Estudios bióticos: Plantas, anfibios, mamíferos, aves y edafofauna epígea (coleópteros y arácnidos), en el complejo de páramo Los Nevados

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Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt (2015). Estudios bióticos: Plantas, edafofauna epígea, anfibios y aves en los complejo de páramo Los Nevados. 13750 registros, aportados por: León, O. (Contacto del recurso), Toro-Marin, Y. (Creador del recurso, Proveedor de metadatos). Versión 2.1. http://doi.org/10.15472/rs81k8

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The publisher and rights holder of this work is Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt. This work is licensed under a Creative Commons Attribution Non Commercial (CC-BY-NC) 4.0 License.

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This resource has been registered with GBIF, and assigned the following GBIF UUID: 6d4b3e65-5922-46bd-a9b5-9c80b19a28d0.  Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt publishes this resource, and is itself registered in GBIF as a data publisher endorsed by Colombian Biodiversity Information System.

Keywords

metadatos; levantamietos de informacion; plantas; mamíferos; aves; anfibios; Caldas; Risaralda; Tolima; wcs.; Specimen; Occurrence

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Estudios bióticos: Plantas, anfibios, mamíferos, aves y edafofauna epígea (coleópteros y arácnidos), en el complejo de páramo Los Nevados	http://i2d.humboldt.org.co/ceiba/resource.do?r=rrbb_nevados_faunaflora_2015 UTF-8 txt

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Geographic Coverage

Los datos proceden de la cordillera central, complejo los nevados, municipios de Marulanda al Norte, Anzoátegui al Sur, Anzoátegui y Líbano al Este y Manizales y Villamaría al Oeste.

Bounding Coordinates	South West [4.623, -75.493], North East [5.25, -75.217]

Taxonomic Coverage

familia Actinidaceae

Species	Saurauia ursina

familia Adoxaceae

Species	Viburnum undulatum

familia Alstroemeriaceae

Species	Bomarea,  Bomarea carderi,  Bomarea hirsuta,  Bomarea linifolia,  Bomarea patinii,  Bomarea pauciflora

familia Apiaceae

Species	Bowlesia,  Eryngium sp.,  Eryngium humboldtii,  Eryngium humile,  Myrrhidendron pennelli

familia Apocynaceae

Species	Cynanchum

familia Aquifoliaceae

Species	Ilex myricoides

familia Araceae

Species	Anthurium oxybelium

familia Araliaceae

Genus	Hydrocotyle,  Oreopanax,  Schefflera
Species	Hydrocotyle humboldtii,  Oreopanax discolor,  Oreopanax glabrifolium,  Oreopanax incisus,  Oreopanax ruizianum,  Oreopanax tolimanus

famiia Aspleniaceae

Genus	Asplenium
Species	Asplenium theciferum,  Asplenium triphyllum

familia Asteraceae

Genus

Achyrocline,  Ageratina,  Asteraceae,  Baccharis,  Conyza,  Diplostephium,  Eupatorium,  Gynoxys,  Hieracium,  Hypochaeris,  Jungia,  Munnozia,  Pentacalia,  Taraxacum,  Verbesina

Species

Achyrocline satureioides,  Aequatorium jamesonii,  Aequatorium polygonoides,  Aequatorium tatamanum,  Ageratina glyptophlebia,  Ageratina tinifolia,  Baccharis buxifolia,  Baccharis caldasiana,  Baccharis genistelloides,  Baccharis latifolia,  Baccharis prunifolia,  Baccharis rupicola,  Baccharis tricuneata,  Baccharis vacciniifolia,  Bidens andicola,  Diplostephium alveolatum,  Diplostephium micradenium,  Diplostephium revolutum,  Diplostephium schultzii,  Diplostephium tolimense,  Diplostephium violaceum,  Espeletia hartwegiana,  Gamochaeta americana,  Gynoxys buxifolia,  Gynoxys lehmannii,  Gynoxys pendula,  Gynoxys tolimensis,  Hieracium avilae,  Hipochaeris radicata,  Mutisia clematis,  Oritrophium peruvianum,  Pentacalia vaccinioides,  Pentacalia andicola,  Pentacalia sylvicola,  Pentacalia vaccinioides,  Senecio formosus,  Senecio repens,  Taraxacum campylodes,  Taraxacum officinale,  Werneria pygmaea,  Xenophyllum crassum

Balanophoraceae

Species	Corynaea sphaerica

familia Begoniaceae

Genus	Begonia
Species	Begonia ferruginea,  Begonia umbellata,  Begonia urticae

familia Berberidaceae

Species	Berberis dumaniana,  Berberis goudotii,  Berberis quindiuensis

familia Blechnaceae

Genus	Blechnum
Species	Blechnum arborescens,  Blechnum cordatum,  Blechnum loxense

familia Brassicaceae

Species	Cardamine flexuosa

familia Bromeliaceae

Genus	Aechmaea,  Bromelia,  Greigia,  Guzmania,  Puya
Species	Greigia columbiana,  Racinaea penlandii,  Tillandsia complanata

familia Brunelliaceae

Species	Brunellia

familia Calceolariaceae 

Species	Calceolaria,  Calceolaria fruticosa,  Calceolaria microbefaria

familia Campanulaceae

Species	Centropogon ferrugineus,  Centropogon hirsutus,  Siphocampylus mirabilis

familia Caryophyllaceae

Genus	Cerastium
Species	Cerastium mollissimum,  Cerastium subspicatum

familia Chloranthaceae

Genus	Hedyosmum
Species	Hedyosmum racemosum

familia Clethraceae

Genus	Clethra

familia Convolvulaceae

Genus	Convolvulaceae

familia Coriariaceae

Genus	Coriaria
Species	Coriaria ruscifolia

familia Cucurbitaceae

Genus	Cucurbitacea

familia Cunoniaceae

Genus	Weinmannia
Species	Weinmannia balbisiana,  Weinmannia mariquitae,  Weinmannia rollottii,  Weinmannia tomentosa

familia Cyatheaceae

Genus	Cyathea

familia Cyperaceae

Genus	Oreobolus
Species	Carex bonplandii,  Rhynchospora caucana,  Swallenochloa tessellata

Dennstaedtiaceae

Species	Histiopteris incisa

famila Dryopteridaceae

Genus	Elaphoglossum
Species	Elaphoglossum engelii,  Elaphoglossum funckii

Elaeocarpaceae

Species	Vallea stipularis

familia Equisetaceae

Genus	Equisetum
Species	Equisetum bogotense

familia Ericaceae

Genus	Gaultheria,  Plutarchia
Species	Cavendishia bracteata,  Disterigma acuminatum,  Disterigma codonanthum,  Disterigma empetrifolium,  Gaultheria erecta,  Gaultheria foliolosa,  Macleania rupestris,  Myrsine dependens,  Pernettya prostrata,  Plutarchia monantha,  Themistoclesia mucronata,  Vaccinium floribundum,  Gaultheria anastomosans

familia Escalloniaceae

Species	Escallonia myrtilloides

Euphorbiaceae

Genus	Euphorbiaceae

Fabaceae

Species	Lupinus microphyllus,  Lupinus alopecuroides

familia Gentianaceae

Species	Gentiana sedifolia

Geraniaceae

Species	Geranium sibbaldioides,  Geranium diffusum

Grossulariaceae

Species	Ribes leptostachyum

familia Gunneraceae

Species	Gunnera magellanica

familia Hymenophyllaceae

Species	Hymenophyllum elegantulum

familia Hypericaceae

Genus	Hypericum
Species	Hypericum juniperinum,  Hypericum lancifolium,  Hypericum lancioides,  Hypericum laricifolium

Iridaceae

Species	Sisyrinchium convolutum,  Xyris subulata

Isoetaceae

Species	Isoetes colombiana

familia Lamiaceae

Genus	Vitex
Species	Clinopodium brownei,  Satureja nubigena

familia Loranthaceae

Species	Aetanthus nodosus,  Gaiadendron punctatum,  Loranthaceae,  Tristerix longebracteatus

familia Lycopodiaceae

Genus	Huperzia
Species	Huperzia crassa,  Huperzia hohenackeri,  Lycopodiella cernua,  Lycopodium clavatum

Malvaceae

Genus	Acaulimalva

familia Melastomataceae

Species	Axinaea,  Axinaea colombiana,  Brachyotum,  Brachyotum lindenii,  Brachyotum strigosum,  Bucquetia glutinosa,  Melastomataceae,  Miconia,  Miconia,  Miconia bracteolata,  Miconia chionophila,  Miconia chlorocarpa,  Miconia ferruginea,  Miconia guianensis,  Miconia jahnii,  Miconia ligustrina,  Miconia orcheotoma,  Miconia salicifolia,  Miconia tinifolia,  Tibouchina grossa

familia Myrsinaceae

Genus	Ardisia,  Myrsine
Species	Myrsine coriacea,  Myrsine dependens

Nyctaginaceae

Species	Colignonia ovalifolia

familia Onagraceae

Genus	Fuchsia
Species	Fuchsia corollata,  Fuchsia hartwegii,  Fuchsia magellanica,  Fuchsia petiolaris

familia Orchidaceae

Genus	Elleanthus,  Lepanthes,  Masdevallia,  Pleurothallis,  Stelis
Species	Cranichis diphylla,  Cyrtochilum auropurpureum,  Cyrtochilum pardinum,  Elleanthus aurantiacus,  Elleanthus graminifolius,  Epidendrum,  Epidendrum,  Epidendrum megalospathum,  Oncidium cultratum,  Pachyphyllum crystallinum,  Pleurothallis coriacardia,  Telipogon alberti

familia Orobanchaceae

Species	Bartsia santolinifolia,  Castilleja fissifolia,  Clinopodium brownei

familia Oxalidaceae

Species	Oxalis integra

familia Passifloraceae

Species	Passiflora mixta

familia Piperaceae

Genus	Peperomia
Species	Peperomia verticillata

familia Plantaginaceae

Species	Plantago lanceolata,  Plantago linearis,  Plantago rigida

familia Poaceae

Genus	Aegopogon,  Aulonemia,  Cortaderia
Species	Agrostis breviculmis,  Agrostis foliata,  Anthoxanthum odoratum,  Bromus lanatus,  Calamagrostis effusa,  Calamagrostis intermedia,  Chusquea scandens,  Cortaderia columbiana,  Cortaderia nitida,  Holcus lanatus,  Swallenochloa tessellata

familia Polygalaceae

Species	Monnina aestuans,  Monnina involuta,  Monnina revoluta

Polygonaceae

Genus	Polygonum
Species	Rumex acetosella

familia Polypodiaceae

Genus	Serpocaulon
Species	Campyloneurum angustifolium,  Campyloneurum angustipaleatum,  Melpomene assurgens,  Pleopeltis macrocarpa,  Polypodium monosorum

familia Primulaceae

Genus	Geissanthus
Species	Geissanthus serrulatus

familia Pteridaceae

Genus	Eriosorus,  Jamesonia
Species	Jamesonia bogotensis,  Jamesonia goudotii,  Jamesonia pulchra

familia Ranunculaceae

Genus	Ranunculus
Species	Ranunculus peruvianus,  Ranunculus praemorsus

familia Rosaceae

Genus	Acaena,  Aphanes,  Hesperomeles,  Lachemilla,  Prunus,  Rubus
Species	Acaena elongata,  Azorella multifida,  Escallonia myrtilloides,  Hesperomeles ferruginea,  Hesperomeles heterophylla,  Hesperomeles lanuginosa,  Hesperomeles obtusifolium,  Hesperomeles pernettyoides,  Lachemilla aphanoides,  Lachemilla fulvescens,  Lachemilla nivalis,  Lachemilla orbiculata,  Polylepis sericea,  Rubus compactus,  Rubus glaucus,  Rubus guyanensis

familia Rubiaceae

Species	Nertera granadensis,  Galium hypocarpium

familia Santalaceae

Species	Dendrophthora clavata,  Corynaea sphaerica

familia Scrophulariaceae

Species	Bartsia santolinifolia,  Buddleja bullata,  Buddleja incana

familia Smilacaceae

Genus	Smilax

familia Solanaceae

Genus	Cestrum,  Sessea,  Solanum
Species	Saracha quitensis,  Sessea crassivenosa,  Solanum caripense,  Solanum laurifolium

familia Symplocaceae

Genus	Symplocos

familia Tropaeolaceae

Species	Tropaeolum tuberosum

Urticaceae

Genus	Pilea

Winteraceae

Species	Drimys granadensis

familia Woodsiaceae

Species	Cystopteris fragilis

Xyridaceae

Species	Xyris subulata

clase Amphibia, orden Anura, familia bufonidae

Species	Osornophryne percrassa

clase Amphibia, orden Anura, familia Craugastoridae

Species	Pristimantis leptolophus,  Pristimantis peraticus,  Pristimantis racemus,  Pristimantis simoterus,  Pristimantis uranobates

Clase aves, familia Scolopacidae

Species	Gallinago nobilis,  Gallinago jamesoni

Clase aves, familia Emberizidae

Species	Atlapetes pallidinucha

Clase aves, familia Thraupidae

Species	Anisognathus igniventris,  Tangara vassorii

Clase aves, familia Trochilidae

Species	Metallura tyrianthina,  Aglaeactis cupripennis

Clase aves, familia Troglodytidae

Species	Cistothorus platensis

Clase mamiferos, familia Caenolestidae

Species	Caenolestes fuliginosus

Clase mamiferos, familia Cricetidae

Species	Akodon affinis,  Microryzomys,  Microryzomys minutus,  Thomasomys,  Thomasomys aureus,  Thomasomys cinereiventer,  Thomasomys laniger,  Thomasomys niveipes

Clase mamiferos, familia Leporidae

Species	Sylvilagus brasiliensis

Clase mamiferos, familia Phyllostomidae

Genus	Anoura
Species	Anoura geoffroyi,  Sturnira bidens,  Sturnira bidens,  Sturnira erythromos

Clase mamiferos, familia Soricidae

Species	Cryptotis thomasi

Clase mamiferos, familia Vespertilionidae

Genus	Myotis
Species	Eptesicus andinus,  Histiotus montanus,  Lasiurus blossevillii

clase Arachnida, familia Araeae

Family	Amaurobiidae,  Anapidae,  Anyphaenidae,  Araneus,  Caponiidae,  Corinnidae,  Dipluridae,  Gnaphosidae,  Linyphiidae,  Lycosidae,  Lygromma,  Mimetidae,  Ochyrocera,  Ochyroceratidae,  Ocrepeira,  Oonopidae,  Palpimanidae,  Paratropididae,  Philodromidae,  Pholcidae,  Pisauridae,  Pomboa,  Salticidae,  Tetragnathidae,  Theridiidae,  Zodariidae

Clase insecta, orden Coleoptera

Family	Cantharidae,  Carabidae,  Carabidae,  Chrysomelidae,  Chrysomelidae,  Coccinellidae,  Curculionidae,  Dermestidae,  Elateridae,  Erotylidae,  Histeridae,  Latridiidae,  Lycidae,  Lycidae,  Meloidae,  Nitidulidae,  Phengodidae,  Ptiliidae,  Ptilodactylidae,  Pyrochroidae,  Scarabaeidae,  Scirtidae,  Silphidae,  Staphylinidae,  Tenebrionidae

Temporal Coverage

Start Date / End Date	2014-03-01 / 2014-12-04

Project Data

No Description available

Title	Fondo Adaptación_Insumos para la Delimitación de Ecosistemas Estratégicos: Páramos y Humedales
Funding	Convenio de Cooperación No. 13-13-014-360CE entre IAvH y WCS
Study Area Description	El estudio se llevó a cabo en bosques andinos y páramos de la cordillera Central, en el complejo de páramos Los Nevados, en los departamentos de Caldas, Risaralda y Tolima, entre los meses de Marzo y julio de 2014.
Design Description	El objetivo principal consistía en elaborar estudios bióticos en jurisdicción de las corporaciones CARDER, CORPOCALDAS y CORTOLIMA, orientado a aportar información biológica para la identificación de la franja de transición Páramo-Bosque en Colombia, específicamente en el complejo de páramos Los Nevados, a través del estudio de la diversidad y distribución de aves, anfibios, pequeños mamíferos, plantas y edafofauna epigea (arañas y coleópteros). Esta información biológica es un insumo importante para establecer la franja de transición Bosque-Páramo, aporte fundamental para lograr la la delimitación de los páramos en Colombia.

The personnel involved in the project:

Sampling Methods

El registro de los datos biológicos se llevó a cabo siguiendo las propuestas metodológicas de los componentes de vegetación y fauna para los estudios bióticos, para la identificación y delimitación de los complejos de páramos a escala 1:25.000, elaborado por el Instituto Alexander von Humboldt (2013). Se establecieron cuatro transectos en el departamento de Caldas, uno en el departamento de Risaralda y cinco en el departamento del Tolima, en los siguientes municipios: Manizales, Marulanda, Villamaría, Santa Rosa de Cabal, Anzoátegui, Murillo, Herveo, Ibagué y Santa Isabel. Los muestreos de vertebrados se llevaron a cabo en las localidades de la Reserva Forestal Protectora Río Blanco, en Manizales, en Santa Rosa de Cabal, Anzoátegui y Murillo. Para plantas y artrópodos epigeos los muestreos se realizaron en todos los transectos. En cada una de las estaciones dispuestas a lo largo de los transectos altitudinales se emplearon: redes de niebla y puntos de conteo para aves; redes de niebla y trampas de caída para pequeños mamíferos; transectos de muestreo de banda fija y caminatas aleatorias para anfibios, trampas de caída y captura directa para artrópodos epigeos y parcelas para el estudio de plantas.

Study Extent

El área de estudio se ubicó en el complejo de páramos Los Nevados, en bosques andinos y páramos de la cordillera Central, en jurisdicción de los departamentos de Caldas, Risaralda y Tolima. La fase de registro de información en campo se llevó a cabo entre los meses de marzo y julio de 2014. En Caldas se realizaron muestreos en el municipio de Manizales, Marulanda y Villamaría. En Manizales, la localidad particular del muestreo fue la vereda El Desquite, finca Martinica, Reserva Forestal Protectora Río Blanco, entre 3453 y 3973m. en Marulanda, el estudio se realizó en la Vereda El Páramo, sector El Vergel, entre 3414 y 3730m. En Villamaría, el área de estudio se ubicó en la Vereda El Pindo, sector Playa Larga, entre 3430 y 4023m. En Risaralda, se muestreó en el municipio de Santa Rosa de Cabal, en la Vereda La Linda, Sector Cortaderal, Hacienda La Sierra entre 3620 y 3986m. En Tolima, se llevaron a cabo muestreos en los municipios de Anzoátegui, Herveo, Ibagué, Murillo y Santa Isabel. En Anzoátegui, la localidad de estudio fue el Corregimiento Juntas, Vereda El Vergel, Hacienda Diostán,entre 3503 y 3847m. En Herveo, el área de estudio se ubicó en el sector de Letras, Finca La Romelia, entre 3508 y 3898m. En Ibagué, el muestreo se realizó en la vereda La Primavera, entre 3607 y 3901m. En Murillo, el área de estudio fue el Corregimiento El Bosque, Vereda La Cabaña, Finca El Recreo, entre 3480 y 4005m. En Santa Isabel, el área se ubicó en la vereda Totarito, Finca El Águila, entre 3557 y 3960m.

Quality Control

En la caracterización de cada grupo se emplearon métodos estandarizados siguiendo protocolos suministrados por el IAvH. Se contó con la retroalimentación de los investigadores que participaron en los muestreos, también con el acompañamiento y asesoría por parte de profesionales calificados de WCS y del Instituto Alexander von Humboldt. Para todos los grupos, la información recopilada se almacenó en hojas de cálculo elaboradas en Excel y en las plantillas para la base de datos de I2D, posteriormente se enviaron bases de datos, muestras biológicas e informes al Instituto Alexander von Humboldt.

Method step description:

1. Mamíferos Para la captura de pequeños mamíferos no voladores (pequeños roedores, musarañas y zarigüeyas) se utilizaron 40 trampas plegables tipo Sherman dispuestas en un transecto lineal y ubicadas a nivel del suelo, separadas 10 m entre sí, en hojarasca, matorrales, grietas, interior del bosque y caminaderos. Como cebo atrayente se usó una mezcla de avena, maní, mantequilla y esencias de banano, con revisión y recambio cada 24 horas, por un período de tres días. Para la captura de murciélagos se utilizaron ocho redes de niebla de 12 x 2.5 m (ojo de malla de 16 mm), siguiendo las recomendaciones de Patterson et al. (2006), Simmons & Voss (1998) y Tirira (1998). El esfuerzo de muestreo fue de cinco horas por estación; las redes se mantuvieron abiertas entre las 18:00 y las 23:00 horas, con revisión cada 30 minutos. Para cada individuo capturado se registró la fecha y hora de captura, especie, sexo, condición reproductiva y morfometría: masa corporal (peso), longitud total, longitud de la cola, longitud de la pata, longitud de la oreja, longitud antebrazo y adicionalmente longitud de trago y longitud de la hoja nasal en murciélagos. Para la toma de estos datos se usaron pesolas de 30, 100 y 300 gr, también se usaron calibradores manuales.
2. Aves: se emplearon dos métodos: detección visual y captura con redes. Como método de detección se utilizó el conteo por puntos de banda fija, ubicando seis puntos de conteo en cada estación, con 50 m de radio, separados de 100 a 150 m entre sí. En cada punto de conteo se realizaron 15 minutos de observación, con réplica al día siguiente, con un esfuerzo de muestreo de 24 horas por transecto .En cada estación se dispusieron ocho redes de niebla de 12 x 2.5 m (captura) en dos grupos de cuatro redes, separados aproximadamente 100 m entre sí. Las redes estuvieron expuestas desde las 5:30 a las 10:30 horas y desde las 16:00 a las 18:30 horas. Para cada individuo capturado se registró la fecha y hora de captura, especie, sexo, condición reproductiva y morfometría: masa corporal (peso), longitud total y longitud del culmen expuesto, longitud total del ala, envergadura, distancia entre plumas primarias y secundarias, longitud y graduación de la cola, altura y ancho del pico entre comisuras, longitud del tarso y longitud del hallux. Para la toma de estos datos se usaron pesolas de 30, 100 y 300 gr, también se usaron calibradores manuales.
3. Plantas: En cada transecto se definieron entre cinco y siete estaciones de muestreo. En cada transecto altitudinal se establecieron tres parcelas de vegetación por estación de muestreo. El área de las parcelas varió así: en coberturas con dosel continuo parcelas de 100 m2, en coberturas con dosel discontinuo o ausente se levantaron parcelas de 50 m2. En el bosque altoandino y arbustales de páramo se tomaron los siguientes datos para las morfoespecies con un diámetro basal ≥ 2 cm a 30 cm del suelo: altura total, altura a la primera ramificación (para árboles), diámetro del tallo a 30 cm de altura, cobertura de copa, hábito (árbol, arbusto, roseta, hierba, epífita, etc.) y estado fenológico. Las áreas basales se calcularon a partir del diámetro de cada ramificación registrada (Villarreal et al.2006). La cobertura de copa se calculó a partir de las medidas de los diámetros mayor y menor, tomando como referencia el área proyectada de la copa de cada individuo sobre el suelo, En los herbazales, para el caso de macollas y otras especies cuya individualización fue difícil, se registraron las siguientes variables: altura total, cobertura de copa, porcentaje de cobertura, hábito y estado fenológico. Para cada estación de muestreo se elaboraron perfiles verticales de la vegetación registrada en el transecto con base en los levantamientos florísticos realizados; para ello se ubicó un punto de coordenada (x, y). Las muestras colectadas fueron secadas y procesadas en el Herbario CUVC de la Universidad del Valle, posteriormente fueron enviadas a la colección FMB del Instituto Alexander von Humboldt.
4. Artrópodos (coleópteros y arañas): En cada transecto se definieron entre cinco y siete estaciones de muestreo, desde el límite superior al inferior. En cada estación se dispusieron dos transectos de 40 m, distanciados 50 m entre sí. En cada transecto se instalaron cinco trampas de caída. (separadas 10 m), elaboradas con recipientes plásticos de 10 cm de diámetro y medio litro de capacidad, enterrados ras del suelo; a cada trampa se adicionó una mezcla de 300 ml de agua y una gota de jabón (Villarreal et al. 2006). Se realizó captura manual durante una hora diaria en sustratos como la hojarasca, piedras, troncos, necromasa de frailejones y en la vegetación. Las muestras se almacenaron en bolsas de cierre hermético y se etiquetaron con un código referenciando la localidad, estación, transecto, número de trampa y fecha de captura. Posteriormente, los especímenes colectados se depositaron en frascos plásticos con etanol al 80% y se enviaron a colecciones biológicas del Instituto Alexander von Humboldt.
5. Anfibios: En la Reserva Forestal Protectora Río Blanco y Anzoátegui, se usaron recorridos en transectos de banda fija a lo largo de la franja altitudinal en cada una de las estaciones. El uso de caminatas aleatorias se empleó en Santa Rosa de Cabal y Murillo. En los transectos de banda fija, se establecieron en cada estación seis transectos longitudinales de 100 x 2 m, separados por una distancia mínima de 50 m entre sí. el recorrido en cada estación se realizó en distancias no mayores a 270 metros. En ambos casos se realizaron caminatas diurnas y nocturnas, haciendo búsqueda visual y exploraciones en todos los microhábitats. Se usó una herramienta de labranza para remover y buscar especímenes en necromasa de frailejones y puyas. Se tomaron datos morfométricos como: peso, longitud rostro cloaca, ancho de la cabeza, ancho de la boca, longitud del antebrazo, longitud de la tibia, longitud del fémur, longitud del pie, grosor de la piel del dorso, coloración, uso de hábitat y sexo. Para la toma de estos datos se usaron pesolas de 30, 100 y 300 gr, también se usaron calibradores manuales.

Collection Data

Collection Name	Herbario Federico Meden Bogotá, Colección de anfibios, entomológica y mamíferos del Instituto Alexander von Humboldt, Universidad ICESI, Universidad del Valle
Collection Identifier	FMB, IAvH-Am, IAvH-E, IAvH-M, ICESI, CUVC
Parent Collection Identifier	n/a

Specimen preservation methods	Alcohol

Additional Metadata

El presente recurso tiene información restringida temporalmente. Asociado a este recurso existen conjuntos de datos de rasgos y tejidos.

Purpose	Aunar esfuerzos técnicos, científicos, administrativos y financieros con el fin de elaborar los estudios bióticos a escala 1: 25000 del Complejo de Páramos Los Nevados en jurisdicción de CORPOCALDAS, CARDER y CORTOLIMA, para identificar la franja de transición páramo-bosque en el Complejo de Páramos “Los Nevados”.
Alternative Identifiers	doi:10.15472/rs81k8
	6d4b3e65-5922-46bd-a9b5-9c80b19a28d0
	http://ipt.biodiversidad.co/iavh/resource?r=rrbb_nevados_faunaflora_2015