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Análisis de las cargas polínicas depositadas en Lepidópteros, Ápidos, Troquilinos y Glosofaginos, durante la interacción planta polinizador en un fragmento de bs-T en la vereda Los Limones, del municipio de Venadillo-Tolima

La polinización, es un fenómeno de la naturaleza considerado como uno de los más importantes para el mantenimiento de la biodiversidad. Dicho fenómeno se caracteriza de forma particular según el agente interventor que presente; en donde la polinización vectorial por animales es una de las más relevantes para la subsistencia de plantas angiospermas, principalmente en áreas como el bs-T; por lo que la interacción mutualista planta-polinizador juega un papel fundamental para el moldeamiento de las especies presentes en dicho ecosistema. Actualmente, la escasez de información acerca de los polinizadores en bosque seco tropical (bs-T) en el norte del Tolima presenta un vacío en conocimiento, siendo necesario para la comprensión las interrelaciones necesarias para la conservación de esta zona de vida que se encuentra en estado crítico. Por esta razón, en el presente trabajo se plantea evaluar la interacción planta-polinizador en Ápidos, Lepidópteros, Troquilinos y Glosofaginos en un fragmento de bs-T en la Vereda Los Limones del municipio de Venadillo-Tolima, mediante la colecta de granos de polen (carga polínica) provenientes de estos agentes polinizadores y su posterior procesamiento en laboratorio con el método de la acetólisis de Erdtman estandarizado, para lograr un montaje semipermanente e identificación y mediante la comparación de la composición taxonómica de dichas cargas polínicas, determinar los grados de asociación que permitan describir y evaluar este fenómeno y sus distintos síndromes en el área de estudio. Con este proyecto se pretende generar información sobre las estrategias usadas por las flores para la transferencia del polen, sus recompensas y/o engaños, así como también las preferencias de los animales respecto a las flores; constituyéndose en información base para la conservación de la interacción plantapolinizador y por consiguiente las especies involucradas en ellas y su ecosistema. Además de generar un aporte significativo sobre el comportamiento de algunos polinizadores del bosque seco tropical de esta zona del Tolima, se aportarán muestras biológicas a las colecciones (zoológica y palinológica) de la Universidad del Tolima.

Certificado en PDF
Número del certificado16DC6B8DB7E
Fecha del certificado2019-10-13
Certificado en PDFdescargar (62 KB)
Contacto del recurso
NombreHilda Rocio Mosquera Mosquera
PosiciónDirectora Proyecto
OrganizaciónUniversidad del Tolima
Dirección Santa Helena Parte Alta, Ibagué, Tolima, COLOMBIA
Contactohrmosqueram@ut.edu.co Tel: 3214631031
Contacto del permiso
NombreOmar Mejia Patiño
PosiciónRector
OrganizaciónUniversidad del Tolima
Dirección Santa Helena Parte Alta, Ibagué, Tolima, COLOMBIA
Contactorectoria@ut.edu.co Tel: 2772040
Proveedor de los metadatos
NombreKevin González Gutiérrez
PosiciónInvestigador
OrganizaciónUniversidad del Tolima
Dirección Santa Helena Parte Alta, Ibagué, Tolima, COLOMBIA
Contactokgonzalezg@ut.edu.co Tel: 3143269183
Información del Permiso
Autoridad ambientalCorporación Autónoma Regional del Tolima
Número del permiso2449
Titular del permisoUniversidad del Tolima
Nit o cédula8907006407
Fecha de emisión2017-07-18
Cobertura Geográfica
DescripciónEl estudio se realizo en un área de relictos de bs-T con cobertura vegetal secundaria, (N 4°40’15.20 W 74°51’44.23), ubicado a 14,9 km de la vereda Los Limones (Venadillo - Tolima), el cual se encuentra incluido sobre el valle alto del rio magdalena (Pizano et al., 2014). La zona se encuentra a una altura de 317 m, presenta cuatro temporadas climáticas (dos temporadas de lluvia y dos de sequía) con una precipitación anual de 500-1000mm y una temperatura promedio de 20°C – 32°C. Coordenadas: 4°0'0''N y 4°0'0''N Latitud; 74°0'0''E y 74°0'0''E Longitud
Coordenadas4.674, 4.766 / -74.854, -74.812 (Latitud mínima, máxima / Longitud mínima/máxima)
Cobertura Taxonómica
Descripción Las especies de polinizadores fueron descritas hasta el nivel de especie
Familia Vespertillionidae
Subfamilia Molossidae
Género Pyrisitia sp, Staphylus sp, Paratrigona sp, Polybia sp, Plebeia Sp, Trigona Sp, Bombus sp, Agapostemon sp, Temnosoma Sp, Hemipepsis Sp, Halictus sp, Tetragona Sp, Staphylus sp, Hylocereus sp, Opuntia sp, Polistes sp1, Polistes sp, Augoclorella sp, Brachygastra sp, Exaerete sp, Geotrigona sp, Augochlorella sp, Frieseomelitta sp, Caenaugochlora sp, Tetragonisca sp, Nannotrigona sp, Ancyloscelis sp1, Glossophaga sp., Rhogeessa, Myotis, Glossophaga sp.
Especie Sturnira backeri, Artibeus lituratus, Uroderma bilobatum, Myotis nigricans, Gardnerycteris crenulatum, Artibeus planirostris, Pteronotus parnellii, Trachops cirrosus, Carollia brevicauda, Carollia perspicillata, Phyllostomus discolor, Dermanura anderseni, Molossops temminckii, Micronycteris microtis, Glossophaga soricina, Rhogeessa io, Glossophaga longirostris, Apis mellifera, Paratrigona sp, Hypanthidium magdalenae, Polybia sp, Plebeia Sp, Trigona Sp, Trigona fulviventris, Bombus sp, Agapostemon sp, Temnosoma Sp, Pepsis grossa, Exaerete smaradigna, Hemipepsis Sp, Tetragonisca angustula, Halictus sp, Tetragona Sp, Xiphorhynchus susurrans, Chiroxiphia lanceolata, Myiopagis viridicata, Phaeomyias murina, Todirostrum cinereum, Myiozetetes cayanensis, Euphonia conccina, Coereba flaveola, Thamnophilus doliatus, Troglodytes aedon, Claravis pretiosa, Columbina talpacoti, Momotus subrufescens, Brotogeris jugularis, Phaethornis anthophilus, Lepidopyga goudoti, Colaptes punctigula, Galbula ruficauda, Heliconius herato, Melete lycimnia, Dynamine postverta, Junonia evarete, Euptoeieta hegesia, Ascia monuste, Hamadryas amphinome, Hamadryas feronia, Melanis electron, Thereus ortalus, Leptotes cassius, Eurema elathea, Anartia amathea, Calycopis isobeon, Hemiargus hanno, Myscelus amystis, Anartia jatrophae, Sturnira backeri, Artibeus lituratus, Uroderma bilobatum, Myotis nigricans, Gardnerycteris crenulatum, Artibeus planirostris, Pteronotus parnellii, Trachops cirrosus, Carollia brevicauda, Carollia perspicillata, Phyllostomus discolor, Dermanura anderseni, Molossops temminckii, Micronycteris microtis, Glossophaga soricina, Rhogeessa io, Glossophaga longirostris, Apis mellifera, Hypanthidium magdalenae, Trigona fulviventris, Pepsis grossa, Exaerete smaradigna, Tetragonisca angustula, Xiphorhynchus susurrans, Chiroxiphia lanceolata, Myiopagis viridicata, Phaeomyias murina, Todirostrum cinereum, Myiozetetes cayanensis, Euphonia conccina, Coereba flaveola, Thamnophilus doliatus, Troglodytes aedon, Claravis pretiosa, Columbina talpacoti, Momotus subrufescens, Brotogeris jugularis, Phaethornis anthophilus, Lepidopyga goudoti, Colaptes punctigula, Galbula ruficauda, Heliconius herato, Dynamine agacles core, Hamadryas februa ferentina, Tithorea harmonia furina, Notheme erota diadema, Melete lycimnia, Mestra hersilia semifulva, Pyrisitia sp, Dynamine postverta, Junonia evarete, Euptoeieta hegesia, Ascia monuste, Hamadryas amphinome, Hamadryas feronia, Melanis electron, Thereus ortalus, Leptotes cassius, Eurema elathea, Anartia amathea, Calycopis isobeon, Hemiargus hanno, Myscelus amystis, Anartia jatrophae, Pseudolycaena marsyas, Pyrisitia venusta, Rekoa meton, Danaus gilippus, Strymon istapa, Temenis laothoe, Zaretis ellops, Nica flavilla, Panthiades phaleros, Phoebis sennae marcellina, Lycorea halia, Callicore pitheas, Pyrrhogyra neaerea, Pyrgus orcus, Itaballia demophile, Phoebis argante larra, Eurema daira lydia, Hesperiidae sp, Senna reticulata (Willd.) HSIrwin & Barneby, Senegalia polyphylla (DC.) Britton, Cnidoscolus urens (L.) Arthur, Cereus hexagonus (L.) Mill., Tabebuia rosea (Bertol.) Bertero ex A.DC., Frieseomelitta nigra, Melitoma segmentaria, Scaptotrigona barrocoloradensis, Cephalotrigona zexmeniae, Apis mellifera, Polistes carnifex, Cnemotriccus fuscatus, Dendroplex picus, Veniliornis kirkii, Thamnophilus atrinucha, Basileuterus rufifrons, Sturnira lilium, Vampyriscus bidens, Sturnira ludovici, Lophostoma silvicolum, Myotis caucensis, Glossophaga soricina, Formicivora grisea, Picumnus olivaceus, Eucometis penicillata, Euphonia laniirostris, Poecilotriccus sylvia, Samanea Saman (Jacq.) Merr., Delonix regia (gancho.) Raf., Caesalpinia pulcherrima (L.) Sw., Swinglea glutinosa (Blanco) Merr., Callichlamys latifolia (Rich.) K. Schum., Talinum fruticosum (L.) Juss., Lantana sp., Desmodium sp, Melochia sp, Sida sp, Oxytrigona daemoniaca, Oxytrigona sp, Centris sp1, Melipona favosa, Catharus ustulatus, Glaucis hirsutus, Manacus manacus, Molosus coibensis, Desmodus rotundus, Eptesicus diminutus, Vespertilionidae, Tonatia saurophila, Murraya paniculata (L.) Jack, Triplaris americana L., Eufriesea sp, Tetragona, Turdus ignobilis, Parkesia noveboracensis, Geothlypis aequinoctialis, Hylophilus flavipes, Uroderma convexum, Phyllostomus hastatus
Subespecie Dynamine agacles core, Hamadryas februa ferentina, Tithorea harmonia furina, Notheme erota diadema, Mestra hersilia semifulva
Cobertura Temporal
Fecha inicial / Fecha final2018-06-23 / 2018-11-20
Métodos de Muestreo
Descripción del muestreoPara la captura de organismos invertebrados (abejas y mariposas) se usaran cinco métodos diferentes: 1. Red entomológica (2 unidades), 2. Trampa de luz (4 unidades), 3. Trampa van someren rydon (20 unidades), 4. Trampa para abejas euglosinas (10 unidades), 5. Trampas malaise (4 unidades). Las trampas para euglosinos se elaboraran según el modelo utilizado por Smith-Pardo &Gonzlez (2007) y la trampa malaise de acuerdo a Townes (1972). La recolección y montaje de mariposas se seguirá la metodología propuesta por (Andrade-C, Henao, &Trivio, 2013). Los especímenes colectados se llevaran al laboratorio, donde se determinaran mediante el uso de claves propuestas por (Fernández &Sharkey2006; Michener, 2000), con una modificación presentada en Nates Parra (2007); Vélez-Ruiz (2009) para abejas y Andrade (1990) para mariposas. Adicionalmente, se visitaran las colecciones necesarias para su determinación y en caso de ser necesario, se buscará asesoría de expertos en cada grupo taxonómico. Finalmente se ingresaran a la Colección Zoológica de la Universidad del Tolima (CZUT), siguiendo el protocolo de procesamiento de muestras propuesto por (Andrade, 1990; Fernández &Sharkey2006). Para la captura de organismos vertebrados (Quirópteros y Trochilidos) se usaran 6 redes de niebla de 2,5 m x 12m x 36mm ojo de malla, con apertura desde las 6:00 hasta las 11:30 y desde las 15:00 hasta las 17:00, con una revisión cada 30 minutos para colibríes y desde las 18:00 a las 06:00 horas, con una revisión cada 30 minutos para murciélagos, con el fin de presentar una adecuada manipulación de estos últimos, se realizará uso de guantes de carnaza. Se registraran los datos de sexo, estado de desarrollo y mediciones morfométricas de cada individuo (implementando pie de Rey), que permitan la identificación de las especies, por medio de claves taxonómicas propuestas por Gardner (2007), Díaz et al. (2016) para murciélagos y la Guía de Aves de Colombia (Hilty &Brown2001) para trochilidos.
Datos de la Colección
Nombre de la colecciónColeccion Zoologica Universidad del Tolima
Identificador de la colecciónCZUT
Identificador de la colección parental156
Método de preservación de los especímenes Montado con alfileres
Datos del Proyecto
Títulonálisis de las cargas polínicas depositadas en Lepidópteros, Ápidos, Troquilinos y Glosofaginos, durante la interacción planta polinizador en un fragmento de bs-T en la vereda Los Limones, del municipio de Venadillo-Tolima.Codigo: 120130517 CREE
(Personal) Nombre Hilda Rocio Mosquera Mosquera
(Personal) Rol Investigador Principal
Palabras Clave
Polinizadores; Bosque Seco