas para el estudio de plantas.

Área de Estudio

El área de estudio se ubicó en el complejo de páramos Los Nevados, en bosques andinos y páramos de la cordillera Central, en jurisdicción de los departamentos de Caldas, Risaralda y Tolima. La fase de registro de información en campo se llevó a cabo entre los meses de marzo y julio de 2014. En Caldas se realizaron muestreos en el municipio de Manizales, Marulanda y Villamaría. En Manizales, la localidad particular del muestreo fue la vereda El Desquite, finca Martinica, Reserva Forestal Protectora Río Blanco, entre 3453 y 3973m. en Marulanda, el estudio se realizó en la Vereda El Páramo, sector El Vergel, entre 3414 y 3730m. En Villamaría, el área de estudio se ubicó en la Vereda El Pindo, sector Playa Larga, entre 3430 y 4023m. En Risaralda, se muestreó en el municipio de Santa Rosa de Cabal, en la Vereda La Linda, Sector Cortaderal, Hacienda La Sierra entre 3620 y 3986m. En Tolima, se llevaron a cabo muestreos en los municipios de Anzoátegui, Herveo, Ibagué, Murillo y Santa Isabel. En Anzoátegui, la localidad de estudio fue el Corregimiento Juntas, Vereda El Vergel, Hacienda Diostán,entre 3503 y 3847m. En Herveo, el área de estudio se ubicó en el sector de Letras, Finca La Romelia, entre 3508 y 3898m. En Ibagué, el muestreo se realizó en la vereda La Primavera, entre 3607 y 3901m. En Murillo, el área de estudio fue el Corregimiento El Bosque, Vereda La Cabaña, Finca El Recreo, entre 3480 y 4005m. En Santa Isabel, el área se ubicó en la vereda Totarito, Finca El Águila, entre 3557 y 3960m.

Control de Calidad

En la caracterización de cada grupo se emplearon métodos estandarizados siguiendo protocolos suministrados por el IAvH. Se contó con la retroalimentación de los investigadores que participaron en los muestreos, también con el acompañamiento y asesoría por parte de profesionales calificados de WCS y del Instituto Alexander von Humboldt. Para todos los grupos, la información recopilada se almacenó en hojas de cálculo elaboradas en Excel y en las plantillas para la base de datos de I2D, posteriormente se enviaron bases de datos, muestras biológicas e informes al Instituto Alexander von Humboldt.

Descripción de la metodología paso a paso:

1. Mamíferos Para la captura de pequeños mamíferos no voladores (pequeños roedores, musarañas y zarigüeyas) se utilizaron 40 trampas plegables tipo Sherman dispuestas en un transecto lineal y ubicadas a nivel del suelo, separadas 10 m entre sí, en hojarasca, matorrales, grietas, interior del bosque y caminaderos. Como cebo atrayente se usó una mezcla de avena, maní, mantequilla y esencias de banano, con revisión y recambio cada 24 horas, por un período de tres días. Para la captura de murciélagos se utilizaron ocho redes de niebla de 12 x 2.5 m (ojo de malla de 16 mm), siguiendo las recomendaciones de Patterson et al. (2006), Simmons & Voss (1998) y Tirira (1998). El esfuerzo de muestreo fue de cinco horas por estación; las redes se mantuvieron abiertas entre las 18:00 y las 23:00 horas, con revisión cada 30 minutos. Para cada individuo capturado se registró la fecha y hora de captura, especie, sexo, condición reproductiva y morfometría: masa corporal (peso), longitud total, longitud de la cola, longitud de la pata, longitud de la oreja, longitud antebrazo y adicionalmente longitud de trago y longitud de la hoja nasal en murciélagos. Para la toma de estos datos se usaron pesolas de 30, 100 y 300 gr, también se usaron calibradores manuales.
2. Aves: se emplearon dos métodos: detección visual y captura con redes. Como método de detección se utilizó el conteo por puntos de banda fija, ubicando seis puntos de conteo en cada estación, con 50 m de radio, separados de 100 a 150 m entre sí. En cada punto de conteo se realizaron 15 minutos de observación, con réplica al día siguiente, con un esfuerzo de muestreo de 24 horas por transecto .En cada estación se dispusieron ocho redes de niebla de 12 x 2.5 m (captura) en dos grupos de cuatro redes, separados aproximadamente 100 m entre sí. Las redes estuvieron expuestas desde las 5:30 a las 10:30 horas y desde las 16:00 a las 18:30 horas. Para cada individuo capturado se registró la fecha y hora de captura, especie, sexo, condición reproductiva y morfometría: masa corporal (peso), longitud total y longitud del culmen expuesto, longitud total del ala, envergadura, distancia entre plumas primarias y secundarias, longitud y graduación de la cola, altura y ancho del pico entre comisuras, longitud del tarso y longitud del hallux. Para la toma de estos datos se usaron pesolas de 30, 100 y 300 gr, también se usaron calibradores manuales.
3. Plantas: En cada transecto se definieron entre cinco y siete estaciones de muestreo. En cada transecto altitudinal se establecieron tres parcelas de vegetación por estación de muestreo. El área de las parcelas varió así: en coberturas con dosel continuo parcelas de 100 m2, en coberturas con dosel discontinuo o ausente se levantaron parcelas de 50 m2. En el bosque altoandino y arbustales de páramo se tomaron los siguientes datos para las morfoespecies con un diámetro basal ≥ 2 cm a 30 cm del suelo: altura total, altura a la primera ramificación (para árboles), diámetro del tallo a 30 cm de altura, cobertura de copa, hábito (árbol, arbusto, roseta, hierba, epífita, etc.) y estado fenológico. Las áreas basales se calcularon a partir del diámetro de cada ramificación registrada (Villarreal et al.2006). La cobertura de copa se calculó a partir de las medidas de los diámetros mayor y menor, tomando como referencia el área proyectada de la copa de cada individuo sobre el suelo, En los herbazales, para el caso de macollas y otras especies cuya individualización fue difícil, se registraron las siguientes variables: altura total, cobertura de copa, porcentaje de cobertura, hábito y estado fenológico. Para cada estación de muestreo se elaboraron perfiles verticales de la vegetación registrada en el transecto con base en los levantamientos florísticos realizados; para ello se ubicó un punto de coordenada (x, y). Las muestras colectadas fueron secadas y procesadas en el Herbario CUVC de la Universidad del Valle, posteriormente fueron enviadas a la colección FMB del Instituto Alexander von Humboldt.
4. Artrópodos (coleópteros y arañas): En cada transecto se definieron entre cinco y siete estaciones de muestreo, desde el límite superior al inferior. En cada estación se dispusieron dos transectos de 40 m, distanciados 50 m entre sí. En cada transecto se instalaron cinco trampas de caída. (separadas 10 m), elaboradas con recipientes plásticos de 10 cm de diámetro y medio litro de capacidad, enterrados ras del suelo; a cada trampa se adicionó una mezcla de 300 ml de agua y una gota de jabón (Villarreal et al. 2006). Se realizó captura manual durante una hora diaria en sustratos como la hojarasca, piedras, troncos, necromasa de frailejones y en la vegetación. Las muestras se almacenaron en bolsas de cierre hermético y se etiquetaron con un código referenciando la localidad, estación, transecto, número de trampa y fecha de captura. Posteriormente, los especímenes colectados se depositaron en frascos plásticos con etanol al 80% y se enviaron a colecciones biológicas del Instituto Alexander von Humboldt.
5. Anfibios: En la Reserva Forestal Protectora Río Blanco y Anzoátegui, se usaron recorridos en transectos de banda fija a lo largo de la franja altitudinal en cada una de las estaciones. El uso de caminatas aleatorias se empleó en Santa Rosa de Cabal y Murillo. En los transectos de banda fija, se establecieron en cada estación seis transectos longitudinales de 100 x 2 m, separados por una distancia mínima de 50 m entre sí. el recorrido en cada estación se realizó en distancias no mayores a 270 metros. En ambos casos se realizaron caminatas diurnas y nocturnas, haciendo búsqueda visual y exploraciones en todos los microhábitats. Se usó una herramienta de labranza para remover y buscar especímenes en necromasa de frailejones y puyas. Se tomaron datos morfométricos como: peso, longitud rostro cloaca, ancho de la cabeza, ancho de la boca, longitud del antebrazo, longitud de la tibia, longitud del fémur, longitud del pie, grosor de la piel del dorso, coloración, uso de hábitat y sexo. Para la toma de estos datos se usaron pesolas de 30, 100 y 300 gr, también se usaron calibradores manuales.

Datos de la Colección

Nombre de la Colección	Herbario Federico Meden Bogotá, Colección de anfibios, entomológica y mamíferos del Instituto Alexander von Humboldt, Universidad ICESI, Universidad del Valle
Identificador de la Colección	FMB, IAvH-Am, IAvH-E, IAvH-M, ICESI, CUVC
Identificador de la Colección Parental	n/a

Métodos de preservación de los ejemplares	Alcohol

Metadatos Adicionales

El presente recurso tiene información restringida temporalmente. Asociado a este recurso existen conjuntos de datos de rasgos y tejidos.

Propósito	Aunar esfuerzos técnicos, científicos, administrativos y financieros con el fin de elaborar los estudios bióticos a escala 1: 25000 del Complejo de Páramos Los Nevados en jurisdicción de CORPOCALDAS, CARDER y CORTOLIMA, para identificar la franja de transición páramo-bosque en el Complejo de Páramos “Los Nevados”.
Identificadores Alternativos	doi:10.15472/rs81k8
	6d4b3e65-5922-46bd-a9b5-9c80b19a28d0
	http://ipt.biodiversidad.co/iavh/resource?r=rrbb_nevados_faunaflora_2015