Aves del Parque Nacional Natural Chingaza y zona de amortiguación Cordillera oriental de los Andes, Colombia

Última versión publicado en Jan 7, 2020
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Describimos la composición de especies de aves del Parque Nacional Natural (PNN) Chingaza y su zona de amortiguación. La lista presentada es el resultado de la revisión de 10 estudios ornitológicos que incluían listas de especies para el área protegida y su zona de amortiguación hasta el año 2017. Esta compilación fue enriquecida con trabajo de campo que aportó nuevos registros mediante la grabación de vocalizaciones, detección de aves a lo largo de tres transectos, y por medio de jornadas de observación entre 2008–2017, y la expedición Colombia BIO enfocada en el sector oriental del parque y la zona de amortiguación en los municipios de San Juanito y Medina, durante marzo de 2018. Reportarmos para el PNN Chingaza y su zona de amortiguación un total de 531 especies de aves, agrupadas en 339 géneros y 57 familias. Seis especies presentes en el parque son endémicas de Colombia, 14 casi endémicas, una (Vultur gryphus) en peligro crítico, seis en peligro, cuatro vulnerables, tres casi amenazadas y 37 migratorias (34 boreales, 3 austral). Esta lista incluye 149 especies adicionales a la información previamente conocida por datos publicados y colecciones ornitológicas. Adicionalmente, generamos códigos de barras genéticos, con base en secuencias el gen mitocondrial COI, para 74 especies y presentamos los primeros registros genéticos de Colombia en la plataforma para códigos de barra genéticos Barcode Of Life Datasystems (BOLD) para Dysithamnus leucostictus, Chamaeza turdina, Rupicola peruvianus, Atlapetes semirufus, Euphonia mesochrysa y la subespecie Chlorospingus flavopectus olsoni. El presente listado es una herramienta para incentivar el estudio y conservación de las aves en este sector de la Cordillera Oriental colombiana.

Registros

Los datos en este lista de chequeo recurso han sido publicados como Archivo Darwin Core(DwC-A), el cual es un formato estándar para compartir datos de biodiversidad como un conjunto de una o más tablas de datos. La tabla de datos del core contiene 531 registros. también existen 1 tablas de datos de extensiones. Un registro en una extensión provee información adicional sobre un registro en el core. El número de registros en cada tabla de datos de la extensión se ilustra a continuación.

  • Taxon (core)
    531
  • Distribution 
    531

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Linares Romero L G, Orlando A, Avellaneda F, Cortés-Herrera O, Cuervo A, Galindo-Tarazona R, Hernández D, Pérez-Peña S, Pulido Á R, Pulido-Santacruz P, Seeholzer G, Sierra-Buitrago M D S, Soto-Patiño J, Laverde O (2016): Aves del Parque Nacional Natural Chingaza y zona de amortiguación Cordillera oriental de los Andes, Colombia. v4.1. Parques Nacionales Naturales de Colombia. Dataset/Checklist. https://doi.org/10.15472/icidip

Derechos

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Registro GBIF

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Palabras Clave

Aves de páramo; Avifauna Chingaza; Andes tropicales; lista de especies; Colombia BIO

Contactos

¿Quién creó el recurso?:

Luis Guillermo Linares Romero
Profesional Vida Silvestre
Parque Nacional Natural Chingaza Calle 74 Nº 11 - 81 Bogotá Cundinarmaca CO 313 3587846
http://www.parquesnacionales.gov.co/portal/es/
Acevedo-Charry Orlando
Investigador
Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt Calle 28A # 15-09 Bogotá CO
Fredy Avellaneda
Técnico
Parque Nacional Natural Chingaza
Oswaldo Cortés-Herrera
Investigador
Bogotá Birding
Andrés Cuervo
Investigador
Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt y Universidad Nacional de Colombia Instituto de Ciencias Naturales
Robinson Galindo-Tarazona
Jefe de área y Director territorial Pacífico
Parques Nacionales Naturales de Colombia
David Hernández
Profesional
Parque Nacional Natural Chingaza
Sebastián Pérez-Peña
Investigador
Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt
Ángel Ramiro Pulido
Técnico
Parque Nacional Natural Chingaza
Paola Pulido-Santacruz
Investigadora
Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt
Glen Seeholzer
Investigadora
American Museum of Natural History
María del Socorro Sierra-Buitrago
Investigadora
Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt
Juliana Soto-Patiño
Investigadora
Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt
Oscar Laverde
Investigador
6Pontificia Universidad Javeriana, Facultad de Ciencias, Departamento de Biología

¿Quién puede resolver dudas acerca del recurso?:

Luis Guillermo Linares Romero
Profesional Vida Silvestre
Parque Nacional Natural Chingaza Calle 74 Nº 11 - 81 Bogotá Cundinarmaca CO 313 3587846
http://www.parquesnacionales.gov.co/portal/es/

¿Quién documentó los metadatos?:

Diana Marcela Santana Martinez
Técnico en Sistemas de Información
Parques Nacionales Naturales de Colombia Calle 74 Nº 11 - 81 Bogotá Cundinamarca CO
http://www.parquesnacionales.gov.co/portal/es/

¿Quién más está asociado con el recurso?:

Proveedor de Contenido
Oswaldo Cortés-Herrera
Director
Colombia Bogotá Birding Tv. 87a N. 60 - 14 Bogotá Bogotá, D.C. CO
Programador
Margarita Rozo
Administrador sistema de información SULA
Parques Nacionales Naturales de Colombia Calle 74 Nº 11- 81 Bogotá CO 3532400
Proveedor de Contenido
Andres Cuervo
Investigador
Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt Calle 28A # 15-09 Bogotá Cundinamarca CO
Proveedor de Contenido
Sebastian Pérez-Peña
Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt Calle 28A # 15-09 Bogotá Cundinamarca CO
Proveedor de Contenido
Glen Seeholzer
Investigador
American Museum of Natural History - Department of Ornithology
Proveedor de Contenido
María del Socorro Sierra-Buitrago
Investigador
Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt Calle 28A # 15-09 Bogotá Cundinamarca CO
Proveedor de Contenido
Juliana Soto-Patiño
Investigador
Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt Calle 28A # 15-09 Bogotá Cundinamarca CO
Proveedor de Contenido
Oscar Laverde-R
Investigador
Pontificia Universidad Javeriana

Cobertura Geográfica

El área de estudio comprendida dentro de cada investigación realizada, responde a localidades dentro del área protegida y su zona de amortiguación. La primera aproximación al estudio de la comunidad de aves de Chingaza la hizo McKay (1979), explorando el área protegida en el sector de Chuza, laguna de Chingaza y laguna Colorada. Posteriormente, Barbosa et al. (1984) en los sectores de Alto de Palacio, Chuza y Alto del Amparo (dentro del área protegida); UNESIS (1991) en los sectores de La Paila, Monteredondo y Palacio (dentro del área protegida); Andrade et al. (1993) en la Reserva Biológica Carpanta (dentro del área protegida y zona de amortiguación); Stiles & Rosselli (1998) en el sector de Palacio, (zona de amortiguación); Salaman et al. (2002), sector Monteredondo del municipio de El Calvario, Meta y el río Gazaunta en Medina, (dentro del área protegida y zona de amortiguación) y Cortés et al. (2008) en los farallones de Medina, Cundinamarca (zona de amortiguación). Adicional, los registros obtenidos del SiB corresponden a una expedición realizada por el Instituto de Investigación en Recursos Biológicos Alexander von Humboldt (IAvH) hacia los Farallones de Medina, en la vereda Toquiza, tanto adentro como en la zona de amortiguación del PNN Chingaza, en el marco del proyecto “Caracterización de la biodiversidad en áreas prioritarias de la vertiente oriental de la cordillera Oriental”. Los recientes desplazamientos de prevención y vigilancia del PNN Chingaza han monitoreado adicionalmente entre 2013-2016 tres sectores al occidente del parque (Palacio, Monterredondo y La Paila). Exploraciones adicionales a los bosques subandinos del sector oriental han ocurrido 2016 y 2017, y la expedición ColombiaBIO-Chingaza fue desarrollada en dos localidades en Meta.

Coordenadas límite Latitud Mínima Longitud Mínima [4.33, -73.887], Latitud Máxima Longitud Máxima [4.785, -73.419]

Cobertura Taxonómica

Durante las salidas de campo se consultaron la Guía de Aves de Colombia (Hilty & Brown 2001) y la Guía de Campo de las Aves de Colombia (McMullan et al. 2014) para la verificación e identificación de especies. Se usó la taxonomía propuesta por el comité suramericano de clasificación de aves (SACC, por sus siglas en inglés). Registramos un total de 531 especies de aves en el PNN Chingaza, incluidas en 23 órdenes, 57 familias y 338 géneros, las cuales equivalen al 28% de las 1.909 especies registradas para Colombia (Avendaño et al., 2017). Las tres familias más diversas fueron Tyrannidae con 73 especies, seguida de Thraupidae con 68 y Trochilidae con 52 (Figura 2), mientras 13 de las 57 familias registradas fueron representadas por una sola especie. Adicionalmente, se reportan códigos de barras de ADN para 74 especies, cinco de las cuales (Atlapetes semirufus, Chlorospingus flavopectus, Euphonia mesochrysa, Dysithamnus leucostictus y Diglossa caerulescens) no tenían registros genéticos en bases de datos. Las 10 investigaciones que documentaron la comunidad de aves del PNN Chingaza entre los años 1979 y 2017 incluyen un total de 348 especies de aves para el área protegida y su zona de amortiguación. Adicional, la información depositada en colecciones biológicas y no contenida en ninguna de esas referencias incrementa 34 especies al listado. Las colecciones con depósito de especímenes. Finalmente, con las recientes expediciones de O. Cortes, O. Laverde, salidas de campo de la Línea de Investigación y Monitoreo del PNN Chingaza y la expedición Colombia BIO, adicionamos 149 especies más al listado de aves del área protegida y su zona de amortiguación. Los esfuerzos de investigación y conservación de la comunidad de aves en el PNN Chingaza se deben enfocar en sectores poco explorados, principalmente hacia el sector oriental del parque en las cuencas de la quebrada La Ardita y del río Guatiquía, en la parte alta de los Farallones de Medina. Estas áreas presentan bosques prístinos en buen estado de conservación, con un gradiente altitudinal continuo que presenta especies importantes como el amenazado loro orejiamarillo Ognorhycnhus icterotis, el cual fue encontrado recientemente anidando en la palma de cera Ceroxylon quindiuense en la región de San Juanito. Contrastantemente, llaman la atención algunos registros inusuales de especies típicas de las tierras bajas del trópico y de los ramales bajos de la Cordillera Oriental. Estos registros amplían el rango altitudinal de especies cómo: Vanellus chilensis, Phimosus infuscatus, Anhinga anhinga, Tigrisoma lineatum, Syrigma sibilatrix, Crotophaga ani y Campylopterus falcatus (Linares-Romero et al., 2017). Es probable que estas ampliaciones en los rangos altitudinales de muchas de estas especies se deban principalmente a procesos relacionados con el cambio climático (Şekercioğlu et al., 2008).

Especie  Aburria aburri,  Accipiter striatus,  Acropternis orthonyx,  Actitis macularius,  Adelomyia melanogenys,  Aglaeactis cupripennis,  Aglaiocercus kingii,  Amazilia fimbriata,  Amazilia versicolor,  Amazilia viridigaster,  Amazona mercenarius,  Amblycercus holosericeus,  Ampelion rubrocristatus,  Anabacerthia striaticollis,  Anas andium,  Anas georgica,  Andigena nigrirostris,  Anhinga anhinga,  Anisognathus igniventris,  Anisognathus somptuosus,  Anthus bogotensis,  Aramides cajaneus,  Ardea alba,  Arremon assimilis,  Arremon brunneinucha,  Arremon taciturnus,  Arremonops conirostris,  Asio stygius,  Asthenes flammulata,  Asthenes fuliginosa,  Atlapetes pallidinucha,  Atlapetes schistaceus,  Atlapetes semirufus,  Atticora fasciata,  Attila spadiceus,  Aulacorhynchus haematopygus,  Aulacorhynchus prasinus,  Basileuterus culicivorus,  Basileuterus tristriatus,  Boissonneaua flavescens,  Bolborhynchus lineola,  Brachygalba lugubris,  Bubulcus ibis,  Buteo albigula,  Buteo nitidus,  Buteo platypterus,  Buteo swainsoni,  Buthraupis montana,  Cacicus cela,  Cacicus chrysonotus,  Cacicus solitarius,  Cacicus uropygialis,  Campephilus haematogaster,  Campephilus pollens,  Campylopterus falcatus,  Campylorhamphus pusillus,  Campylorhynchus griseus,  Caracara cheriway,  Cardellina canadensis,  Catamblyrhynchus diadema,  Catamenia homochroa,  Catamenia inornata,  Cathartes aura,  Catharus aurantiirostris,  Catharus dryas,  Catharus fuscater,  Catharus minimus,  Catharus ustulatus,  Cercomacroides tyrannina,  Chaetocercus heliodor ,  Chaetocercus mulsant,  Chaetura brachyura,  Chaetura cinereiventris,  Chalcostigma heteropogon,  Chamaepetes goudotii,  Chamaeza campanisona,  Chamaeza turdina,  Chloroceryle amazona,  Chlorochrysa calliparaea,  Chlorophanes spiza,  Chlorophonia cyanea,  Chlorophonia pyrrhophrys,  Chlorornis riefferii,  Chlorospingus canigularis,  Chlorospingus flavopectus,  Chlorospingus parvirostris,  Chlorostilbon mellisugus,  Chlorostilbon poortmani,  Chondrohierax uncinatus,  Chordeiles acutipennis,  Chordeiles minor,  Chrysuronia oenone,  Ciccaba albitarsis,  Cinclodes albidiventris,  Cinclus leucocephalus,  Cinnycerthia olivascens,  Cinnycerthia unirufa,  Cissopis leverianus,  Cistothorus platensis,  Cnemarchus erythropygius,  Cnemathraupis eximia,  Cnemoscopus rubrirostris,  Cnemotriccus fuscatus,  Coccyzus americanus,  Coeligena bonapartei,  Coeligena coeligena,  Coeligena helianthea,  Coeligena torquata,  Coereba flaveola,  Colaptes rivolii,  Colaptes rubiginosus,  Colibri coruscans,  Colibri thalassinus,  Columbina talpacoti,  Conirostrum albifrons,  Conirostrum rufum,  Conirostrum sitticolor,  Conopias cinchoneti,  Conopophaga castaneiceps,  Contopus cooperi,  Contopus fumigatus,  Coragyps atratus,  Cranioleuca curtata,  Creurgops verticalis,  Crotophaga ani,  Cryptopipo holochlora,  Crypturellus cinereus,  Crypturellus soui,  Cyanerpes caeruleus,  Cyanocorax violaceus,  Cyanocorax yncas,  Cyanolyca armillata,  Dacnis cayana,  Dendrocincla fuliginosa,  Dendrocincla merula,  Dendrocincla tyrannina,  Dendrocolaptes picumnus,  Dendroplex picus,  Diglossa albilatera,  Diglossa caerulescens,  Diglossa cyanea,  Diglossa lafresnayii,  Dixiphia pipra,  Doryfera johannae,  Doryfera ludovicae,  Dryocopus lineatus,  Dubusia taeniata,  Dysithamnus leucostictus,  Dysithamnus mentalis,  Egretta caerulea,  Elaenia flavogaster,  Elaenia frantzii,  Elaenia parvirostris,  Elanoides forficatus,  Elanus leucurus,  Empidonax alnorum,  Empidonax traillii,  Ensifera ensifera,  Epinecrophylla ornata,  Eriocnemis cupreoventris,  Eriocnemis vestita,  Eubucco bourcierii,  Euphonia chlorotica,  Euphonia chrysopasta,  Euphonia cyanocephala,  Euphonia laniirostris,  Euphonia mesochrysa,  Euphonia xanthogaster,  Eutoxeres aquila,  Falco columbarius,  Falco rufigularis,  Falco sparverius,  Forpus conspicillatus,  Fulica americana,  Galbula tombacea,  Gallinago delicata,  Gallinago nobilis,  Gallinula galeata,  Gampsonyx swainsonii,  Geothlypis philadelphia,  Geotrygon montana,  Geranoaetus albicaudatus,  Geranoaetus melanoleucus,  Glaucidium jardinii,  Glyphorynchus spirurus,  Grallaria guatimalensis,  Grallaria kaestneri,  Grallaria quitensis,  Grallaria ruficapilla,  Grallaria rufula,  Grallaria squamigera,  Grallaricula nana,  Gymnomystax mexicanus,  Hapalopsittaca amazonina,  Haplophaedia aureliae,  Haplospiza rustica,  Heliangelus amethysticollis,  Heliangelus mavors,  Heliodoxa leadbeateri,  Hellmayrea gularis,  Hemitriccus granadensis,  Henicorhina leucophrys,  Henicorhina leucosticta,  Herpetotheres cachinnans,  Hirundo rustica,  Hylophilus brunneiceps,  Hylophilus flavipes,  Icterus auricapillus,  Icterus chrysater,  Icterus mesomelas,  Ictinia plumbea,  Iridosornis rufivertex,  Ixothraupis guttata,  Klais guimeti,  Kleinothraupis atropileus,  Knipolegus poecilurus,  Lafresnaya lafresnayi,  Legatus leucophaius,  Leiothlypis peregrina,  Lepidocolaptes lacrymiger,  Lepidocolaptes souleyetii,  Leptasthenura andicola,  Leptopogon rufipectus,  Leptopogon superciliaris,  Leptotila verreauxi,  Lesbia nuna,  Lesbia victoriae,  Lipaugus fuscocinereus,  Lophotriccus pileatus,  Malacoptila fulvogularis,  Manacus manacus,  Margarornis squamiger,  Masius chrysopterus,  Mecocerculus leucophrys,  Mecocerculus poecilocercus,  Mecocerculus stictopterus,  Megarynchus pitangua,  Megascops albogularis,  Megascops choliba,  Megascops roraimae,  Melanerpes cruentatus,  Merganetta armata,  Metallura tyrianthina,  Microcerculus marginatus,  Milvago chimachima,  Mimus gilvus,  Mionectes oleagineus,  Mionectes olivaceus,  Mionectes striaticollis,  Molothrus bonariensis,  Molothrus oryzivorus,  Monasa flavirostris,  Myadestes ralloides,  Myiarchus cephalotes,  Myiarchus ferox,  Myiarchus tuberculifer,  Myiobius barbatus,  Myioborus miniatus,  Myioborus ornatus,  Myiodynastes chrysocephalus,  Myiopagis gaimardii,  Myiophobus flavicans,  Myiotheretes fumigatus,  Myiotheretes striaticollis,  Myiothlypis cinereicollis,  Myiothlypis coronata,  Myiothlypis luteoviridis,  Myiothlypis nigrocristata,  Myiozetetes cayanensis,  Myiozetetes similis,  Myornis senilis,  Myrmoborus leucophrys,  Myrmotherula schisticolor,  Nephelomyias pulcher,  Nothocercus bonapartei,  Nothocercus julius,  Nyctibius griseus,  Nycticorax nycticorax,  Nyctidromus albicollis,  Ochthoeca cinnamomeiventris,  Ochthoeca diadema,  Ochthoeca frontalis,  Ochthoeca fumicolor,  Ochthoeca rufipectoralis,  Ocreatus underwoodii,  Odontophorus strophium,  Ognorhynchus icterotis,  Opisthoprora euryptera,  Orochelidon murina,  Ortalis guttata,  Oxypogon guerinii,  Oxyura jamaicensis,  Pachyramphus albogriseus,  Pachyramphus castaneus,  Pachyramphus cinnamomeus,  Pachyramphus marginatus,  Pachyramphus polychopterus,  Pachyramphus versicolor,  Pachysylvia semibrunnea,  Pandion haliaetus,  Parabuteo leucorrhous,  Parkesia noveboracensis,  Patagioenas cayennensis,  Patagioenas fasciata,  Patagioenas plumbea,  Patagioenas subvinacea,  Patagona gigas,  Penelope argyrotis,  Penelope jacquacu,  Penelope montagnii,  Phacellodomus rufifrons,  Phaethornis augusti,  Phaethornis griseogularis,  Phaethornis guy,  Phaethornis hispidus,  Phaethornis ruber,  Phaethornis syrmatophorus,  Pharomachrus antisianus,  Pharomachrus auriceps,  Pheugopedius mystacalis,  Pheugopedius rutilus,  Phimosus infuscatus,  Phyllomyias cinereiceps,  Phyllomyias nigrocapillus,  Phyllomyias uropygialis,  Piaya cayana,  Picoides fumigatus,  Picumnus squamulatus,  Pionus tumultuosus,  Pipra filicauda,  Pipraeidea melanonota,  Pipreola arcuata,  Pipreola riefferii,  Piprites chloris,  Piranga olivacea,  Piranga rubra,  Pitangus sulphuratus,  Platyrinchus flavigularis,  Platyrinchus mystaceus,  Poecilotriccus ruficeps,  Porzana carolina,  Premnoplex brunnescens,  Premnornis guttuliger,  Progne tapera,  Psarocolius angustifrons,  Psarocolius decumanus,  Pseudocolaptes boissonneautii,  Pseudocolopteryx acutipennis,  Pseudospingus verticalis,  Pseudotriccus pelzelni,  Pseudotriccus ruficeps,  Pteroglossus castanotis,  Pteroglossus inscriptus,  Pteroglossus pluricinctus,  Pterophanes cyanopterus,  Pygochelidon cyanoleuca,  Pyroderus scutatus,  Pyrrhomyias cinnamomeus,  Pyrrhura calliptera,  Quiscalus lugubris,  Rallus semiplumbeus,  Ramphastos vitellinus,  Ramphocaenus melanurus,  Ramphocelus carbo,  Ramphomicron microrhynchum,  Rhynchocyclus fulvipectus,  Riparia riparia,  Rupicola peruvianus,  Rupornis magnirostris,  Saltator maximus,  Sayornis nigricans,  Schistes geoffroyi,  Scytalopus atratus,  Scytalopus griseicollis,  Scytalopus latrans,  Scytalopus micropterus,  Sericossypha albocristata,  Setophaga castanea,  Setophaga cerulea,  Setophaga fusca,  Setophaga petechia,  Setophaga pitiayumi,  Setophaga ruticilla,  Setophaga striata,  Sicalis flaveola,  Sicalis luteola,  Sphenopsis frontalis,  Spizaetus isidori,  Sporophila luctuosa,  Sporophila nigricollis,  Sporophila schistacea,  Steatornis caripensis,  Stelgidopteryx ruficollis,  Streptoprocne rutila,  Streptoprocne zonaris,  Sturnella magna,  Sturnella militaris,  Synallaxis albescens,  Synallaxis azarae,  Synallaxis gujanensis,  Synallaxis moesta,  Synallaxis subpudica,  Synallaxis unirufa,  Syndactyla subalaris,  Syrigma sibilatrix,  Systellura longirostris,  Tachycineta albiventer,  Tachyphonus luctuosus,  Tachyphonus rufus,  Tangara arthus,  Tangara gyrola,  Tangara mexicana,  Tangara nigroviridis,  Tangara parzudakii,  Tangara vassorii,  Tangara xanthocephala,  Taraba major,  Tersina viridis,  Thalurania furcata,  Thamnophilus doliatus,  Thamnophilus punctatus,  Thamnophilus tenuepunctatus,  Thamnophilus unicolor,  Thlypopsis superciliaris,  Thraupis cyanocephala,  Thraupis episcopus,  Thraupis palmarum,  Thripadectes flammulatus,  Thripadectes melanorhynchus,  Thryophilus rufalbus,  Tigrisoma lineatum,  Tinamus tao,  Tityra cayana,  Tityra inquisitor,  Tityra semifasciata,  Todirostrum cinereum,  Tolmomyias flaviventris,  Tolmomyias sulphurescens,  Touit stictopterus,  Tringa flavipes,  Tringa melanoleuca,  Tringa solitaria,  Troglodytes aedon,  Troglodytes solstitialis,  Trogon collaris,  Trogon personatus,  Turdus fulviventris,  Turdus fuscater,  Turdus ignobilis,  Turdus leucomelas,  Turdus serranus,  Tyrannus melancholicus,  Tyrannus savana,  Tyrannus tyrannus,  Tyto alba,  Uropsalis lyra,  Vanellus chilensis,  Veniliornis passerinus,  Vireo leucophrys,  Vireo olivaceus,  Volatinia jacarina,  Vultur gryphus,  Xiphocolaptes promeropirhynchus,  Xiphorhynchus guttatus,  Xiphorhynchus triangularis,  Zenaida auriculata,  Zentrygon linearis,  Zimmerius chrysops,  Zonotrichia capensis,  Brotogeris jugularis,  Capito auratus,  Ceratopipra erythrocephala,  Chalcothraupis ruficervix,  Chalybura buffonii,  Chloroceryle americana,  Chordeiles nacunda,  Claravis pretiosa,  Coccycua minuta,  Colinus cristatus,  Colonia colonus,  Columbina minuta,  Columbina squammata,  Conirostrum speciosum,  Cyclarhis gujanensis,  Diglossa humeralis,  Elaenia chiriquensis,  Emberizoides herbicola,  Eriocnemis aline,  Eupsittula pertinax,  Glaucidium brasilianum,  Heliomaster longirostris,  Hemithraupis guira,  Hirundinea ferruginea,  Leptotila rufaxilla,  Lurocalis rufiventris,  Lurocalis semitorquatus,  Machetornis rixosa,  Megaceryle torquata,  Micrastur ruficollis,  Myiophobus fasciatus,  Phaeomyias murina,  Pheucticus aureoventris,  Phrygilus unicolor,  Pitangus lictor,  Poecilotriccus sylvia,  Progne chalybea,  Pyrocephalus rubinus,  Sakesphorus canadensis,  Saltator coerulescens,  Schistochlamys melanopis,  Serpophaga cinerea,  Sittasomus griseicapillus,  Sphenopsis melanotis,  Spinus psaltria,  Spinus spinescens,  Spizaetus tyrannus,  Sporophila angolensis,  Sporophila intermedia,  Stilpnia cayana,  Stilpnia cyanicollis,  Stilpnia heinei,  Tapera naevia,  Thectocercus acuticaudatus,  Thripadectes holostictus,  Turdus nudigenis,  Tyrannulus elatus,  Uromyias agilis,  Uropsalis segmentata,  Vireo flavoviridis,  Xenops rutilans

Cobertura Temporal

Periodo de Formación 1979-2018

Datos del Proyecto

No hay descripción disponible

Título Investigación en el PNN Chingaza, actualización de listado taxonomico de aves
Fuentes de Financiación Presupuesto nacional Expedición Colombia Bio
Descripción del Área de Estudio El área de estudio comprendida dentro de cada investigación realizada, responde a localidades dentro del área protegida y su zona de amortiguación. La primera aproximación al estudio de la comunidad de aves de Chingaza la hizo McKay (1979), explorando el área protegida en el sector de Chuza, laguna de Chingaza y laguna Colorada. Posteriormente, Barbosa et al. (1984) en los sectores de Alto de Palacio, Chuza y Alto del Amparo (dentro del área protegida); UNESIS (1991) en los sectores de La Paila, Monteredondo y Palacio (dentro del área protegida); Andrade et al. (1993) en la Reserva Biológica Carpanta (dentro del área protegida y zona de amortiguación); Stiles & Rosselli (1998) en el sector de Palacio, (zona de amortiguación); Salaman et al. (2002), sector Monteredondo del municipio de El Calvario, Meta y el río Gazaunta en Medina, (dentro del área protegida y zona de amortiguación) y Cortés et al. (2008) en los farallones de Medina, Cundinamarca (zona de amortiguación). Adicional, los registros obtenidos del SiB corresponden a una expedición realizada por el Instituto de Investigación en Recursos Biológicos Alexander von Humboldt (IAvH) hacia los Farallones de Medina, en la vereda Toquiza, tanto adentro como en la zona de amortiguación del PNN Chingaza, en el marco del proyecto “Caracterización de la biodiversidad en áreas prioritarias de la vertiente oriental de la cordillera Oriental”.
Descripción del Diseño Realizamos una revisión de artículos y documentos sobre la avifauna del PNN Chingaza. Tuvimos en cuenta artículos y documentos técnicos que reportaran listas de especies de aves. La búsqueda arrojó 10 referencias, entre 1979 y 2017, para diferentes sectores del PNN Chingaza y su zona de amortiguación. Adicionalmente, dentro de los recorridos de Prevención, Vigilancia y Control (PVC) del PNN Chingaza, entre los años 2013-2016, fueron visitadas tres localidades a lo largo del flanco occidental del parque (sector Palacio, Monteredondo y La Paila) y en la zona de amortiguación del sector oriental (Medina, Meta). Dos salidas de campo adicionales en septiembre 2016 y abril de 2017 fueron realizadas en la vereda Periquito, en el municipio de Medina, sector oriental del parque y en San Juanito, Meta. En estos recorridos registramos las aves con binoculares 10x42 a lo largo de transectos de ca. 1.8 km de largo, siguiendo la metodología propuesta por Villarreal et al. (2004). En marzo de 2018, el Instituto Alexander von Humboldt (IAvH) en colaboración con el PNN Chingaza organizó la expedición Colombia BIO – Chingaza, con muestreos en la vereda Periquitos de Medina, Cundinamarca, y en la vereda El Tablón de San Juanito, Meta. En esta expedición realizamos recorridos libres de observación que fueron depositados en la plataforma eBird, grabación de sonidos que fueron depositados en la colección de sonidos ambientales del IAvH (IAvH-CSA), y capturas de aves usando 12 redes de niebla en dos estaciones de muestreo, para un total de 624 horas/red. Algunas aves fueron recolectadas y depositadas en la en la colección ornitológica del IAvH (IAvH-A). Para los especímenes recolectados tomamos muestras de tejido (músculo pectoral, corazón e hígado) que fueron depositados en la colección de tejidos del IAvH (IAvH-CT).

Personas asociadas al proyecto:

Autor
Luis Linares

Métodos de Muestreo

Este trabajo fue desarrollado en tres fases: (i) inicialmente se consultaron bases bibliográficas, (ii) se hicieron varias salidas de campo a sitios poco explorados, y (iii) por último se analizó la información y se consolidaron los datos en un documento de soporte con una matriz general que reúne un listado de las especies registradas.

Área de Estudio Los muestreos publicados en el Parque Chingaza están concentrados en el sector occidental del parque, en ecosistemas de bosque andino de alta montaña y páramo. Los recientes desplazamientos de prevención y vigilancia de Chingaza han monitoreado adicionalmente entre 2013-2016 tres sectores al occidente del parque (Palacio, Monterredondo y La Paila). Exploraciones adicionales a los bosques subandinos del sector oriental han ocurrido 2016 y 2017, y la expedición ColombiaBIO-Chingaza fue desarrollada en dos localidades en Meta.
Control de Calidad Durante las salidas de campo se consultaron la Guía de Aves de Colombia (Hilty & Brown 2001) y la Guía de Campo de las Aves de Colombia (McMullan et al. 2014) para la verificación e identificación de especies. Se usó la taxonomía propuesta por el comité suramericano de clasificación de aves (SACC, por sus siglas en inglés). Para cada una de las especies, accedimos a la información de categoría de amenaza global (BirdLife International en www.iucnredlist.org), y nacional (Renjifo et al., 2014; 2016), así como categoría de endemismo (Chaparro et al., 2013) y migración (Naranjo et al., 2013; Ayerbe 2018). La georreferenciación de las especies observadas y de las áreas de estudio fue registrada como coordenadas geográficas bajo el sistema de referencia WGS84. Los transectos fueron sobrepuestos en cartografía base del Parque Chingaza a escala 1:25.000, capa oficial de Parques Nacionales Naturales de Colombia.

Descripción de la metodología paso a paso:

  1. Realizamos una revisión de artículos y documentos sobre la avifauna del Parque Chingaza. Tuvimos en cuenta artículos y documentos técnicos que reportaran listas de especies de aves. La búsqueda arrojó 10 referencias, entre 1979 y 2018, para diferentes sectores de Chingaza y su zona de amortiguación. Adicionalmente, dentro de los recorridos de Prevención, Vigilancia y Control (PVC) de Chingaza, entre los años 2013-2016, fueron visitadas tres localidades a lo largo del flanco occidental del parque (sector Palacio, Monteredondo y La Paila) y en la zona de amortiguación del sector oriental (Medina, Meta). Dos salidas de campo adicionales en septiembre 2016 y abril de 2017 fueron realizadas en la vereda Periquito, en el municipio de Medina, sector oriental del parque y en San Juanito, Meta. En todos estos recorridos registramos las aves con binoculares 10x42 a lo largo de transectos de 1,8 km de largo, siguiendo la metodología propuesta por Villarreal et al., 2004). En marzo de 2018, el Instituto Alexander von Humboldt (IAvH) en colaboración con Chingaza organizó la expedición Colombia BIO – Chingaza, que contó con la participación de investigadores y estudiantes de la Pontificia Universidad Javeriana y las comunidades locales. Realizamos muestreos de fauna y flora fueron realizados en la vereda Periquitos de Medina, Cundinamarca, y en la vereda El Tablón de San Juanito, Meta. Respecto a aves, en esta expedición realizamos recorridos libres de observación e ingresamos los listados en la plataforma eBird. Las grabaciones de sonidos fueron depositadas en la Colección de Sonidos Ambientales del IAvH (IAvH-CSA). Capturamos aves con 12 redes de niebla en tres estaciones de muestreo (San Juanito: 4° 28' 27,2" N, 73° 38' 27,2" W, elev.: ca. 2225 m; Medina: 4° 31' 25,5" N, 73° 25' 35,3" W, elev.: ca. 700 m y 4° 30' 56,4" N 73° 26' 38,6" W, elev.: ca. 1775 m) durante siete días, para un total de 624 horas/red. Algunas aves fueron recolectadas y depositadas en la Colección Ornitológica del Instituto Humboldt (IAvH-A). Cada especie observada y capturada fue georreferenciada con coordenadas geográficas bajo el sistema de referencia WGS84. Para cada una de las especies, accedimos a la información de categoría de amenaza global (BirdLife International en www.iucnredlist.org), y nacional (Renjifo et al., 2014; 2016), así como categoría de endemismo relativo al territorio nacional (Chaparro et al., 2013) y migración (Naranjo et al., 2013; Ayerbe 2018).

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Metadatos Adicionales

Identificadores Alternativos 10.15472/icidip
doi:10.15472/lp70rq
04fcb5be-39ac-4942-b464-c9239f2351df
https://ipt.biodiversidad.co/biota/resource?r=chingaza